الكتاب يود أن يشكر المانحين وأسرهم لهدية سخية. شكرا للسيد لي شياو شوان المسجلة الفيديو، وساعد مع تحرير الفيديو؛ السيدة هانا لويس والسيد لويس زابو لتوفير تقنية الدعم؛ والبروفيسور يان برفيس لاستعراض الفيديو وتوفير مدخلات لمحتوى الفيديو.

جميع الأساليب الموصوفة هنا أقرتها "لجنة أخلاقيات البحوث البشرية" من الجامعة الوطنية الأسترالية. لإنشاء نموذج البطين استخدمنا كلينجلير تشريح 12 ، تقنية الألياف 14. تقنية كلينجلير هو أسلوب تشريح عن طريق اللمس ينطوي على إزالة أجزاء صغيرة من الرمادية القشرة ويسقط على حزم من الألياف العصبية، مما يوفر دليل خطوة بخطوة من خلال طبقات الأنسجة من السطح إلى بنيات عميقة الدماغ.
 ملاحظة: تمت إزالة الدماغ العينة المستخدمة لإثبات هذا البروتوكول في الفيديو المصاحبة والصور بعناية من الجثث بشرية المحنط الفورمالين التي تم الحصول عليها من البرنامج الهيئة المانحة للمدرسة الطبية، والأسترالي الجامعة الوطنية. المانحة قد لا يوجد تاريخ معروف من المرض لاثيل. بعد إزالة الأم الجافية، تم تخزين الدماغ في 10% محلول الإيثانول في درجة حرارة الغرفة لمدة ثلاث سنوات-
 1-إعداد <ol><li>الحصول على دماغ كله من الجثث بشرية المحنط وإزالة الأم الجافية وتخزين الدماغ في الإيثانول 10% في درجة حرارة الغرفة قبل تشريح. 
	تحذير: استخدام معدات الحماية الشخصية في غرفة جيدة التهوية وفقا للمبادئ التوجيهية المحلية عند التعامل. ضمان أن جميع المشاركين على دراية بالإجراءات المؤسسية للمناولة الآمنة والتخلص منها دون مشرط وشارب الكائنات قبل الشروع في تشريح البروتوكول.</li>
	<li>إعداد الصكوك التالية: المقص والملقط وشفرات مشرط (رقم 15 ورقم 22)، ومسبار معدني وكليلة نهاية مقبض مشرط معدني ( الشكل 1). استخدم صراحة نهاية المقبض مشرط لتقليل الأضرار بالألياف العصبية الحساسة والحفاظ على مساحات ( الشكل 2) الألياف الرئيسية الأبيض المسألة 13.</li>
	<li>وضع الدماغ بحيث يواجه سطحها البطني صعودا.</li>
</ol> 2. إجراء تشريح ملاحظة: التشريح يأخذ حوالي 2 إلى 3 ح لإكمال <ol><li>إزالة ماطر العنكبوتي والمفرج المرتبطة من كلا نصفي الكرة الدماغي استخدام زوج من الملقط أتروماتيك (بلانت).</li>
	<li>برفق رفع المخيخ وتحديد موقع كوليكولي أقل شأنا. ضع شفرة المبضع (رقم 15) يعلق على مقبض مشرط طويل والذيلية فقط إلى كوليكولي أقل شأنا، وتخترق محوريا الدماغ. تبقى بليد أقرب إلى الأفقي قدر الإمكان لتجنب إتلاف المخيخ. الحرص على الحفاظ على تكتم midbrain.</li>
	ضع <li>في الدماغ لعرض الشق الجانبي اليمين أو اليسار. بداية من المغزلي سوبرامارجينال، استخدم كليلة نهاية المقبض مشرط لإزالة الطبقات القشرية السطحية بلطف. بلطف المضي قدما أولاً أعلاه، ثم أدناه ناصف الأفقي لتكشف عن حزم الألياف الرابطة الأفقية تعمل في الجداري وأمامي، والفصوص المؤقت، على التوالي.</li>
	<li>اتبع اتجاه الألياف شاملة حول الحدود اللاحق ل insula الاتصال فاسسيكولي طولية أعلى وأدنى للكشف عن فاسسيكولوس المقوسة-</li>
	<li>الأسفل، بلطف إزالة الطبقات القشرية السطحية الباقية الأوسط الزمانية وجيري أمامي أدنى لكشف الألياف الحزمي uncinate أن الاتصال الزمانية والفصوص الأمامية</li>
	<li>تحديد جيري قصيرة من قشرة الجزر ثم قم بإزالة insula. المقبل إزالة كبسولة المتطرفة وكلوستروم لتكشف عن الكبسولة الخارجية الكامنة. ملاحظة الإنتفاخ يتكون من نواة لينتيفورم العميق للكبسولة. تتحرك صوب الظهرية سطح القشرة، تكشف عن ألياف مشعشعة كورونا ( الشكل 4).</li>
	<li>إزالة القشرة المتبقية والكامنة وراء هذه المسألة الأبيض على سطح الدماغ لتصل إلى المغزلي cingulate الظهرية. الاستمرار في استخدام بلانت-نهاية المقبض مشرط لإزالة القشرة cingulate للكشف عن سينجولوم، مساحات الأبيض مسألة ربط مضمون مثقبة الأمامي المغزلي باراهيبوكامبال-</li>
	<li>استخدام نفس الأسلوب لإزالة سينجولوم من الخلفي لعرفت تكشف كلثوم الإحضار، تتألف من ألياف كوميسورال يربط نصفي الدماغي. دورسوم للجسم (الجذع) من كلثوم الإحضار الآن ستكون مرئية ( الشكل 6).</li>
	<li>كرر الخطوات من 2.3 إلى 2.8 في نصف الكرة المخي كونترالاتيرال.</li>
	<li>بالباتي وتحديد مدى البطين الجانبي على أحد نصفي الكرة الأرضية. باستخدام مجس، ثقب الجدار الجانبي من البطين في موقع تريجوني الجانبية. استخدام شفرة حجم 24 (تعلق على مقبض مشرط رقم 4) أدخل من خلال موقع الثقب وقطع إينفيريورلي لتفتح على طول القرن الأفريقي أقل شأنا من البطين الجانبي.</li>
	<li>الآن أن نعود إلى تريجوني الجانبية البطين تمديد قص ﻷسلحته نحو سبلينيوم كلثوم الإحضار (الخط المنقط في الشكل 5)-</li>
	<li>كرر الخطوتين 2.10 و 2.11 في نصف الكرة الغربي الأخرى.</li>
	<li>فتح الجسم البطين الجانبي باستمرار الشق من تريجوني روسترالي استخدام قص حوالي 3 سم في موازاة كلثوم الإحضار في كلا نصفي الكرة الأرضية (الخطوط المنقطة في الشكل 6)-</li>
	<li>الانضمام إلى شقوق متوازية اثنين في كل نصف الكرة روسترالي على مستوى جينو وكودالي على مستوى سبلينيوم كلثوم الإحضار. استخدام الملقط، عقد في يده غير المهيمنة، ورفع كلثوم الإحضار بلطف في سبلينيوم. مع زوج حادة صغيرة من مقص، عقدت في اليد المهيمنة، منفصلة سبلينيوم من بيلوسيدوم الحاجز الأساسي. بمجرد أنك وصلت إلى نهاية روسترال من الجسم، قطع كلثوم الإحضار وإزالة ذلك</li>
	<li>نستله على السطح البطني للمخ طوليا في راحة يدك غير المهيمنة لتحقيق الاستقرار في منطقتي والقفويه والزمانية (الجزء الخلفي). في الوقت نفسه، استخدم يدك المهيمنة بحزم ولكن بلطف عقد نهاية الأمامي للمخ بوضع أصابعك تعارض والإبهام على نواة لينتيفورم من كلا الجانبين من المخ.</li>
	سحب <li>استخدام لطيف والتواء الاقتراحات، فعلياً فصل أجزاء الأمامي والخلفي من الدماغ أخذ الرعاية الخاصة للحفاظ على ضفيرة شرويد سليمة. من المستحسن أن يحضر دليل الفصل والباب بلطف المتبقية أي ربط الأنسجة خلال العملية باستخدام مشرط زميل.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Smith, D. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+virtual+reality+atlas+of+craniofacial+anatomy.">A virtual reality atlas of craniofacial anatomy.</a> Plast Reconstr Surg. 120 (6), 1641-1646 (2007).</li><li>Estevez, M. E., Lindgren, K. A., Bergethon, P. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+three-dimensional+tool+for+teaching+human+neuroanatomy.">A novel three-dimensional tool for teaching human neuroanatomy.</a> Anat Sci Educ. 3 (6), 309-317 (2010).</li><li>Mortazavi, M. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+ventricular+system+of+the+brain:+a+comprehensive+review+of+its+history,+anatomy,+histology,+embryology,+and+surgical+considerations.">The ventricular system of the brain: a comprehensive review of its history, anatomy, histology, embryology, and surgical considerations.</a> Childs Nerv Syst. 30 (1), 19-35 (2014).</li><li>Drapkin, Z. A., Lindgren, K. A., Lopez, M. J., Stabio, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+and+assessment+of+a+new+3D+neuroanatomy+teaching+tool+for+MRI+training.">Development and assessment of a new 3D neuroanatomy teaching tool for MRI training.</a> Anat Sci Educ. 8 (6), 502-509 (2015).</li><li>Ruisoto Palomera, P., JuanesM&#233;ndez, J. A., Prats Galino, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Enhancing+neuroanatomy+education+using+computer-based+instructional+material.">Enhancing neuroanatomy education using computer-based instructional material.</a> Computers in Human Behavior. 31, 446-452 (2014).</li><li>Chariker, J. H., Naaz, F., Pani, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Item+difficulty+in+the+evaluation+of+computer-based+instruction:+an+example+from+neuroanatomy.">Item difficulty in the evaluation of computer-based instruction: an example from neuroanatomy.</a> Anat Sci Educ. 5 (2), 63-75 (2012).</li><li>Bouwer, H. E., Valter, K., Webb, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Current+integration+of+dissection+in+medical+education+in+Australia+and+New+Zealand:+Challenges+and+successes.">Current integration of dissection in medical education in Australia and New Zealand: Challenges and successes.</a> Anatomical sciences education. 9 (2), 161-170 (2016).</li><li>Nwachukwu, C., Lachman, N., Pawlina, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evaluating+dissection+in+the+gross+anatomy+course:+Correlation+between+quality+of+laboratory+dissection+and+students+outcomes.">Evaluating dissection in the gross anatomy course: Correlation between quality of laboratory dissection and students outcomes.</a> Anatomical Sciences Education. 8 (1), 45-52 (2015).</li><li>Rae, G., Cork, R. J., Karpinski, A. C., Swartz, W. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+integration+of+brain+dissection+within+the+medical+neuroscience+laboratory+enhances+learning.">The integration of brain dissection within the medical neuroscience laboratory enhances learning.</a> Anatomical Sciences Education. , (2016).</li><li>Choi, C. Y., Han, S. R., Yee, G. T., Lee, C. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Central+core+of+the+cerebrum.">Central core of the cerebrum.</a> J Neurosurg. 114 (2), 463-469 (2011).</li><li>Standring, S., Ellis, H., Healy, J., Williams, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anatomical+Basis+Of+Clinical+Practice.">Anatomical Basis Of Clinical Practice.</a> Grays Anatomy. 40, 415 (2008).</li><li>Ojeda, J. L., Icardo, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Teaching+images+in+Neuroanatomy:+Value+of+the+Klinger+method.">Teaching images in Neuroanatomy: Value of the Klinger method.</a> Eur. J. Anat. 15, 136-139 (2011).</li><li>Skadorwa, T., Kunicki, J., Nauman, P., Ciszek, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Image-guided+dissection+of+human+white+matter+tracts+as+a+new+method+of+modern+neuroanatomical+training.">Image-guided dissection of human white matter tracts as a new method of modern neuroanatomical training.</a> Folia Morphol (Warsz). 68 (3), 135-139 (2009).</li><li>Arnts, H., Kleinnijenhuis, M., Kooloos, J. G., Schepens-Franke, A. N., van Cappellen van Walsum, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Combining+fiber+dissection,+plastination,+and+tractography+for+neuroanatomical+education:+Revealing+the+cerebellar+nuclei+and+their+white+matter+connections.">Combining fiber dissection, plastination, and tractography for neuroanatomical education: Revealing the cerebellar nuclei and their white matter connections.</a> Anat Sci Educ. 7 (1), 47-55 (2014).</li><li>Turney, B. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anatomy+in+a+modern+medical+curriculum.">Anatomy in a modern medical curriculum.</a> Ann R Coll Surg Engl. 89 (2), 104-107 (2007).</li><li>Chowdhury, F., Haque, M., Sarkar, M., Ara, S., Islam, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=White+fiber+dissection+of+brain;+the+internal+capsule:+a+cadaveric+study.">White fiber dissection of brain; the internal capsule: a cadaveric study.</a> Turk Neurosurg. 20 (3), 314-322 (2010).</li><li>Riederer, B. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Plastination+and+its+importance+in+teaching+anatomy.+Critical+points+for+long-term+preservation+of+human+tissue.">Plastination and its importance in teaching anatomy. Critical points for long-term preservation of human tissue.</a> J Anat. 224 (3), 309-315 (2014).</li><li>McMenamin, P. G., Quayle, M. R., McHenry, C. R., Adams, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+production+of+anatomical+teaching+resources+using+three-dimensional+(3D)+printing+technology.">The production of anatomical teaching resources using three-dimensional (3D) printing technology.</a> Anat Sci Educ. , (2014).</li><li>Ture, U., Yasargil, M. G., Friedman, A. H., Al-Mefty, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fiber+dissection+technique:+lateral+aspect+of+the+brain.">Fiber dissection technique: lateral aspect of the brain.</a> Neurosurgery. 47 (2), 417-426 (2000).</li><li>Klingler, J., Gloor, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+connections+of+the+amygdala+and+of+the+anterior+temporal+cortex+in+the+human+brain.">The connections of the amygdala and of the anterior temporal cortex in the human brain.</a> Journal of Comparative Neurology. 115 (3), 333-369 (1960).</li></ol>

الكتاب يعلن أن أي تعارض في المصالح.

وكان الغرض من هذه الورقة وضع دليل تشريح لنشرها للمدرسين والطلاب التي يمكن استخدامها لتحسين التعليم والتعلم العميق البطين وهياكل تلين الدماغ البشري. ونحن قد وضعت دليل خطوة بخطوة مع المصاحبة للصور، جنبا إلى جنب مع مورد فيديو، التي يمكن استخدامها للمساعدة في فهم مورفولوجية في البطينين والهياكل المرتبطة بها. تقنية تسلخ نفسها ليست جديدة. وقد استخدمت سابقا تشريح الألياف لدراسة تشريح الدماغ14. ومع ذلك، كان جدة دراستنا المزيج من أسلوب التشريح التقليدية جنبا إلى جنب مع إنتاج الفيديو مشروحة الحديثة. هذا يوضح كيف يمكن استخدام التشريح، على الرغم من انخفاض استخدامها في التعليم التشريح، وحكمة لمساعدة الطلاب على التعلم، وخاصة بالنسبة للطلبة الذين قد لا يستطيعون الوصول إلى تشريح الإنسان أو تفضل استخدام الموارد الإلكترونية للتعلم. يوفر تقنية تشريح الألياف مورد مكمل لنماذج من البلاستيك والكمبيوتر لتعلم 3D تشريح البطينين الدماغي. مقارنة النماذج البلاستيكية والدماغ المقاطع العرضية، ويلقي البطين، لدينا طريقة التشريح أثبت هيكل ثلاثي الأبعاد في البطينين وعلاقاتهم مع الهياكل التي تشكل حدود البطينين الدماغي.
توفير الموارد الفعالة للتعلم الهياكل العميق للمخ البشري أحد التحديات التي تواجه المربين التشريح. الموارد المستخدمة عادة ببعض القيود. على الرغم من أن تشريح تقليديا حجر الزاوية في تعليم التشريح، وتوافره انخفض كثيرا بسبب ضغوط الوقت المتنافسة من التخصصات الأخرى، والشواغل المتعلقة بالسلامة، وتخفيض عدد الجهات المانحة7. تشريح غير مفيدة ليس فقط نظراً لأنها تتيح تقدير منظمة ثلاثية الأبعاد للدماغ، ولكنه يوفر أيضا الاستفادة من تصور haptic (عن طريق اللمس الغنوص)15. هناك حاجة لطرق بديلة لتقديم تجربة التشريح، كما أن ليس جميع المؤسسات من الوصول إلى العقول البشرية للتشريح. وهكذا، وضعنا هذا الفيديو التعليمية، التي يمكن استخدامها كمورد تعليم مستقل للبرهنة على التشريح ثلاثي الأبعاد والعلاقات في الدماغ البشري. وعلاوة على ذلك، يمكن أن تستخدم كدليل للطلاب لإجراء التشريح الخاصة بهم على العقول البشرية أو الحيوانية أو المستخدمة من قبل الموظفين بدلاً من ذلك إلى استنباط نماذج الدماغ بروسيكتيد التي يمكن استخدامها لدراسة الطالب. ولذلك، علينا إعادة النظر في استخدام التشريح في visualising تشريح المعقدة لهذه المنطقة.
تم اختيار تقنية التشريح كلينجلير لتسهيل فهم الطلاب للتشريح 3D البطينين وهياكل تلين. فائدة إضافية لهذه التقنية أنه يسمح للمفهوم النظري لإسقاط وتكوين الجمعيات، ونظم الألياف كوميسورال. وقد استخدمت الأسلوب كلينجلير في الماضي، مما يدل على الدماغ والمسألة الأبيض المسالك أنوية14،16. في هذه الدراسة، ونظهر كيف يمكن تطبيقها باستكشاف والتصور البطينين الدماغي والهياكل ذات الصلة. استخدام العديد من تقنيات تقطيع الدماغ التخفيضات الحادة التي تدمر الهياكل الحساسة وصلاتهم. عن طريق اختيار أسلوب الذي يحافظ على بنيات أعمق وصلاتهم في الدماغ، قمنا بإنشاء دليل مرئي التدليل على تشريح المعقدة والعلاقات.
وهناك بعض الجوانب العملية التي يمكن تحسينها. تقنية تحنيط ينبغي عند اختيار العينات الدماغ البشري للتشريح. وكان المحنط لدينا جثة عبر شريان فخذي ومن الممكن الحصول على أنسجة المخ جودة أعلى حتى من التحنيط عن طريق الشرايين السباتي أو مع تسلل فوق الجافية من الحل مثبت. أنسجة المخ نفسها حساس ويمكن بسهولة الحصول على أضرار خلال عملية تشريح أو التعامل مع الطلاب. بسبب الهشاشة في الدماغ ما ينتج عنه نيابة، وتعظيم استخدامها، ويمكن إدراج عدة خطوات إضافية. يمكن استخدام تطرية لتحسين المتانة وطول العمر للعينات بروسيكتيد المعدة باستخدام هذا الأسلوب17. بديل آخر لتعزيز طول العمر عينة وتسهيل الإنتاج الضخم من التشريح لإنشاء نسخ باستخدام الطباعة 3D18. تجميد العقول قبل التشريح قد تعزز التقنية تتيح عملية التجميد والذوبان اختراق الألياف مع الفورمالين، الذي يفصل بين الألياف لتشريح أسهل19،20. ومع ذلك، بينما يساعد هذا الأسلوب تجميد التشريح، شودري والزملاء وجدت أن أنها لم تسفر عن نتائج متسقة16 وهكذا انتخبنا لا لاستخدام أسلوب تجميد أذاب في تشريح لدينا.
تقنية تشريح الألياف وسيلة ممتازة لإظهار بنية نظام البطين من الدماغ. في مؤسستنا، التعليقات غير الرسمية وملاحظاتنا الشخصية للطلبة الاستفادة من هذا المورد قد أشارت إلى أن الطلاب وجدت أنه من المفيد في تعلم التشريح الدماغي البطينين والهياكل ذات الصلة. الفوائد التعليمية لهذا المورد لا يزال يتم تقييمها بصورة موضوعية من خلال التقييم والتغذية المرتدة استكشاف كامل القيمة والقيود. نحن نوصي بالجمع بين الأسلوب المورد و/أو تشريح الفيديو مع مجموعة من موارد تكميلية لتزويد الطلاب بالفرص المثلى لتقدير منظمة ثلاثية الأبعاد المعقدة البطينين والهياكل المحيطة بها.

العديد من الطلاب النضال من أجل فهم مساحات السلبية للنظام البطين، تقع عميقة داخل المخ البشري1،2. وتوفر الموارد استخداماً متاحة للطلاب للدراسة في البطينين تمثيلات بدائية نسبيا علاقات ثلاثية الأبعاد المعقدة لهذه البنى الدماغية العميقة. فهم التشريح 3D نظام البطين والهياكل ذات الصلة بأهمية خاصة في جراحة الأعصاب للوصول إلى نظام البطين واحدة من التقنيات الأكثر المستخدمة لقياس الضغط داخل الجمجمة، وضغط البطين النظام، وإدارة الأدوية3. وباﻹضافة إلى ذلك، اقتضت التطورات السريعة في مجال التصوير الطبي تنمية المهارات في تفسير تشريح ثلاثي الأبعاد.
ثنائي الأبعاد (2D) أقسام من الدماغ في طائرات مختلفة تستخدم عادة لتصور هياكل الدماغ العميقة التي تشكل حدود مساحات البطين السلبية4. شرائح 2D المخ وحدها غير كافية لتمكين الطلاب من فهم المدى الكامل لهيكل ثلاثي الأبعاد البطينين والتفاصيل الدقيقة للمنطقة مثل حزم الألياف يربط بين القشرة وهياكل سوبكورتيكال5. ونتيجة لذلك، يضطر المربين تعتمد على قدرة التلاميذ على حساب مفهوم 3D مفهومة ل البطينين4. الطلاب الذين يعانون من الوعي المكاني العثور عليه بالغة الصعوبة لإنشاء هذه الصورة ثلاثية الأبعاد. في حين توفر النماذج البلاستيكية ويلقي البطين تمثيل ثلاثي الأبعاد للنظام البطين، فشلوا في إثبات العلاقات الشاملة التي تشكل حدود البطينين. الطلاب غالباً ما غفلة إزالة أجزاء النموذج البلاستيك للوصول إلى نظام البطين وفهم الترابط. في هذه العملية، أنهم كثيرا ما نغفل تفصيلاً الأوضاع النسبية لكل بنية وتفقد فهم العلاقات الخاصة بها (مثل تكوين سطح البطينات الجانبية من كلثوم الإحضار).
تطوير أدوات التدريس المحوسبة الجديدة قد تناول بعض هذه القيود. ومع ذلك، العديد من هذه النماذج تقتصر على نص ثابت والصور، وعدم الاستفادة من التفاعل تتيحها هذه التكنولوجيات الجديدة7،8. بينما التكنولوجيات التفاعلية تمكين المستخدم من تدوير نماذج حاسوبية ثلاثية الأبعاد لدراسة وجهات نظر متعددة، وهذا يمكن الخلط بين بعض المستخدمين المبتدئين الذين يجدون صعوبة توجيه هياكل6خاصة. وعلاوة على ذلك، أظهرت موارد الكمبيوتر التفاعلية لتكون أقل فعالية في تدريس أكثر تعقيداً الهياكل التشريحية6. وهكذا، واحداً من التحديات في تعليم التشريح هو تزويد الطلاب بالموارد التي تمكنهم من تصور البطينين على نحو كاف ونقدر على هيكل ثلاثي الأبعاد والعلاقات التشريحية بما في ذلك في الدقيقة النقابي، والإسقاط، وحزم الألياف كوميسورال التي تشكل العلاقات المعقدة مع هياكل تلين2.
قد أظهر تشريح لتكون وسيلة تعليمية ممتازة لتعلم علم التشريح7،8. دراسة أجريت مؤخرا دليلاً لفوائد التشريح الطالب في تعلم التشريح. في عام 2016، وجد رأي et al. تحسين استبقاء المعارف التشريح القصيرة الأجل والطويلة الأجل في الطلاب المشاركين في تشريح9. في حين تستمر أوجه التقدم في التكنولوجيا لتحسين دقة والتفاعل من نماذج حاسوبية ثلاثية الأبعاد، لا يمكن تكرار المعرفة المكتسبة من خلال التدريب العملي على تشريح رقمياً في الوقت الحالي10.
في هذه الدراسة، ونحن يهدف إلى إنتاج تشريح استنساخه من الدماغ البشري. اخترنا أسلوب تشريح ألياف للتي تسمح بالحفاظ على حزم الألياف الدقيقة وتلين السنجابية هياكل لأفضل تعريف الفضاء السلبية من البطينات.
نقدم هنا دليل شامل خطوة بخطوة لإنشاء نموذج نيابة البطينين وهياكل تلين جنبا إلى جنب مع شريط فيديو يتضمن تدريب المصاحب لاستخدام في التشريح التدريس والتعلم. يمكن استخدام هذه الموارد للتعليم والتعلم التشريح العصبي للدماغ بكل من المعلمين والطلاب.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="615">
	<tbody>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">Scalpel Blade No 15</td>
			<td style="width:113px;">Swann-Morton</td>
			<td style="width:119px;">0205</td>
			<td style="width:167px;">Scalpel blade</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Scalpel Blade No 11</td>
			<td style="width:113px;">Swann-Morton</td>
			<td style="width:119px;">0203</td>
			<td>Scalpel blade</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Scalpel Blade No 24</td>
			<td style="width:113px;">Swann-Morton</td>
			<td style="width:119px;">0211</td>
			<td>Scalpel blade</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Long Scalpel handle No3L</td>
			<td style="width:113px;">Swann-Morton</td>
			<td style="width:119px;">0913</td>
			<td>Scalpel handle</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Short Scalpel handle No4G</td>
			<td style="width:113px;">Swann-Morton</td>
			<td style="width:119px;">0934</td>
			<td>Scalpel handle</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Scissors</td>
			<td style="width:113px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>Scissors</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Atraumatic Forceps</td>
			<td style="width:113px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>Atraumatic forceps</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Toothed Forceps</td>
			<td style="width:113px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>Toothed forceps</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Genelyn Arterial Enhanced</td>
			<td style="width:113px;">GMS Inovations</td>
			<td style="width:119px;">AE-475</td>
			<td>Arterial embalming media</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

exploring deep space - uncovering the anatomy of periventricular structures to reveal the lateral ventricles of the human brain

عادة ما يتم تزويد الطلاب التشريح بثنائي الأبعاد (2D) المقاطع والصور عند دراسة تشريح البطين الدماغي والطلاب العثور على هذا التحدي. نظراً البطينين ممنوع سلبية عميقة داخل المخ، السبيل الوحيد لفهم على علم التشريح بتقدير حدودها التي شكلتها الهياكل ذات الصلة. يبحث في تمثيل 2D من هذه الأماكن، في أي من هذه الطائرات الكاردينال، لن تمكن التصور جميع الهياكل التي تشكل حدود البطينين. وبالتالي، يتطلب استخدام المقاطع 2D وحدها الطلاب لحساب بهم الصورة الذهنية للمسافات البطين 3D. كان الهدف من هذه الدراسة لتطوير أسلوب استنساخه لتشريح الدماغ البشري لإنشاء مورد تعليمية لتعزيز الطالب فهم العلاقات المعقدة بين البطينين وهياكل تلين. ولتحقيق ذلك، قمنا بإنشاء مورد فيديو التي تحتوي على دليل خطوة بخطوة استخدام أسلوب تشريح ألياف لتكشف عن البطينين الأفقي والثالث إلى جانب هياكل الحوفي و ganglia القاعدية ذات صلة وثيقة. ومن مزايا هذا الأسلوب هو أنه يمكن تحديد مساحات بيضاء هذه المسألة أن من الصعب التمييز بين استخدام تقنيات التشريح الأخرى. ويرافق هذا الفيديو بروتوكول مكتوب يوفر وصف منهجية عملية للمساعدة في استنساخ تشريح الدماغ. ويوفر هذه الحزمة تشريح قيمة تدريس الموارد للمعلمين والطلاب على حد سواء. باتباع هذه الإرشادات يمكن المعلمين إنشاء موارد التدريس والطلاب يمكن الاسترشاد لإنتاج تشريح الدماغ الخاصة بهم كنشاط عملي عملي. نحن نوصي بإدراج هذا الفيديو دليل في التشريح التدريس لتعزيز الطالب فهم مورفولوجيا وأهميتها السريرية البطينين.

هذا الأسلوب من تشريح يعرض النظام البطين بتقسيم الدماغ إلى الأمامي والخلفي جزء (الشكل 7 و الشكل 8). الجزء الخلفي ويقدم نظرة داخلية تريجوني الجانبية التي يمكن رؤية الأبواق الخلفي والسفلي تمتد إلى القفوية والفصوص المؤقت، على التوالي (الشكل 8). في القرن الأفريقي أدنى/الزماني الحصين، الذي يشكل الجدار الآنسي، مرئية بوضوح كما في فيمبرياي وكرورا من فورنيكس.
الجزء الأمامي من الدماغ بروسيكتيد (الشكل 7) يتيح مراقبة الهياكل التي تشكل حدود الجسم وقرون الأمامي روسترالي إسقاط البطين الجانبي. روسترالي، هي وضوح رؤساء الأنوية كودات كبيرة لتشكيل الحدود الجانبية للقرن الأمامي. الجدار الآنسي وسقف البطينات الجانبية قد أزيلت إلى حد كبير ولكن في روسترال الغرض، في هذه العينة، ما تبقى بيلوسيدوم حاجز ميديالى، وكلثوم كوربوس ﻷسلحته كانت لا تزال مرئية. تتحرك دورسالي، كتلة كبيرة من المهاد تصبح مرئية كما يشكل أغلبية الكلمة الجسم البطين، بينما يعمل الجسم ضيقة من نواة كودات dorsolateral إلى المهاد تشكل جزءا صغيراً من الكلمة البطين أفقياً. ضفيرة choroid مرئياً كما أنها منحنيات حولها المهاد. عندما يتم فصل ثالامي لطف، يمكن رؤية البطين الثالث يحدها جانبياً بجدران الآنسي ثالامي ولاسلحته بالجسم من فورنيكس. ويعتبر الالتصاق إينتيرثالاميك مكانة بارزة في خط الوسط (الشكل 7). المتاخمة البطين الثالث للأسفل، أعمدة فورنيكس مرئية أيضا. وباﻹضافة إلى ذلك، فإننا يمكن أن تصور الهياكل ابيثالاميك هابينولا بوستيرو الأعلى المهاد والغدة الصنوبرية. بطنيا، يمكن سهولة تحديد هياكل midbrain مثل كوليكولي العليا والسفلي على تيكتوم وقناطر الدماغي.
عند بدء تشريح الألياف للعينة المستخدمة في هذا الفيديو، اكتشفت عدة آفات محورها الأبيض الملونة تان في مساحات بيضاء المسألة أعمق مثل مشعشعة كورونا (الشكل 5). الفحص النسيجي لعينات الآفات اقترح أن كانت نتيجة لورم خبيث من سرطان الرئة خلايا غير الصغيرة. وكان هناك لا التاريخ المعروف بمرض لاثيل في العينة قبل تشريح كمثل هذه الآفات عارضة تجد.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56246/56246fig1.jpg"> 
الشكل 1 : الأدوات المستخدمة لإجراء تشريح الدماغ. (أ) بليد 15؛ (ب) التعامل مشرط طويل; (ج) بليد 11؛ (د) التعامل مشرط قصيرة; (ﻫ) بليد 24؛ مقص (F)؛ (ز) أتروماتيك ملقط؛ (ح) المسننة الملقط <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56246/56246fig1large.jpg" target="_blank">الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56246/56246fig2.jpg"> 
الشكل 2 : كيفية عقد المقبض مشرط معدني واستخدام نهايته حادة لإزالة الطبقات القشرية السطحية لتكشف عن حزم الألياف البيضاء المسألة الأساسية- <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56246/56246fig2large.jpg" target="_blank">الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56246/56246fig3.jpg"> 
الشكل 3 : الأفقي عرض الجانب الأيسر من الدماغ. إزالة الأمر الأبيض والرمادي سطحية أمامي والجداري، قذالي، وجزء من الفصوص الصدغي كشفت فاسسيكولي طولية أعلى وأدنى، واتصال الألياف البيضاء الفصوص، وقشرة الجزر. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56246/56246fig3large.jpg" target="_blank">الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56246/56246fig4.jpg"> 
الشكل 4 : الأفقي عرض الجانب الأيسر من الدماغ. تشريح أعمق من مسألة أمامي، الجدارية، والقفويه، وجزء من الفصوص الصدغي كشف الألياف ذات اتجاه أفقي مشعشعة كورونا والكبسولة الخارجية، فضلا عن فاسسيكولوس أونسيناتي الأبيض والرمادي. نافذة مقطعة الألياف الكبسولة الخارجية يكشف المادة الرمادية من نواة لينتيفورم. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56246/56246fig4large.jpg" target="_blank">الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56246/56246fig5.jpg"> 
الشكل 5 : إزالة العرض الجانبي للجانب الأيسر من المخ مع قشرة المغزلي سينجولاتي- خط منقط يشير إلى موضع التخفيضات لفتح البطين الجانبي. رأس سهم صغير يشير إلى موقع الآفة المرضية الصغيرة التي عثر عليها بالمناسبة أثناء التشريح. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56246/56246fig5large.jpg" target="_blank">الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56246/56246fig6.jpg"> 
الرقم 6 : إزالة عرض متفوقة في المخ مع كلا جيري سينجولاتي، وفضح كلثوم الإحضار في خط الوسط- إظهار الخطوط المنقطة ومواقف التخفيضات الموازية التي يتعين القيام بها على طول كلثوم الإحضار لفتح سقف البطينات الجانبية. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56246/56246fig6large.jpg" target="_blank">الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-</a>
<img alt="Figure 7" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56246/56246fig7.jpg"> 
7 الرقم: رأي والذيلية النصف الأمامي للمخ تبين القرن الأمامي وهيئة البطينات الجانبية والبطينين الثالث والهياكل المحيطة بها. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56246/56246fig7large.jpg" target="_blank">الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-</a>
<img alt="Figure 8" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/ alt="Figure 8" class="xfigimg" src=""></img alt="Figure 8" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/>56246/56246fig8.jpg "/> 
الشكل 8 : روسترال ويرى النصف الخلفي من الدماغ تظهر ابواق الخلفي والأبواق أقل شأنا من البطينات الجانبية، فضلا عن الحصين وإسقاطاتها إلى فورنيكس. <a href="//ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/56246/56246fig8large.jpg" target="_blank">الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-</a>

Watch this Scientific Journal Video about Exploring Deep Space - Uncovering the Anatomy of Periventricular Structures to Reveal the Lateral Ventricles of the Human Brain at JoVE.com

Exploring Deep Space - Uncovering the Anatomy of Periventricular Structures to Reveal the Lateral Ventricles of the Human Brain

استكشاف الفضاء السحيق-كشف تشريح لهياكل تلين للكشف عن البطينات الجانبية للدماغ البشري

هذه الورقة توضح الاستخدام الفعال لأسلوب تشريح الألياف للكشف عن مساحات سطحية الأبيض المسألة وهياكل تلين الدماغ البشري، في الفضاء ثلاثي الأبعاد، للمساعدة على الفهم الطالب مورفولوجيا البطين.

Anatomy students are typically provided with two-dimensional (2D) sections and images when studying cerebral ventricular anatomy and students find this ...

exploring-deep-space-uncovering-anatomy-periventricular-structures-to

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Neuroscience

16.5K Views.  Australian National University. هذه الورقة توضح الاستخدام الفعال لأسلوب تشريح الألياف للكشف عن مساحات سطحية الأبيض المسألة وهياكل تلين الدماغ البشري، في الفضاء ثلاثي الأبعاد، للمساعدة على الفهم الطالب مورفولوجيا البطين.

Video: Exploring Deep Space - Uncovering the Anatomy of Periventricular Structures to Reveal the Lateral Ventricles of the Human Brain

Mouse Models of Periventricular Leukomalacia

We describe a protocol for establishing mouse models of periventricular leukomalacia (PVL). PVL is the predominant form of brain injury in premature infants and the most common antecedent of cerebral palsy. PVL is characterized by periventricular white matter damage with prominent oligodendroglial injury. Hypoxia/ischemia with or without systemic infection/inflammation are the primary causes of PVL. We use P6 mice to create models of neonatal brain injury by the induction of hypoxia/ischemia with or without systemic infection/inflammation with unilateral carotid ligation followed by exposure to hypoxia with or without injection of the endotoxin lipopolysaccharide (LPS). Immunohistochemistry of myelin basic protein (MBP) or O1 and electron microscopic examination show prominent myelin loss in cerebral white matter with additional damage to the hippocampus and thalamus. Establishment of mouse models of PVL will greatly facilitate the study of disease pathogenesis using available transgenic mouse strains, conduction of drug trials in a relatively high throughput manner to identify candidate therapeutic agents, and testing of stem cell transplantation using immunodeficiency mouse strains.

We established mouse models of periventricular leukomalacia (PVL), the predominant brain injury in premature infants characterized by periventricular white matter lesions. Hypoxia/ischemia with/without systemic infection are the primary causes of PVL. Unilateral carotid ligation and hypoxia exposure with/without lipopolysaccharide injection creates PVL-like lesions in P6 mice.

نماذج من الماوس تلين بيضاء المحيطة بالبطين

We describe a protocol for establishing mouse models of periventricular leukomalacia (PVL). PVL is the predominant form of brain injury in premature ...

Morphometric Analyses of Retinal Sections

Morphometric analyses of retinal sections have been used in examining retinal diseases. For examples, neuronal cells were significantly lost in the retinal ganglion cell layer (RGCL) in rat models with N-methyl-D-aspartate (NMDA)&#x2013;induced excitotoxicity1, retinal ischemia-reperfusion injury2 and glaucoma3. Reduction of INL and inner plexiform layer (IPL) thicknesses were reversed with citicoline treatment in rats' eyes subjected to kainic acid-mediated glutamate excitotoxicity4. Alteration of RGC density and soma sizes were observed with different drug treatments in eyes with elevated intraocular pressure3,5,6. Therefore, having objective methods of analyzing the retinal morphometries may be of great significance in evaluating retinal pathologies and the effectiveness of therapeutic strategies.
The retinal structure is multi-layers and several different kinds of neurons exist in the retina. The morphometric parameters of retina such as cell number, cell size and thickness of different layers are more complex than the cell culture system. Early on, these parameters can be detected using other commercial imaging software. The values are normally of relative value, and changing to the precise value may need further accurate calculation. Also, the tracing of the cell size and morphology may not be accurate and sensitive enough for statistic analysis, especially in the chronic glaucoma model. The measurements used in this protocol provided a more precise and easy way. And the absolute length of the line and size of the cell can be reported directly and easy to be copied to other files. For example, we traced the margin of the inner and outer most nuclei in the INL and formed a line then using the software to draw a 90 degree angle to measure the thickness. While without the help of the software, the line maybe oblique and the changing of retinal thickness may not be repeatable among individual observers. In addition, the number and density of RGCs can also be quantified. This protocol successfully decreases the variability in quantitating features of the retina, increases the sensitivity in detecting minimal changes.
 	This video will demonstrate three types of morphometric analyses of the retinal sections. They include measuring the INL thickness, quantifying the number of RGCs and measuring the sizes of RGCs in absolute value. These three analyses are carried out with Stereo Investigator (MBF Bioscience &mdash; MicroBrightField, Inc.). The technique can offer a simple but scientific platform for morphometric analyses.

This video demonstrates three types of morphometric analyses of the retina, which include measuring the inner nuclear layer thickness, quantifying the number of retinal ganglion cells (RGCs) and measuring the sizes of RGCs. The technique can offer a simple but scientific platform for morphometric analyses.

المورفومترية التحليلات من أقسام الشبكية

Morphometric analyses of retinal sections have been used in examining retinal diseases. For examples, neuronal cells were significantly lost in the ...

Manual Drainage of the Zebrafish Embryonic Brain Ventricles

Cerebrospinal fluid (CSF) is a protein rich fluid contained within the brain ventricles. It is present during early vertebrate embryonic development and persists throughout life. Adult CSF is thought to cushion the brain, remove waste, and carry secreted molecules1,2. In the adult and older embryo, the majority of CSF is made by the choroid plexus, a series of highly vascularized secretory regions located adjacent to the brain ventricles3-5. In zebrafish, the choroid plexus is fully formed at 144 hours post fertilization (hpf)6. Prior to this, in both zebrafish and other vertebrate embryos including mouse, a significant amount of embryonic CSF (eCSF) is present . These data and studies in chick suggest that the neuroepithelium is secretory early in development and may be the major source of eCSF prior to choroid plexus development7.
eCSF contains about three times more protein than adult CSF, suggesting that it may have an important role during development8,9. Studies in chick and mouse demonstrate that secreted factors in the eCSF, fluid pressure, or a combination of these, are important for neurogenesis, gene expression, cell proliferation, and cell survival in the neuroepithelium10-20. Proteomic analyses of human, rat, mouse, and chick eCSF have identified many proteins that may be necessary for CSF function. These include extracellular matrix components, apolipoproteins, osmotic pressure regulating proteins, and proteins involved in cell death and proliferation21-24. However, the complex functions of the eCSF are largely unknown.
We have developed a method for removing eCSF from zebrafish brain ventricles, thus allowing for identification of eCSF components and for analysis of the eCSF requirement during development. Although more eCSF can be collected from other vertebrate systems with larger embryos, eCSF can be collected from the earliest stages of zebrafish development, and under genetic or environmental conditions that lead to abnormal brain ventricle volume or morphology. Removal and collection of eCSF allows for mass spectrometric analysis, investigation of eCSF function, and reintroduction of select factors into the ventricles to assay their function. Thus the accessibility of the early zebrafish embryo allows for detailed analysis of eCSF function during development.

We present a method to collect cerebrospinal fluid (CSF) and to create a system which lacks CSF within the embryonic zebrafish brain ventricular system. This allows for further examination of CSF composition and its requirement during embryonic brain development.

دليل الصرف من البطينين الدماغ الجنينية اسماك الزرد

Cerebrospinal fluid  (CSF) is a protein rich fluid contained within the brain ventricles. It is  present during early vertebrate embryonic development and ...

3D Modeling of the Lateral Ventricles and Histological Characterization of Periventricular Tissue in Humans and Mouse

The ventricular system carries and circulates cerebral spinal fluid (CSF) and facilitates clearance of solutes and toxins from the brain. The functional units of the ventricles are ciliated epithelial cells termed ependymal cells, which line the ventricles and through ciliary action are capable of generating laminar flow of CSF at the ventricle surface. This monolayer of ependymal cells also provides barrier and filtration functions that promote exchange between brain interstitial fluids (ISF) and circulating CSF. Biochemical changes in the brain are thereby reflected in the composition of the CSF and destruction of the ependyma can disrupt the delicate balance of CSF and ISF exchange. In humans there is a strong correlation between lateral ventricle expansion and aging. Age-associated ventriculomegaly can occur even in the absence of dementia or obstruction of CSF flow. The exact cause and progression of ventriculomegaly is often unknown; however, enlarged ventricles can show regional and, often, extensive loss of ependymal cell coverage with ventricle surface astrogliosis and associated periventricular edema replacing the functional ependymal cell monolayer. Using MRI scans together with postmortem human brain tissue, we describe how to prepare, image and compile 3D renderings of lateral ventricle volumes, calculate lateral ventricle volumes, and characterize periventricular tissue through immunohistochemical analysis of en face lateral ventricle wall tissue preparations. Corresponding analyses of mouse brain tissue are also presented supporting the use of mouse models as a means to evaluate changes to the lateral ventricles and periventricular tissue found in human aging and disease. Together, these protocols allow investigations into the cause and effect of ventriculomegaly and highlight techniques to study ventricular system health and its important barrier and filtration functions within the brain.

Using MRI scans (human), 3D imaging software, and immunohistological analysis, we document changes to the brain&#8217;s lateral ventricles. Longitudinal 3D mapping of lateral ventricle volume changes and characterization of periventricular cellular changes that occur in the human brain due to aging or disease are then modeled in mice.

النمذجة 3D من جانبي البطينات ونسيجية توصيف الأنسجة المحيطة بالبطين في البشر والفأر

The ventricular system carries and circulates cerebral spinal fluid (CSF) and facilitates clearance of solutes and toxins from the brain. The functional ...

Analysis of Gene Expression Changes in the Rat Hippocampus After Deep Brain Stimulation of the Anterior Thalamic Nucleus

Deep brain stimulation (DBS) surgery, targeting various regions of the brain such as the basal ganglia, thalamus, and subthalamic regions, is an effective treatment for several movement disorders that have failed to respond to medication. Recent progress in the field of DBS surgery has begun to extend the application of this surgical technique to other conditions as diverse as morbid obesity, depression and obsessive compulsive disorder. Despite these expanding indications, little is known about the underlying physiological mechanisms that facilitate the beneficial effects of DBS surgery. One approach to this question is to perform gene expression analysis in neurons that receive the electrical stimulation. Previous studies have shown that neurogenesis in the rat dentate gyrus is elicited in DBS targeting of the anterior nucleus of the thalamus1. DBS surgery targeting the ATN is used widely for treatment refractory epilepsy. It is thus of much interest for us to explore the transcriptional changes induced by electrically stimulating the ATN. In this manuscript, we describe our methodologies for stereotactically-guided DBS surgery targeting the ATN in adult male Wistar rats. We also discuss the subsequent steps for tissue dissection, RNA isolation, cDNA preparation and quantitative RT-PCR for measuring gene expression changes. This method could be applied and modified for stimulating the basal ganglia and other regions of the brain commonly clinically targeted. The gene expression study described here assumes a candidate target gene approach for discovering molecular players that could be directing the mechanism for DBS.

The mechanism underlying the therapeutic effects of Deep Brain Stimulation (DBS) surgery needs investigation. The methods presented in this manuscript describe an experimental approach to examine the cellular events triggered by DBS by analyzing the gene expression profile of candidate genes that can facilitate neurogenesis post DBS surgery.

تحليل التغييرات التعبير الجيني في الفئران الحصين بعد ديب تحفيز الدماغ الأمامي من مهادي نواة

Deep brain stimulation (DBS) surgery, targeting various regions of the brain such as the basal ganglia, thalamus, and subthalamic regions, is an effective ...

Investigating the Function of Deep Cortical and Subcortical Structures Using Stereotactic Electroencephalography: Lessons from the Anterior Cingulate Cortex

Stereotactic Electroencephalography (SEEG) is a technique used to localize seizure foci in patients with medically intractable epilepsy. This procedure involves the chronic placement of multiple depth electrodes into regions of the brain typically inaccessible via subdural grid electrode placement. SEEG thus provides a unique opportunity to investigate brain function. In this paper we demonstrate how SEEG can be used to investigate the role of the dorsal anterior cingulate cortex (dACC) in cognitive control. We include a description of the SEEG procedure, demonstrating the surgical placement of the electrodes. We describe the components and process required to record local field potential (LFP) data from consenting subjects while they are engaged in a behavioral task. In the example provided, subjects play a cognitive interference task, and we demonstrate how signals are recorded and analyzed from electrodes in the dorsal anterior cingulate cortex, an area intimately involved in decision-making. We conclude with further suggestions of ways in which this method can be used for investigating human cognitive processes.

Stereotactic Electroencephalography (SEEG) is an operative technique used in epilepsy surgery to help localize seizure foci. It also affords a unique opportunity to investigate brain function. Here we describe how SEEG can be used to investigate cognitive processes in human subjects.

التحقيق في وظيفة من أعماق القشرية وتحت القشرية الهياكل عن طريق اللمسي كهربية: دروس من اللحاء الأمامي الحزامية

Stereotactic Electroencephalography (SEEG) is a technique used to localize seizure foci in patients with medically intractable epilepsy. This procedure ...

Live Imaging of the Ependymal Cilia in the Lateral Ventricles of the Mouse Brain

Multiciliated ependymal cells line the ventricles in the adult brain. Abnormal function or structure of ependymal cilia is associated with various neurological deficits. The current ex vivo live imaging of motile ependymal cilia technique allows for a detailed study of ciliary dynamics following several steps. These steps include: mice euthanasia with carbon dioxide according to protocols of The University of Toledo&#8217;s Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC); craniectomy followed by brain removal and sagittal brain dissection with a vibratome or sharp blade to obtain very thin sections through the brain lateral ventricles, where the ependymal cilia can be visualized. Incubation of the brain&#8217;s slices in a customized glass-bottom plate containing Dulbecco&#8217;s Modified Eagle&#8217;s Medium (DMEM)/High-Glucose at 37 &#176;C in the presence of 95%/5% O2/CO2 mixture is essential to keep the tissue alive during the experiment. A video of the cilia beating is then recorded using a high-resolution differential interference contrast microscope. The video is then analyzed frame by frame to calculate the ciliary beating frequency. This allows distinct classification of the ependymal cells into three categories or types based on their ciliary beating frequency and angle. Furthermore, this technique allows the use of high-speed fluorescence imaging analysis to characterize the unique intracellular calcium oscillation properties of ependymal cells as well as the effect of pharmacological agents on the calcium oscillations and the ciliary beating frequency. In addition, this technique is suitable for immunofluorescence imaging for ciliary structure and ciliary protein localization studies. This is particularly important in disease diagnosis and phenotype studies. The main limitation of the technique is attributed to the decrease in live motile cilia movement as the brain tissue starts to die.

Using high-resolution differential interference contrast (DIC) microscopy, an ex vivo observation of the beating of motile ependymal cilia located within the mouse brain ventricles is demonstrated by live-imaging. The technique allows a recording of the unique ciliary beating frequency and beating angle as well as their intracellular calcium oscillation pacing properties.

التصوير المباشر لالبطانة العصبية سيليا في البطينات الجانبية للدماغ الفأر

Multiciliated ependymal cells line the ventricles in the adult brain. Abnormal function or structure of ependymal cilia is associated with various ...

A Simple One-step Dissection Protocol for Whole-mount Preparation of Adult Drosophila Brains

There is an increasing interest in using Drosophila to model human brain degenerative diseases, map neuronal circuitries in adult brains, and study the molecular and cellular basis of higher brain functions. A whole-mount preparation of adult brains with well-preserved morphology is critical for such whole brain-based studies, but can be technically challenging and time-consuming. This protocol describes an easy-to-learn, one-step dissection approach of an adult fly head in less than 10 s, while keeping the intact brain attached to the rest of the body to facilitate subsequent processing steps. The procedure helps remove most of the eye and tracheal tissues normally associated with the brain that can interfere with the later imaging step, and also places less demand on the quality of the dissecting forceps. Additionally, we describe a simple method that allows convenient flipping of the mounted brain samples on a coverslip, which is important for imaging both sides of the brains with similar signal intensity and quality. As an example of the protocol, we present an analysis of dopaminergic (DA) neurons in adult brains of WT (w1118) flies. The high efficacy of the dissection method makes it particularly useful for large-scale adult brain-based studies in Drosophila.

A Simple One-step Dissection Protocol for Whole-mount Preparation of Adult Drosophila Brains

The adult Drosophila brain is a valuable system for studying neuronal circuitry, higher brain functions, and complex disorders. An efficient method to dissect whole brain tissue from the small fly head will facilitate brain-based studies. Here we describe a simple, one-step dissection protocol of adult brains with well-preserved morphology.

وبسيطة خطوة واحدة بروتوكول تشريح لجبل لالجامع إعداد الكبار<em&gt; ذبابة الفاكهة</em&gt; أدمغة

There is an increasing interest in using Drosophila to model human brain degenerative diseases, map neuronal circuitries in adult brains, and study the ...

Sublimation of DAN Matrix for the Detection and Visualization of Gangliosides in Rat Brain Tissue for MALDI Imaging Mass Spectrometry

Sample preparation is key for optimal detection and visualization of analytes in Matrix-assisted Laser Desorption/Ionization (MALDI) Imaging Mass Spectrometry (IMS) experiments. Determining the appropriate protocol to follow throughout the sample preparation process can be difficult as each step must be optimized to comply with the unique characteristics of the analytes of interest. This process involves not only finding a compatible matrix that can desorb and ionize the molecules of interest efficiently, but also selecting the appropriate matrix deposition technique. For example, a wet matrix deposition technique, which entails dissolving a matrix in solvent, is superior for desorption of most proteins and peptides, whereas dry matrix deposition techniques are particularly effective for ionization of lipids. Sublimation has been reported as a highly efficient method of dry matrix deposition for the detection of lipids in tissue by MALDI IMS due to the homogeneity of matrix crystal deposition and minimal analyte delocalization as compared to many wet deposition methods 1,2. Broadly, it involves placing a sample and powdered matrix in a vacuum-sealed chamber with the samples pressed against a cold surface. The apparatus is then lowered into a heated bath (sand or oil), resulting in sublimation of the powdered matrix onto the cooled tissue sample surface. Here we describe a sublimation protocol using 1,5-diaminonaphthalene (DAN) matrix for the detection and visualization of gangliosides in the rat brain using MALDI IMS.

A protocol for the sublimation of DAN matrix onto rat brain tissue for the detection of gangliosides using MALDI Imaging Mass Spectrometry is presented.

التسامي DAN مصفوفة للكشف والتخيل من Gangliosides في الجرذ أنسجة المخ لMALDI التصوير قياس الطيف الكتلي

Sample preparation is key for optimal detection and visualization of analytes in Matrix-assisted Laser Desorption/Ionization (MALDI) Imaging Mass ...

Recording Synaptic Plasticity in Acute Hippocampal Slices Maintained in a Small-volume Recycling-, Perfusion-, and Submersion-type Chamber System

Even though experiments on brain slices have been in use since 1951, problems remain that reduce the probability of achieving a stable and successful analysis of synaptic transmission modulation when performing field potential or intracellular recordings. This manuscript describes methodological aspects that might be helpful in improving experimental conditions for the maintenance of acute brain slices and for recording field excitatory postsynaptic potentials in a commercially available submersion chamber with an outflow-carbogenation unit. The outflow-carbogenation helps to stabilize the oxygen level in experiments that rely on the recycling of a small buffer reservoir to enhance the cost-efficiency of drug experiments. In addition, the manuscript presents representative experiments that examine the effects of different carbogenation modes and stimulation paradigms on the activity-dependent synaptic plasticity of synaptic transmission.

This protocol describes the stabilization of the oxygen level in a small volume of recycled buffer and methodological aspects of recording activity-dependent synaptic plasticity in submerged acute hippocampal slices.

تسجيل اللدونة متشابك في شرائح هيبوكامبال الحاد تحتفظ في صغيرة الحجم-إعادة التدوير، ونضح-، وغمر من نوع نظام الدائرة

Even though experiments on brain slices have been in use since 1951, problems remain that reduce the probability of achieving a stable and successful ...