نعترف المساعدة الماهرة من آني B. كريستنسن، إليزابيث V. أندرسن، بليندا B. Bringtoft ومقدمي الرعاية الحيوانية في وزارة الطب التجريبي، كوبنهاجن الحرم الجامعي، كلية الصحة والعلوم الطبية، جامعة كوبنهاغن، الدنمارك. يعقوب Lønholdt وشكره على مساعدته التقنية الممتازة في تصوير إجراءات. وأيد هذه الدراسة في جزء من مركز LIFEPHARM لفي الجسم الحي الصيدلة وجامعة كوبنهاغن.

تم تنفيذ الإجراءات الموضحة وفقا لبروتوكولات وافق عليها الدنماركية الحيوان التجريب التفتيش تحت إشراف وزارة الأغذية والزراعة ومصايد الأسماك. 1. الدم أخذ العينات من الصافن الجانبي أو عظم الكعب الوريد <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تنفيذ هذا الإجراء دون تخدير ومساعدة من محقق واحد، واحد التعامل مع خنزير غينيا، واحد جمع العينة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> حلق منطقة الجفن من الساق الخلفية مع ماكينة حلاقة كهربائية حتى عروق مرئية. ضمان مساحة كبيرة بما فيه الكفاية لتجنب التدخل الفراء مع موقع الثقب. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع الساق الخلفية في حمام الماء الفاتر وفرك بلطف الساق، مما يجعل من الأوردة المتوسعة وأكثر وضوحا. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مسح الساق مع منشفة نظيفة وتطهير الموقع ثقب بشاش أو قطعة من القطن المبلل الكحول 70٪. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> كبح خنزير غينيا وتمديد الساق الخلفية إلى الأسفل أثناء تطبيق ضغط لطيف على الفور فوق الركبة ر مشتركس توفير ركود. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ثقب الوريد باستخدام إبرة 21 G أو انسيت. جمع مثل الدم، باستخدام مجموعة أو أنبوب شعري. التعامل بلطف الساق للمساعدة في تدفق الدم. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الافراج عن ركود، بمجرد الحصول على العينة. تطبيق قطعة من الشاش أو القطن والصوف مع ضغط لطيف على الموقع ثقب حتى توقف النزيف. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> عودة الحيوان إلى قفصه ورصد لمدة 5-10 دقيقة لضمان الارقاء. </li></ol> 2. أخذ عينات الدم من الوريد الأذن <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تنفيذ هذا الإجراء دون تخدير إما وحدها أو يفضل مع مساعدة من زميل واحد. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تطهير السطح الظهري للأذن باستخدام الشاش أو قطعة من القطن المبلل الكحول 70٪. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تطبيق الضغط الخفيف على قاعدة الأذن لتوفير ركود. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ثقب الوريد باستخدام إبرة أو مشرط 21 G، وجمع الدم. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الافراج عن ركود، بمجرد الحصول على العينة، تطبيق قطعة من الشاش أو القطن والصوف مع جنرال الكتريكتوقف الضغط ntle الى موقع ثقب حتى النزيف. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> عودة الحيوان إلى قفصه ورصد لمدة 5-10 دقيقة لضمان الارقاء. </li></ol> 3. الدم أخذ العينات من الوريد الوداجي <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تنفيذ هذا الإجراء باستخدام مساعدة من محقق إضافي واحد؛ التعامل مع الخنازير الغينية واحد وجمع العينة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تخدير خنزير غينيا مع مخدر مناسبة لكامل مدة هذا الإجراء. مزيج من تلييتامين (0.93 ملغ / كلغ)، zolazepam (0.93 ملغ / كلغ)، زيلازين (1.49 ملغ / كلغ) وبوتورفانول (0.06 ملغ / كلغ) يمكن استخدامها. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع خنزير غينيا مخدرة على ظهرها وسحب بلطف اليدين نحو caudally. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يحلق وتطهير (على سبيل المثال، مع 70٪ كحول) الجزء البطني من الرقبة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> معطف الحقنة مع إما الهيبارين أو EDTA قبل أخذ العينات من أجل الحد من مخاطر تخثر. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> جس الترقوة وإدراج G 25 (أو 23 G) إبرة شنت على 1 مل حقنة ا ف بتقريبية 1 سم الوحشي على خط الوسط على مستوى مفصل الكتف. الحفاظ على حقنة في زاوية تصاعدية وسطي طفيفة أثناء تطبيق ضغط سلبي طفيف. تجنب إتلاف الهياكل ويقع الوريد الوداجي سطحية جدا. إمالة الرقبة من خنزير غينيا إلى الوراء قليلا لتوفير ركود زيادة الوريد. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الافراج عن الأرجل الأمامية عندما يتم الحصول على عينة من الدم، والتخفيف من حدة الركود قبل سحب الإبرة. استخدام قطعة جافة من الشاش أو القطن والصوف لتطبيق ضغط لطيف على الموقع ثقب. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> عودة الحيوان إلى قفص الانتعاش ورصد لضمان الارقاء والتعافي من التخدير. </li></ol>

<ol>
	<li>DeOgburn, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+increased+dietary+cholesterol+with+carbohydrate+restriction+on+hepatic+lipid+metabolism+in+Guinea+pigs.">Effects of increased dietary cholesterol with carbohydrate restriction on hepatic lipid metabolism in Guinea pigs.</a> Comp.Med. 62 (2), 109-115 (2012).</li><li>Fernandez, M., Volek, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Guinea+pigs+a+suitable+animal+model+to+study+lipoprotein+metabolism,+atherosclerosis+and+inflammation.">Guinea pigs a suitable animal model to study lipoprotein metabolism, atherosclerosis and inflammation.</a> Nutr Metab (Lond). 3 (17), (2006).</li><li>Frikke-Schmidt, H., Tveden-Nyborg, P., Birck, M. M., Lykkesfeldt, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High+dietary+fat+and+cholesterol+exacerbates+chronic+vitamin+C+deficiency+in+guinea+pigs.">High dietary fat and cholesterol exacerbates chronic vitamin C deficiency in guinea pigs.</a> Br J Nutr. 105 (1), 54-61 (2011).</li><li>Hem, A., Smith, A. J., Solberg, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Saphenous+vein+puncture+for+blood+sampling+of+the+mouse,+rat,+hamster,+gerbil,+guinea+pig,+ferret+and+mink.">Saphenous vein puncture for blood sampling of the mouse, rat, hamster, gerbil, guinea pig, ferret and mink.</a> Lab Anim. 32 (4), 364-368 (1998).</li><li>Parasuraman, S., Raveendran, R., Kesavan, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Blood+sample+collection+in+small+laboratory+animals.">Blood sample collection in small laboratory animals.</a> J Pharmacol Pharmacother. 1 (2), 87-93 (2010).</li><li>Guillen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=FELASA+guidelines+and+recommendations.">FELASA guidelines and recommendations.</a> J Am Assoc Lab Anim Sci. 51 (3), 311-321 (2012).</li><li>Ye, P., Cheah, I. K., Halliwell, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High+fat+diets+and+pathology+in+the+guinea+pig+Atherosclerosis+or+liver+damage.">High fat diets and pathology in the guinea pig Atherosclerosis or liver damage.</a> Biochim Biophys Acta. 1832 (2), 355-364 (2013).</li><li>Tveden-Nyborg, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Maternal+vitamin+C+deficiency+during+pregnancy+persistently+impairs+hippocampal+neurogenesis+in+offspring+of+guinea+pigs.">Maternal vitamin C deficiency during pregnancy persistently impairs hippocampal neurogenesis in offspring of guinea pigs.</a> PLoS One. 7 (10), 12-18391 (2012).</li><li>Schjoldager, J. G., Tveden-Nyborg, P., Lykkesfeldt, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prolonged+maternal+vitamin+C+deficiency+overrides+preferential+fetal+ascorbate+transport+but+does+not+influence+perinatal+survival+in+guinea+pigs.">Prolonged maternal vitamin C deficiency overrides preferential fetal ascorbate transport but does not influence perinatal survival in guinea pigs.</a> Br J Nutr. 110 (9), 1573-1579 (2013).</li><li>Greulich, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Secretory+products+of+guinea+pig+epicardial+fat+induce+insulin+resistance+and+impair+primary+adult+rat+cardiomyocyte+function.">Secretory products of guinea pig epicardial fat induce insulin resistance and impair primary adult rat cardiomyocyte function.</a> J Cell Mol Med. 15 (11), 2399-2410 (2011).</li><li>Swifka, J., Weiss, J., Addicks, K., Eckel, J., Rosen, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Epicardial+fat+from+guinea+pig+a+model+to+study+the+paracrine+network+of+interactions+between+epicardial+fat+and+myocardium.">Epicardial fat from guinea pig a model to study the paracrine network of interactions between epicardial fat and myocardium.</a> Cardiovasc Drugs Ther. 22 (2), 107-114 (2008).</li><li>Pilny, A. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Clinical+hematology+of+rodent+species.">Clinical hematology of rodent species.</a> Vet.Clin North Am Exot Anim Pract. 11 (3), 523-vii (2008).</li><li>Franco, N. H., Olsson, I. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Scientists+and+the+3Rs:+attitudes+to+animal+use+in+biomedical+research+and+the+effect+of+mandatory+training+in+laboratory+animal+science.">Scientists and the 3Rs: attitudes to animal use in biomedical research and the effect of mandatory training in laboratory animal science.</a> Lab Anim. 48 (1), 50-60 (2014).</li><li>Van, L. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=eAssessing+the+application+of+the+3Rs+a+survey+among+animal+welfare+officers+in+The+Netherlands.">eAssessing the application of the 3Rs a survey among animal welfare officers in The Netherlands.</a> Lab Anim. 47 (3), 210-219 (2013).</li><li>Sloan, R. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High+doses+of+ketamine-xylazine+anesthesia+reduce+cardiac+ischemia-reperfusion+injury+in+guinea+pigs.">High doses of ketamine-xylazine anesthesia reduce cardiac ischemia-reperfusion injury in guinea pigs.</a> J Am Assoc Lab Anim Sci. 50 (3), 349-354 (2011).</li><li>Jacobson, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+anaesthetic+regimen+for+surgical+procedures+in+guinea+pigs.">A novel anaesthetic regimen for surgical procedures in guinea pigs.</a> Lab Anim. 35 (3), 271-276 (2001).</li><li>Saha, J. K., Xia, J., Grondin, J. M., Engle, S. K., Jakubowski, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Acute+hyperglycemia+induced+by+ketamine+xylazine+anesthesia+in+rats+mechanisms+and+implications+for+preclinical+models.">Acute hyperglycemia induced by ketamine xylazine anesthesia in rats mechanisms and implications for preclinical models.</a> Exp Biol Med(Maywood). 230 (10), 777-784 (2005).</li></ol>

الكتاب ليس لديهم ما يكشف. تمت الموافقة على جميع الإجراءات بموجب قانون التجارب على الحيوانات من الدنمارك، وهو ما يتفق مع اتفاقية مجلس أوروبا ETS 123.

بالمقارنة مع الفئران والجرذان والخنازير الغينية هي مخيفة بطبيعتها ويجب أن اقتربت بهدوء والتعامل معها بشكل صحيح من أجل الحد من التوتر. من نقطة الرفق بالحيوان نظر، يتصرف بحذر هو بطبيعة الحال على سبيل الأولوية؛ ومع ذلك، وهذا أيضا يقلل من خطر الآثار المصاحبة للقلق على البيانات التي تم جمعها على سبيل المثال، زيادة مستويات الدم من الستيرويدات القشرية والجلوكوز 12. وبالمثل، فإن التعامل اليومي روض الحيوانات لإجراءات العادية ويمكن أن تستخدم للحد من التوتر إلى أبعد من ذلك. يجب أن اكتسبت الخبرة العملية في تقنية اخذ عينات من الدم خاصة من خلال مراقبة أول عامل من ذوي الخبرة والقيام بعد ذلك هذه التقنية تحت إشراف حتى يتم تحقيق الكفاءة. تقنية اختارت أن تقلل بشكل مثالي سواء الإجهاد وعدم الراحة إلى أدنى حد ممكن ولكن أيضا لضمان بقاء فضلا عن الامتثال مع متطلبات حجم العينة وسهولة الوصول إليها. لجميع طرق اخذ عينات من الدم ينبغي أن يكون عرض تقنيات العقيمتستخدم لتقليل خطر العدوى وضمان جمع العينات غير ملوثة. النهج يتضح لاخذ عينات من الدم تضمن توفير بقاء الحيوان الذي حجم العينة ويتم تحقيق التردد وفقا لمبادئ توجيهية ويمكن أن تطبق جميع لأخذ عينات متكررة في كلتا الدراستين على المدى القصير والطويل 6. وهذا يتيح مراقبة ثابت من الحيوانات الفردية مع مرور الوقت بموجبه خفض التباين وعدد من الحيوانات المدرجة في الامتثال (تخفيض) في 3RS &quot;13،14. التقنيات المعروضة هنا نطاقات مختلفة من حجم العينة يمكن الحصول عليها (بضعة ميكرولتر تصل إلى 1-2 مل) التي ينبغي النظر فيها قبل بدء التجربة. على الرغم من إجراءات لجمع الدم من الوريد الوداجي في الامم المتحدة مخدرة الخنازير الغينية وقد وصفت 12، ونحن نوصي بشدة استخدام التخدير للحد من التوتر وعدم الراحة قدر الإمكان. عند القيام بذلك، ينبغي أن يكون الخيار التخدير متأنذ معالجتها، مشيرا إلى أن الخنازير الغينية هي صعبة المعروف لتخدير وعرض فعالية الاختلاف كبيرة من مخدر فضلا عن حساسية عالية تجاه التنفس التي يسببها الاكتئاب 15،16. كما الوريد الوداجي في خنازير غينيا ليست مرئية ولا أي تخفيض ملموس في ركود / تمدد وريدي قد يزيد الصعوبات أخذ العينات، وبالتالي فمن المستحسن عموما لتجنب تشنجا فازو وكلاء في التخدير مخاليط. وعلاوة على ذلك، والآثار المعروفة للعوامل تخدير معين والتي قد تتداخل مع جمع البيانات المطلوبة على سبيل المثال، آثار القلب والأوعية الدموية و / أو زيادة مستويات السكر في الدم بعد α 2 - الإجراءات ناهض في القوارض ينبغي تقييم 16،17. استخدام تخدير استنشاق مثل الأيزوفلورين قد تكون أيضا خيارا، ولكن كما التنبيب في خنازير غينيا هو يجب أن تؤخذ من الرعاية مهمة صعبة للغاية لتفادي أي تشويش من قبل استنشاق قناع مع موقف رئيس / الرقبة لأن ذلك قد complicأكل الإجراء غير ضروري. معمم مثل التخدير، عن طريق الإستنشاق مطلوب أيضا لثقب في القلب التي قد توفر حجم العينة أكبر. ومع ذلك، ثقب في القلب هو إجراء الطرفية، وبالتالي لا ينطبق على أخذ العينات المتكرر ولن يتم وصف أكثر من ذلك. الآثار السلبية المحتملة مثل النزف، كدمات، وتخثر الدم، وعدوى قد تحدث الندبات التالية ثقب الوريد. في تجربتنا، وخنزير غينيا لا يحمل خطرا متزايدا من مثل هذه المضاعفات غير المرغوب فيها مقارنة نماذج القوارض الأخرى شريطة أن يتم هذا الإجراء كما هو موضح في مخطوطة الحالية. كما الوريد الوداجي لا يمكن تصور من السطح الخارجي، من المهم جدا للتخفيف من الركود قبل سحب الإبرة، وتوفير الإرقاء كاف من أجل تقليل خطر شبه الوريدية نزيف وكدمات. في حال والآثار السلبية، ينبغي دائما أن سعى العلاج من البيطر مسؤولةnarian. لأسباب الرفق بالحيوان جيدة والعلم، يجب أن تعطى اعتبارات خطيرة إلى التأثير المشترك لحجم العينة وتيرة واختيار أسلوب أخذ العينات. تم اختبارها بدقة كل التقنيات اخذ عينات من الدم وصفها وتطبيقها لاخذ عينات من الدم المتكررة في الجسم الحي في الدراسات داخل منشأة أبحاثنا.

خنزير غينيا هو نموذج حيوانات التجارب قيما والتحقق من صحتها بسبب وجود عدد من أوجه التشابه البيولوجية للإنسان مثل شرط وجود امدادات الغذائية من فيتامين C، البروتين الدهني البلازما مقارنة تأييض البروتين الدهني الانزيمات وملامح، وكذلك أوجه الشبه المشتركة مع المشيمة البشرية و وضع ما قبل الولادة 1-3،7،8. هذا يجعل خنزير غينيا نموذج جذاب ومناسب لدراسة آثار الأمراض المرتبطة الحمية مثل مرض غير الكحولية الكبد الدهني وأمراض القلب والأوعية الدموية والآثار المفترضة من نقص فيتامين C ولكن أيضا تأثير على سبيل المثال، التدخل الغذائي الأمهات في البلدان النامية ذرية. وغالبا ما يتطلب أخذ عينات الدم المتكررة في كل من المدى القصير والطويل في الدراسات المجراة. بسبب الاختلافات التشريحية أنواع محددة من تعديل أسلوب أخذ العينات ضروري من أجل الحصول على عينات من الدم في خنازير غينيا بالمقارنة مع نماذج القوارض الأخرى <sup&gt; 4،5. ويشمل هذا الاختلاف في مجرى الأوردة والشرايين، وأيضا أن الخنازير الغينية ليس لها ذيل، وبالتالي لديها متطلبات وخيارات مختلفة لكلا أخذ العينات والتعامل معها. أخذ العينات من الوريد الصافن أو الرصغي، يدفع الحد الأدنى من الراحة والإجهاد في الحيوان و لا يتطلب التخدير 3،9. هذه التقنية تسمح تكرار عينات من كميات صغيرة من الدم (100-400 ميكرولتر)، على سبيل المثال، لتحديد العلامات الكيميائية الحيوية في البلازما. إذا كان حجم أصغر عينة كافية (50-100 ميكرولتر)، وهذا يمكن بسهولة الحصول عليها عن طريق الوريد ثقب الأذن. ويمكن أيضا أن تتم هذه التقنية في الحيوانات واعية ومفيد على سبيل المثال عند قياس مستوى السكر في الدم 10،11. أخذ العينات من حبل الوريد تسمح لجمع كميات أكبر من الدم (1-2 مل) ولكنها تتطلب التخدير. هنا، نقدم أربع تقنيات مختلفة لأخذ عينات الدم إما واعية أو مخدرة خنازير غينيا. بروكedures يتم توفير جميع الإجراءات غير الطرفية التي أحجام العينة وعدد العينات لا تتجاوز المبادئ التوجيهية لجمع الدم في الحيوانات المختبرية 6. هو في مصلحة العلم الجيد وكذلك الرفق بالحيوان أن الإجهاد يجب أن تبقى إلى أدنى حد ممكن. بالتالي، فقط المدربين تدريبا جيدا والشخصية المختصة أن تؤدي الإجراءات الحيوانية.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="944">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Name of Material/ Equipment</td>
			<td style="width:295px;">Company</td>
			<td style="width:119px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:315px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">Electric shaver</td>
			<td style="width:295px;">Wella (Contura), Denmark</td>
			<td style="width:119px;">273207</td>
			<td>Alternative product may be used. Multiple suppliers</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">Syringes&#160;</td>
			<td style="width:295px;">B.Braun-Omnifix-F, Germany</td>
			<td style="width:119px;">9161406V</td>
			<td>Alternative product may be used. Multiple suppliers</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">Needles</td>
			<td style="width:295px;">BD Microlance,Spain</td>
			<td style="width:119px;">301156</td>
			<td>Alternative product may be used. Multiple suppliers</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">Microvette collection tube&#160;</td>
			<td style="width:295px;">Sarstedt, D-51588N&#252;mbrecht, Germany</td>
			<td style="width:119px;">201,288,100</td>
			<td>Alternative product may be used. Multiple suppliers</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">Accu-Check analyzer</td>
			<td style="width:295px;">Roche A/S Diagnostics, Denmark</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>Alternative product may be used. Multiple suppliers</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">Heparin 5000 IE/ml</td>
			<td style="width:295px;">LEO Pharma, Denmark</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>Alternative product may be used. Multiple suppliers</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">Anesthesia</td>
			<td style="width:295px;">Zoletil 50, Chemvet, Denmark</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>Alternative product may be used. Multiple suppliers</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">Anesthesia</td>
			<td style="width:295px;">Narcoxyl vet 20 mg/ml, Intervet, Denmark</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>Alternative product may be used. Multiple suppliers</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">Anesthesia</td>
			<td style="width:295px;">Torbugesic vet 10 mg/ml, Scanvet, Denmark</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>Alternative product may be used. Multiple suppliers</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:216px;">Neutral eye ointment</td>
			<td style="width:295px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>Alternative product may be used. Multiple suppliers</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Gauze or a cotton swab&#160;</td>
			<td style="width:295px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>Alternative product may be used. Multiple suppliers</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Disinfectant (70% alcohol)</td>
			<td style="width:295px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>Alternative product may be used. Multiple suppliers</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

non-terminal blood sampling techniques in guinea pigs

خنازير غينيا تمتلك العديد من أوجه التشابه البيولوجية للإنسان ويتم التحقق من صحة النماذج الحيوانية التجريبية 1-3. ومع ذلك، فإن استخدام خنازير غينيا يمثل حاليا منطقة ضيقة نسبيا من البيانات البحثية وصفية حول منهجية محددة نادرة في المقابل. الميزات التشريحية للخنازير غينيا مختلفة قليلا عن نماذج القوارض الأخرى، وبالتالي تعديل تقنيات أخذ العينات لاستيعاب الاختلافات أنواع محددة، على سبيل المثال، مقارنة مع الفئران والجرذان، ضرورية للحصول على عينات كافية وعالية الجودة. على حد سواء طويلة وقصيرة الأجل في الدراسات المجراة في كثير من الأحيان تتطلب أخذ عينات الدم تتكرر اختيار تقنية ينبغي النظر جيدا من أجل الحد من التوتر وعدم الراحة في الحيوانات ولكن أيضا لضمان بقاء فضلا عن الامتثال مع متطلبات حجم العينة وسهولة الوصول إليها. ويمكن الحصول على عينات من الدم الوريدي في عدد من المواقع في خنازير غينيا على سبيل المثال.، والصافن والوريدالأوردة، كل تقنية تحتوي على كل مزايا وعيوب 4،5. هنا، نقدم أربع تقنيات مختلفة لأخذ عينات الدم إما واعية أو مخدرة خنازير غينيا. الإجراءات يتم توفير جميع الإجراءات غير الطرفية التي أحجام العينة وعدد العينات لا تتجاوز المبادئ التوجيهية لجمع الدم في الحيوانات المختبرية 6. تم اختبارها بدقة كل الأساليب المذكورة وتطبيقها لاخذ عينات من الدم المتكررة في الجسم الحي في الدراسات داخل منشأة أبحاثنا.

تم عرض أربعة أساليب مختلفة لغير الطرفية في الجسم الحي تقنيات أخذ العينات في الدم إما واعية أو مخدرة خنازير غينيا. ويوضح الشكل 1 مسار الجانبي الصافن والوريد الرصغي في خنزير غينيا ومواقع ثقب الممكنة. ويوضح الأوردة الأذن مرئية على السطح الظهري من الأذن خنزير غينيا في الشكل 2. هذه الأوردة يمكن استخدامها لأخذ عينات الدم عند الحاجة فقط حجم صغير جدا. موقف خنزير غينيا لأخذ عينات الدم الوريد هو تظهر في الشكل 3. ويتضح بالطبع من حبل الوريد بواسطة الأسهم، حيث يشير السهم العلوي في موقع ثقب الموصى بها. <img alt="الشكل 1" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51982/51982fig1highres.jpg" width="500" /> إن الوريد الصافن والرصغي الجانبي في خنزير غينيا. وتوضح صورة شخصية 1. مسار والموقع ثقب لأخذ عينات الدم من الصافن الجانبي (السهم العلوي) أو الوريد الرصغي (السهم السفلي) في خنزير غينيا. <img alt="الشكل 2" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51982/51982fig2highres.jpg" width="500" /> الشكل 2. الأوردة الأذن. توضح هذه الصورة الأوردة الأذن (الأسهم) واضحة على السطح الظهري من الأذن خنزير غينيا. هذه الأوردة يمكن استخدامها لأخذ عينات الدم عند الحاجة فقط حجم صغير جدا. <img alt="الرقم 3" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51982/51982fig3highres.jpg" width="500" /> الرقم 3. موقف خنزير غينيا لأخذ العينات الوريد الوداجي الدم، وهذا يوضح موقف خنزير غينيا وموقع ثقب الوريد لأخذ عينات الدم الوريد. الأسهم تشير إلى مجرى الوريد الوداجي، حيث يشير السهم العلوي نحو الموقع ثقب الموصى بها.

Watch this Scientific Journal Video about Non-Terminal Blood Sampling Techniques in Guinea Pigs at JoVE.com

Non-Terminal Blood Sampling Techniques in Guinea Pigs

على الرغم من نموذج معروف، خنزير غينيا يمثل حاليا مكانة في العلوم التجريبية والحيوان هو البيانات المحدود المتاح على تنفيذ معظم الإجراءات. هنا نقدم أربعة أساليب مختلفة لغير محطة في تقنيات أخذ العينات الدموية في الجسم الحي واعية إما مخدرة أو خنازير غينيا.

غير الطرفية تقنيات أخذ العينات الدم في غينيا الخنازير

Guinea pigs possess several biological similarities to humans and are validated experimental animal models1-3. However, the use of guinea pigs currently ...

non-terminal-blood-sampling-techniques-in-guinea-pigs

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Biology

37.3K Views.  University of Copenhagen.  على الرغم من نموذج معروف، خنزير غينيا يمثل حاليا مكانة في العلوم التجريبية والحيوان هو البيانات المحدود المتاح على تنفيذ معظم الإجراءات. هنا نقدم أربعة أساليب مختلفة لغير محطة في تقنيات أخذ العينات الدموية في الجسم الحي واعية إم...

Video: Non-Terminal Blood Sampling Techniques in Guinea Pigs

Seawater Sampling and Collection

This video documents methods for collecting coastal marine water samples and processing them for various downstream applications including biomass concentration, nucleic acid purification, cell abundance, nutrient and trace gas analyses. For today's demonstration samples were collected from the deck of the HMS John Strickland operating in Saanich Inlet. An A-frame derrick, with a multi-purpose winch and cable system, is used in combination with Niskin or Go-Flo water sampling bottles. Conductivity, Temperature, and Depth (CTD) sensors are also used to sample the underlying water mass. To minimize outgassing, trace gas samples are collected first.  Then, nutrients, water chemistry, and cell counts are determined. Finally, waters are collected for biomass filtration. The set-up and collection time for a single cast is ~1.5 hours at a maximum depth of 215 meters. Therefore, a total of 6 hours is generally needed to complete the collection series described here.

This video documents methods for collecting coastal marine water samples and processing them for various downstream applications including biomass concentration, nucleic acid purification, cell abundance, nutrient and trace gas analyses.

أخذ عينات مياه البحر وكوكتيل

This video documents methods for collecting coastal marine water samples and processing them for various downstream applications including biomass ...

Optical Recording of Electrical Activity in Guinea-pig Enteric Networks using Voltage-sensitive Dyes

The enteric nervous system (ENS) is a self-contained network with identified functions, capable of performing complex behaviors in isolation. Its neurons (10 to 25 &mu;m in diameter) are arranged in plexuses that are confined to distinct planes of the gut wall 1; the myenteric plexus can be found between the longitudinal and circular muscle layers, and the submucous plexus between the circular muscle layer and the mucosa. Since the effector systems for these plexuses (transporting epithelium, endocrine cells, immune elements, blood vessels and smooth muscle) are also contained within the gut wall, semi-intact preparations can be dissected that preserve individual components of different reflex pathways. The behavior of the effector systems is controlled by the submucous and myenteric plexuses acting in concert. Therefore, detailed knowledge of synaptic interactions within and between ganglia, and of communication between the plexuses, is essential for understanding normal gastrointestinal function. The ENS, as an intact nervous system, is a unique experimental model in which one can correlate molecular and cellular events with the electrical behavior of the neuronal network and its physiological outputs. Because of the quasi-two-dimensional organization of its plexuses, the ENS is particularly well suited for the study of neural networks using multiple site optical recording techniques that employ voltage-sensitive dyes 2,7,8,9. We will illustrate here the use of a relatively new naphthylstyryl-pyridinium dye (di-4-ANEPPDHQ) 3 that offers multiple advantages over its predecessors, including very low phototoxicity, slow rate of internalization, and remarkable chemical stability. When used in conjunction with a camera that permits sub-millisecond time resolution, this dye allows us to monitor the electrical activity of all the neurons in the field of view with a maximal spatial resolution of ~ 2.5 &mu;m at 100X magnification. At lower magnification (10X or 20X), the sacrifice of single-cell resolution is compensated by a gain in perspective, revealing the intricacies of the inter-ganglionic circuitry.

This protocol illustrates how voltage-sensitive dyes enable optical recording of electrical activity from intact neural networks such as the plexuses of the guinea-pig enteric nervous system, with an adjustable resolution that ranges from single-cells to multi-ganglionic circuitry.

البصرية تسجيل النشاط الكهربائي في غينيا الخنازير المعوية باستخدام شبكات الجهد حساسة ملونات

The enteric nervous system (ENS) is a self-contained network with identified functions, capable of performing complex behaviors in isolation. Its neurons ...

Techniques for Imaging Ca2+ Signaling in Human Sperm

Fluorescence microscopy of cells loaded with fluorescent, Ca2+-sensitive dyes is used for measurement of spatial and temporal aspects of Ca2+ signaling in live cells. Here we describe the method used in our laboratories for loading suspensions of human sperm with Ca2+-reporting dyes and measuring the fluorescence signal during physiological stimulation. Motile cells are isolated by direct swim-up and incubated under capacitating conditions for 0-24 h, depending upon the experiment. The cell-permeant AM (acetoxy methyl ester) ester form of the Ca2+-reporting dye is then added to a cell aliquot and a period of 1 h is allowed for loading of the dye into the cytoplasm. We use visible wavelength dyes to minimize photo-damage to the cells, but this means that ratiometric recording is not possible. Advantages and disadvantages of this approach are discussed. During the loading period cells are introduced into an imaging chamber and allowed to adhere to a poly-D-lysine coated coverslip. At the end of the loading period excess dye and loose cells are removed by connection of the chamber to the perfusion apparatus. The chamber is perfused continuously, stimuli and modified salines are then added to the perfusion header. Experiments are recorded by time-lapse acquisition of fluorescence images and analyzed in detail offline, by manually drawing regions of interest. Data are normalized to pre-stimulus levels such that, for each cell (or part of a cell), a graph showing the Ca2+ response as % change in fluorescence is obtained.

Techniques for Imaging Ca2+ Signaling in Human Sperm

Stimulus-evoked [Ca2+]i signals of individual human sperm are assessed. Motile cells are loaded with Ca2+-sensitive fluorescent dye (AM-ester method) and immobilised in a perfusable chamber. Cells are imaged by time-lapse fluorescence microscopy and stimulated via the perfusing medium. Responses of single cells (or regions) are analysed offline using Excel.

تقنيات التصوير كاليفورنيا 2 + في اشارة الى الحيوانات المنوية البشرية

Fluorescence microscopy of cells loaded with fluorescent, Ca2+-sensitive dyes is used for measurement of spatial and temporal aspects of Ca2+ signaling in ...

Patch Clamp and Perfusion Techniques for Studying Ion Channels Expressed in Xenopus oocytes

The protocol presented here is designed to study the activation of the large conductance, voltage- and Ca2+-activated K+ (BK) channels. The protocol may also be used to study the structure-function relationship for other ion channels and neurotransmitter receptors1. BK channels are widely expressed in different tissues and have been implicated in many physiological functions, including regulation of smooth muscle contraction, frequency tuning of inner hair cells and regulation of neurotransmitter release2-6. BK channels are activated by membrane depolarization and by intracellular Ca2+ and Mg2+ 6-9. Therefore, the protocol is designed to control both the membrane voltage and the intracellular solution. In this protocol, messenger RNA of BK channels is injected into Xenopus laevis oocytes (stage V-VI) followed by 2-5 days of incubation at 18&deg;C10-13. Membrane patches that contain single or multiple BK channels are excised with the inside-out configuration using patch clamp techniques10-13. The intracellular side of the patch is perfused with desired solutions during recording so that the channel activation under different conditions can be examined. To summarize, the mRNA of BK channels is injected into Xenopus laevis oocytes to express channel proteins on the oocyte membrane; patch clamp techniques are used to record currents flowing through the channels under controlled voltage and intracellular solutions.

Patch Clamp and Perfusion Techniques for Studying Ion Channels Expressed in Xenopus oocytes

Ionic current of BK channels is recorded using patch clamp techniques. BK channels are expressed in Xenopus oocytes by injecting messenger RNA. The intracellular solution during patch clamp recordings is controlled by a perfusion system.

أعربت المشبك التصحيح وتقنيات الإرواء لدراسة في قنوات ايون القيطم البويضات

The protocol presented here is designed to study the activation of the large conductance, voltage- and Ca2+-activated K+ (BK) channels. The protocol may ...

Isolation and Culture of Pulmonary Endothelial Cells from Neonatal Mice

Endothelial cells provide a useful research model in many areas of vascular biology. Since its first isolation 1, human umbilical vein endothelial cells (HUVECs) have shown to be convenient, easy to obtain and culture, and thus are the most widely studied endothelial cells. However, for research focused on processes like angiogenesis, permeability or many others, microvascular endothelial cells (ECs) are a much more physiologically relevant model to study 2. Furthermore, ECs isolated from knockout mice provide a useful tool for analysis of protein function ex vivo. Several approaches to isolate and culture microvascular ECs of different origin have been reported to date 3-7, but consistent isolation and culture of pure ECs is still a major technical problem in many laboratories. Here, we provide a step-by-step protocol on a reliable and relatively simple method of isolating and culturing mouse lung endothelial cells (MLECs). In this approach, lung tissue obtained from 6- to 8-day old pups is first cut into pieces, digested with collagenase/dispase (C/D) solution and dispersed mechanically into single-cell suspension. MLECS are purified from cell suspension using positive selection with anti-PECAM-1 antibody conjugated to Dynabeads using a Magnetic Particle Concentrator (MPC). Such purified cells are cultured on gelatin-coated tissue culture (TC) dishes until they become confluent. At that point, cells are further purified using Dynabeads coupled to anti-ICAM-2 antibody. MLECs obtained with this protocol exhibit a cobblestone phenotype, as visualized by phase-contrast light microscopy, and their endothelial phenotype has been confirmed using FACS analysis with anti-VE-cadherin 8 and anti-VEGFR2 9 antibodies and immunofluorescent staining of VE-cadherin. In our hands, this two-step isolation procedure consistently and reliably yields a pure population of MLECs, which can be further cultured. This method will enable researchers to take advantage of the growing number of knockout and transgenic mice to directly correlate in vivo studies with results of in vitro experiments performed on isolated MLECs and thus help to reveal molecular mechanisms of vascular phenotypes observed in vivo.

Here, we describe a protocol for isolation and culture of murine pulmonary endothelial cells. This method comprises mechanic and enzymatic lung tissue dissociation as well as a 2-step purification process using anti-PECAM-1 and anti-ICAM-2 antibodies conjugated to magnetic beads, which produces a pure endothelial cell population of mostly microvascular origin.

العزلة والثقافة في الخلايا البطانية الرئوي من الفئران حديثي الولادة

Endothelial cells provide a useful research model in many areas of vascular biology. Since its first isolation 1, human umbilical vein endothelial cells ...

Techniques for the Analysis of Extracellular Vesicles Using Flow Cytometry

Extracellular Vesicles (EVs) are small, membrane-derived vesicles found in bodily fluids that are highly involved in cell-cell communication and help regulate a diverse range of biological processes. Analysis of EVs using flow cytometry (FCM) has been notoriously difficult due to their small size and lack of discrete populations positive for markers of interest. Methods for EV analysis, while considerably improved over the last decade, are still a work in progress. Unfortunately, there is no one-size-fits-all protocol, and several aspects must be considered when determining the most appropriate method to use. Presented here are several different techniques for processing EVs and two protocols for analyzing EVs using either individual detection or a bead-based approach. The methods described here will assist with eliminating the antibody aggregates commonly found in commercial preparations, increasing signal&#8211;to-noise ratio, and setting gates in a rational fashion that minimizes detection of background fluorescence. The first protocol uses an individual detection method that is especially well suited for analyzing a high volume of clinical samples, while the second protocol uses a bead-based approach to capture and detect smaller EVs and exosomes.

Many different methods exist for the measurement of extracellular vesicles (EVs) using flow cytometry (FCM). Several aspects should be considered when determining the most appropriate method to use. Two protocols for measuring EVs are presented, using either individual detection or a bead-based approach.

تقنيات لتحليل خارج الخلية الحويصلات عن طريق التدفق الخلوي

Extracellular Vesicles (EVs) are small, membrane-derived vesicles found in bodily fluids that are highly involved in cell-cell communication and help ...

Dried Blood Spots - Preparing and Processing for Use in Immunoassays and in Molecular Techniques

The idea of collecting blood on a paper card and subsequently using the dried blood spots (DBS) for diagnostic purposes originated a century ago. Since then, DBS testing for decades has remained predominantly focused on the diagnosis of infectious diseases especially in resource-limited settings or the systematic screening of newborns for inherited metabolic disorders and only recently have a variety of new and innovative DBS applications begun to emerge. For many years, pre-analytical variables were only inappropriately considered in the field of DBS testing and even today, with the exception of newborn screening, the entire pre-analytical phase, which comprises the preparation and processing of DBS for their final analysis has not been standardized. Given this background, a comprehensive step-by-step protocol, which covers al the essential phases, is proposed, i.e., collection of blood; preparation of blood spots; drying of blood spots; storage and transportation of DBS; elution of DBS, and finally analyses of DBS eluates. The effectiveness of this protocol was first evaluated with 1,762 coupled serum/DBS pairs for detecting markers of hepatitis B virus, hepatitis C virus, and human immunodeficiency virus infections on an automated analytical platform. In a second step, the protocol was utilized during a pilot study, which was conducted on active drug users in the German cities of Berlin and Essen.

The preparing and processing of dried blood spots (DBS) for their final analysis are still poorly standardized for most diagnostic applications. To overcome this shortcoming, a comprehensive step-by-step protocol is suggested and subsequently evaluated with regard to its effectiveness for detecting markers of viral infections.

بقع الدم المجفف-إعداد وتجهيز لاستخدامها في تحديدكم والتقنيات الجزيئية

The idea of collecting blood on a paper card and subsequently using the dried blood spots (DBS) for diagnostic purposes originated a century ago. Since ...

Sampling Blood from the Lateral Tail Vein of the Rat

Blood samples are commonly obtained in many experimental contexts to measure targets of interest, including hormones, immune factors, growth factors, proteins, and glucose, yet the composition of the blood is dynamically regulated and easily perturbed. One factor that can change the blood composition is the stress response triggered by the sampling procedure, which can contribute to variability in the measures of interest. Here we describe a procedure for blood sampling from the lateral tail vein in the rat. This procedure offers significant advantages over other more commonly used techniques. It permits rapid sampling with minimal pain or invasiveness, without anesthesia or analgesia. Additionally, it can be used to obtain large volume samples (upwards of 1 ml in some rats), and it may be used repeatedly across experimental days. By minimizing the stress response and pain resulting from blood sampling, measures can more accurately reflect the true basal state of the animal, with minimal influence from the sampling procedure itself.

Blood samples are useful for assessing biomarkers of physiological states or disease in vivo. Here we describe the methodology to sample blood from the lateral tail vein in the rat. This method provides rapid samples with minimal pain and invasiveness.

أخذ عينات الدم من الوريد الذيل الأفقي من الفئران

Blood samples are commonly obtained in many experimental contexts to measure targets of interest, including hormones, immune factors, growth factors, ...

Micron-scale Phenotyping Techniques of Maize Vascular Bundles Based on X-ray Microcomputed Tomography

It is necessary to accurately quantify the anatomical structures of maize materials based on high-throughput image analysis techniques. Here, we provide a 'sample preparation protocol' for maize materials (i.e., stem, leaf, and root) suitable for ordinary microcomputed tomography (micro-CT) scanning. Based on high-resolution CT images of maize stem, leaf, and root, we describe two protocols for the phenotypic analysis of vascular bundles: (1) based on the CT image of maize stem and leaf, we developed a specific image analysis pipeline to automatically extract 31 and 33 phenotypic traits of vascular bundles; (2) based on the CT image series of maize root, we set up an image processing scheme for the three-dimensional (3-D) segmentation of metaxylem vessels, and extracted two-dimensional (2-D) and 3-D phenotypic traits, such as volume, surface area of metaxylem vessels, etc. Compared with traditional manual measurement of vascular bundles of maize materials, the proposed protocols significantly improve the efficiency and accuracy of micron-scale phenotypic quantification.

We provide a novel method to improve the X-ray absorption contrast of maize tissue suitable for ordinary microcomputed tomography scanning. Based on CT images, we introduce a set of image-processing workflows for different maize materials to effectively extract microscopic phenotypes of vascular bundles of maize.

تقنيات Phenotyping ميكرون-مقياس الذرة حزم وعائية استناداً إلى التصوير المقطعي بالأشعة السينية ميكروكومبوتيد

It is necessary to accurately quantify the anatomical structures of maize materials based on high-throughput image analysis techniques. Here, we provide a ...

Gonadectomy and Blood Sampling Procedures in the Small Size Teleost Model Japanese Medaka (Oryzias latipes)

Sex steroids, produced by the gonads, play an essential role in brain and pituitary tissue plasticity and in the neuroendocrine control of reproduction in all vertebrates by providing feedback to the brain and pituitary. Teleost fishes possess a higher degree of tissue plasticity and variation in reproductive&#160;strategies compared to mammals and appear to be useful models to investigate the role of sex steroids and the mechanisms by which they act. The removal of the main source of sex steroid production using gonadectomy together with blood sampling to measure steroid levels has been well-established and fairly feasible in bigger fish and is a powerful technique to investigate the role and effects of sex steroids. However, these techniques raise challenges when implemented in small size teleost models. Here, we describe the step-by-step procedures of gonadectomy in both males and female Japanese medaka followed by blood sampling. These protocols are shown to be highly feasible in medaka indicated by a high survival rate, safety for the life span and phenotype of the fish, and reproducibility in terms of sex steroid clearance. The use of these procedures combined with the other advantages of using this small teleost model will greatly improve the understanding of feedback mechanisms in the neuroendocrine control of reproduction and tissue plasticity provided by sex steroids in vertebrates.

Gonadectomy and Blood Sampling Procedures in the Small Size Teleost Model Japanese Medaka Oryzias latipes

The article describes a quick protocol to gonadectomize and sample blood from the small teleost fish, using Japanese medaka (Oryzias latipes) as a model, to investigate the role of sex steroids in animal physiology.

إجراءات استئصال الغدد و أخذ عينات الدم في نموذج تيليوست صغير الحجم الياباني ميداكا (Oryzias latipes)

Sex steroids, produced by the gonads, play an essential role in brain and pituitary tissue plasticity and in the neuroendocrine control of reproduction in ...