Our study was conducted with the permission of United States Sugar Corporation. We want to thank R. Raid, S. Raid and T. Lang for their assistant. We also M. Stanback and three anonymous reviewers for suggestions that improved this manuscript.

Sürü Trap Kutuları 1. İnşaat NOT: 1.1 ve 1.2 adımları olarak oğul tuzak yapımı için iki alternatif protokoller vardır dahildir. tuzak kutuları inşa edilebilir birkaç ek yolu vardır. Biz deneylerde onları test ettik ve başarılı olmuştur çünkü aşağıdaki iki yöntem burada sunulmuştur. Her iki protokol için, 2 cm kalınlığında olmayan basınç tedavi kontrplak 1.3 cm kullanın. <ol><li> Sürü Trap Protokol Seçenek 1 İnşaatı: bir tuzak Kutusu Bina <ol><li> kontrplak 30 cm x 30 cm altı parça kesin. </li><li> çivi veya vida ile birlikte Kutunun dört kenarı, takın. </li><li> çivi veya vida ile alt parça takın. </li><li> vida veya tellerle üst parça takın. <ol><li> üst sabitlemek için çivi kullanmayın. Üst arıları çıkmak ve kutuyu temizlemek için çıkarılabilir olmalıdır. </li></ol></li><li> 2.5 cm alt kenardan tuzak kutunun bir yüzeyinin ortasında 2.5 cm delik delin. </li><li> S astarı uygulayınealant veya hava şartlarından ahşap korumak için tuzak kutusunun dışına boya. <ol><li> tuzak kutusunun içine boya veya dolguları sürmeyin. Bu itici ya da arılar için toksik olabilir. </li></ol></li></ol></li><li> Kullanım Standart Derin kovan Gövde: 2 Swarm Trap Kutusu Protokol Seçeneği İnşaatı <ol><li> Yerel bir arı malzemeleri satan bir mağazadan standart bir 10 kare derin kovan vücudu edinin. </li><li> genişliğinde 41.3 cm her ölçüm 50,8 cm uzunluğunda kontrplak bir alt ve üst kesti. </li><li> çivi veya vida ile alt parça takın. </li><li> vida veya tellerle üst parça takın. <ol><li> üst sabitlemek için çivi kullanmayın. Üst arıları çıkmak ve kutuyu temizlemek için çıkarılabilir olmalıdır. </li></ol></li><li> 2.5 cm alt kenardan tuzak kutusunun bir yanı üzerinde ortasında 2.5 cm delik delin. </li><li> hava koşullarından ahşap korumak için tuzak kutusunun dışına astar, dolgu macunu veya boya uygulayın. <ol><li> herhangi bir boya veya dolguları sürmeyintuzak kutusunun içinde. Bu itici ya da arılar için toksik olabilir. </li></ol></li></ol></li></ol> Feromon Lure 2. Hazırlık <ol><li> : 1 oranında bir 2 de sitral ve geraniol bir karışım hazırlayın. </li><li> bir çırpıda üstü 1.5 ml polipropilen mikrosantrifüj tüp içine bu karışımdan 1 ml yerleştirin. </li><li> ışıktan korumak için alüminyum folyo ile lures sarın. Not: santrifüj tüpünün kapağı bir itme pimi ile delinir monte sürüsü tuzağı yerleştirildiğinde. Not: Yemler A oda sıcaklığında karanlık bir yerde ya da daha uzun depolama için saklanabilir -10 ° C sıcaklıkta dondurucuya. </li></ol> Sürü Trap kutular 3. Kurulum NOT: adımlarda 3.1 ve 3.2 sunulan sürüsü tuzak kutuları montaj için iki alternatif protokoller vardır. <ol><li> Bir Post Kurulum: Swarm Trap Kutu Protokolü 1. Seçenek montajı <ol><li> zemine 10 cm basınç işlenmiş ahşap çit posta yoluyla 10 cm koyun 10 mkuş yuva kutusu bulunduğu yerden 15 m. </li><li> 20 cm 20 cm boyutlarında 1.3 cm kalınlığında basınç işlenmiş ahşap bir asma panosu oluşturun. </li><li> Kutunun üst üzerinde 10 cm, tuzak kutusunun bir tarafında ortasında asılı kartını hizalayın. yönetim kurulu her iki tarafında en az iki çivi veya vida ile kutuya kartını sabitleyen. </li><li> tuzak kutusu arılar tarafından kolonize edildiğinde güvenli ve kaldırma için kolay bir yükseklikte (1.5 m ile 3 m) de yazı üzerine tuzak kutusunun üzerine yerleştirin. asılı tahta takarak mesaja kutuyu vidalayın. yaklaşık 5 cm asılı kurulu üst altında bir vida yerleştirin ve vidalayın. <ol><li> onlar kaldırmak zordur, çünkü çivi kullanmayın. </li></ol></li></ol></li><li> Bir Tree Kurulum: Swarm Trap Kutu Protokolü Seçenek 2 montajı <ol><li> Kutunun her iki tarafında üst arka köşesinde 5 mm delik delin. </li><li> deliklerden bir tel geçirin. Not: Bu protokolü kullanarak Eğer EASI olacaker kutusunun üst güvence önce deliklerden tel koymak. </li><li> kuş yuva kutusu bulunduğu yerden yaklaşık 10 m 15 m uzaklıkta bir ağaç seçin. <ol><li> Birisi kuş kutusunun durumu hakkında kontrol ettiğinde, arılar tarafından kolonize tuzak kutuları savunmacı olmaya arılar neden rahatsız olabilir, çünkü kuş kutuları aynı ağaçlarda tuzak kutuları koymayınız. </li></ol></li><li> ağacın etrafında 1,5 m yerden 3 m tel sabitleyin. Not: ağacı korumak için, bir kambiyum koruyucu tel çevresinde kullanılabilir. <ol><li> o devrilebilir etmediğini emin kutu seviyesi ve güvenli olduğundan emin olun. kutu varsa eklenen istikrar için bir ağaç dalı üzerinde dinlenmiş olabilir. </li></ol></li></ol></li></ol> Feromon Lure 4. eklenmesi <ol><li> 2. bölümde bir önceden hazırlanmış cazibesi alın ve bir raptiye ile tüpün üst delinme. </li><li> inst sonra girişine yakın alt tuzak kutusunun içinde cazibesine yerleştirinkutusunu monte ederken sağlamak için allation dışarı girmemektedir. </li></ol> Permethrin ile Bird Nest Box 5. Tedavi <ol><li> Sadece kuşlar kümes kullanılmak üzere etiketlenmiş veya kafesli bir permetrin ürünü seçin. </li><li> karıştırma ve uygulama için etiket talimatları izleyin DİKKAT: Etiket önerileri üzerinde herhangi bir kişisel koruma yönergeleri izleyin. </li><li> sıvı 3.7 L el pompası püskürtücü kullanılarak kutunun kenarlarını kapalı çalışır noktaya kadar tamamen yuva kutunun içini püskürtün. Not: Nest kutuları önce veya kurulumdan sonra tedavi edilebilir. </li></ol> Bal Arısı tarafından işgal edilmiş bir tuzak Box 6. Kaldırma <ol><li> küçük bir havlu ile giriş deliğini takın. DİKKAT: bal arıları gelen sokmaları önlemek için uygun koruyucu giysiler giyin. <ol><li> sürüsü öldürülecek ise, yani en kısa sürede keşfettiği gibi yapın. sürüsü kullanılacak ise, u (arılar tam bunları kaldırmak için denemeden önce tuzak kutuları kolonize izinsually yaklaşık 2 hafta). Mümkünse (bütün arılar içinde olduğunda), geceleri işgal tuzak kutuları kaldırın. tuzak giriş geceleri takılabilir ve daha sonra kutu gündüz ertesi sabah kaldırıldı. Not: Geceleri arılar etrafında çalışırken kırmızı filtrelenmiş ışık kullanın. </li></ol></li><li> görevinden kutuyu sökün veya ağacının yanındaki kutuyu tutan teli kesti. </li><li> (Uzakta en az 4 km) yeni yerine taşımak ve giriş deliğinden dışarı havlu çekin. </li></ol> Tuzak Kutusunda Arı Kolonisi 7. İmha Not: Africanized bal arıları korumak için yasadışı olduğu yerlerde, koloninin imha garanti edilebilir. Eğer öyleyse, iki protokol burada sunulmuştur. <ol><li> Colony Solarizing <ol><li> küçük bir havlu ile giriş deliğini takın. DİKKAT: bal arıları gelen sokmaları önlemek için uygun koruyucu giysiler giyin. </li><li> görevinden kutuyu sökün veya ağacının yanındaki kutuyu tutan teli kesti. </li><li> Enclose bir plastik torba içinde tamamen tuzak kutunun mühür ve birkaç gün boyunca tam güneş bırakın ve DİKKAT: bal arıları gelen sokmaları önlemek için uygun koruyucu giysiler giyin. </li><li> Ölü arılar ve tarak kaldırarak kutuyu temizleyin. </li></ol></li><li> Bir Böcek Sprey Kullanımı <ol><li> tuzak kutusunun içine sprey arıları öldürmek için kullanılmak üzere etiketlenmiş bir insektisit spreyi kullanın. DİKKAT: insektisit etiket talimatları izleyin ve bal arıları gelen sokmaları önlemek için uygun kişisel koruyucu ekipman kullanın. </li><li> giriş Tak ve 24 saat kutusunu bırakın. </li><li> Ölü arılar ve tarak kaldırarak kutuyu temizleyin. Not: artık insektisit çıkarmak için tuzak kutusu sabunlu su çözeltisi ile içini temizlemek tekrar kullanmak için. iyice durulayın ve tekrar monte etmeden önce tamamen kurumasını bekleyin. </li></ol></li><li> bir insektisit bir köpük kullanılması <ol><li> Bir deterjan bazlı bir köpük ile işgal tuzak tüm boşluğu doldurmak. (DİKKAT: Uçan böcekleri yok etme üzerine etiket talimatları izleyinki pestisit ve uygun kişisel koruyucu ekipman kullanımı ve) bal arıları gelen sokmaları önlemek için uygun koruyucu giysiler giyin. Not: Köpük ticari haşere kontrol köpük jeneratörü veya basınçlı hava yangın söndürücü ile uygulanabilir. Not: Bir yangın söndürücü kullanmak için: yerleştirin su 3.8 L 9,5 L yangın söndürücü içine, söndürücü mühür, ajan (ya da bulaşık yıkama deterjanı) köpük 190 ml ekleyin ve / metrekare 100-125 lira basınçla. inç (psi). Kullanımı şiddetle ajitasyon ve tuzak taşan olana kadar köpük uygulamak için hemen önce. Not: Köpük spiracles giren ve trakea engelleyerek 60 saniye içinde arılar öldürür. </li><li> giriş Tak ve 24 saat kutusunu bırakın. </li><li> Ölü arılar ve tarak kaldırarak kutuyu temizleyin. Not: artık insektisit çıkarmak için tuzak kutusu sabunlu su çözeltisi ile içini temizlemek tekrar kullanmak için. iyice durulayın ve tekrar monte etmeden önce tamamen kurumasını bekleyin. &lt;/ Li&gt; </ol></li></ol>

<ol>
	<li>Winston, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+biology+and+management+of+Africanized+honey+bees.">The biology and management of Africanized honey bees.</a> Annu Rev Entomol. 37, 173-193 (1992).</li><li>Schmidt, J. O., Hurley, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Selection+of+nest+cavities+by+Africanized+and+European+honey+bees.">Selection of nest cavities by Africanized and European honey bees.</a> Apidologie. 26, 467-475 (1995).</li><li>Eadie, J., Sherman, P., Semel, B., Casro, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Conspecific+Brood+Parasitism,+Population+Dynamics,+and+the+Conservation+of+Cavity-Nesting+Birds.">Conspecific Brood Parasitism, Population Dynamics, and the Conservation of Cavity-Nesting Birds.</a> In: Behavioral Ecology and Conservation Biology. , 306-340 (1998).</li><li>Newton, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+role+of+nest+sites+in+limiting+the+numbers+of+hole-nesting+birds:+a+review.">The role of nest sites in limiting the numbers of hole-nesting birds: a review.</a> Biol Conserv. 70, 265-276 (1994).</li><li>White, T. H., Abreu-Gonz&#225;lez, W., Toledo-Gonz&#225;lez, M., Torres-B&#225;ez, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=From+the+field:+artificial+nest+cavities+for+Amazona+parrots.">From the field: artificial nest cavities for Amazona parrots.</a> Wildl Soc Bull. 33, 756-760 (2005).</li><li>Vaughan, C., Nemeth, N., Marineros, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ecology+and+management+of+natural+and+artificial+Scarlet+Macaw+(Ara+macao)+nest+cavities+in+Costa+Rica.">Ecology and management of natural and artificial Scarlet Macaw (Ara macao) nest cavities in Costa Rica.</a> Ornitol Neotrap. 14, 381-396 (2003).</li><li>WCS Guatemala Program. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Integrated+interventions+to+conserve+Scarlet+Macaws+as+flagships+for+the+Maya+Biosphere+Reserve,+Guatemala.">Integrated interventions to conserve Scarlet Macaws as flagships for the Maya Biosphere Reserve, Guatemala.</a> 2009-2010 Report to BBC Wildlife Fund. , (2011).</li><li>Fish and Wildlife Service. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Puerto Rican Parrot (Amazona vittata) 5-Year Review: Summary and Evaluation. , (2008).</li><li>Berkunsky, I., DiazLuque, J. A., Kacoliris, F. P., Daniele, G., Milpacher, S., Gilardi, J. D., Martin, S., Eckles, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=10+Years:+Blue-throated+Macaw+Conservation.">10 Years: Blue-throated Macaw Conservation.</a> PsittaScene. 24, 3-5 (2012).</li><li>Synder, N., McGowen, P., Gilardi, J. D., Grajal, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Parrots: Status Survey and Conservation Action Plan 2000-2004. , (2000).</li><li>Delnicki, D. E., Bolen, E. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Use+of+Black-Bellied+Whistling+duck+nest+sites+by+other+species.">Use of Black-Bellied Whistling duck nest sites by other species.</a> SW Naturalist. 22, 275-277 (1977).</li><li>Twedt, D. J., Henne-Kerr, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Artificial+Cavities+Enhance+Breeding+Bird+Densities+in+Managed+Cottonwood+Forests.">Artificial Cavities Enhance Breeding Bird Densities in Managed Cottonwood Forests.</a> Wildl Soc Bull. 27, 680-687 (2001).</li><li>Carlile, N., Priddel, D., Zino, F., Natividad, C., Wingate, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+review+of+four+successful+recovery+programmes+for+threatened+sub-tropical+petrels.">A review of four successful recovery programmes for threatened sub-tropical petrels.</a> Mar Ornithol. 31, 185-192 (2003).</li><li>Oldroyd, B. P., Lawler, S. H., Crozier, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Do+feral+honey+bees+(Apis+mellifera)+and+regent+parrots+(Polytelis+anthopeplus)+compete+for+nest+sites.">Do feral honey bees (Apis mellifera) and regent parrots (Polytelis anthopeplus) compete for nest sites.</a> Aust J Ecol. 19, 444-450 (1994).</li><li>Downs, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Artificial+nest+boxes+and+wild+Cape+Parrots+Poicephalus+robustus:+persistence+pays+off.">Artificial nest boxes and wild Cape Parrots Poicephalus robustus: persistence pays off.</a> Ostrich. 76, 222-224 (2005).</li><li>Seeley, T. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Measurement+of+Nest+Cavity+Volume+by+the+Honey+Bee+(Apis+mellifera).">Measurement of Nest Cavity Volume by the Honey Bee (Apis mellifera).</a> Behav Ecol Sociobiol. 2, 201-227 (1977).</li><li>Schneider, S. S., DeGrandi-Hoffman, G., Smith, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+African+Honey+Bee:+Factors+contributing+to+a+successful+biological+invasion.">The African Honey Bee: Factors contributing to a successful biological invasion.</a> Annu Rev Entomol. 49, 351-376 (2004).</li><li>Seely, T. D., Visscher, P. K., Passino, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Group+decision+making+in+honey+bee+swarms.">Group decision making in honey bee swarms.</a> Behav Ecol Sociobiol. 94, 220-229 (2006).</li><li>Taylor, K. S., Waller, G. D., Crowder, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Impairment+of+a+classical+conditioning+response+of+the+honey+bee+(Apis+mellifera+L.)+by+sublethal+doses+of+synthetic+pyrethroid+insecticides.">Impairment of a classical conditioning response of the honey bee (Apis mellifera L.) by sublethal doses of synthetic pyrethroid insecticides.</a> Apidologie. 18, 243-252 (1987).</li><li>Ingram, E. M., Augustin, J., Ellis, M. D., Siegfried, B. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evaluating+sub-lethal+effects+of+orchard-applied+pyrethroids+using+viedo-tracking+software+to+quantify+honey+bee+behaviors.">Evaluating sub-lethal effects of orchard-applied pyrethroids using viedo-tracking software to quantify honey bee behaviors.</a> Chemosphere. 135, 272-277 (2015).</li><li>Rieth, J. P., Levin, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+repellent+effect+of+two+pyrethroid+insecticides+on+the+honey+bee.">The repellent effect of two pyrethroid insecticides on the honey bee.</a> Physiol Entomol. 13, 213-218 (1988).</li><li>Efstathion, C. A., Bardunias, P. M., Boyd, J. D., William, K. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+push-pull+integrated+pest+management+scheme+for+preventing+use+of+parrot+nest+boxes+by+invasive+Africanized+honey+bees.">A push-pull integrated pest management scheme for preventing use of parrot nest boxes by invasive Africanized honey bees.</a> J Field Ornithol. 86, 65-72 (2015).</li><li>Seeley, T. D., Morse, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nest+site+selection+by+the+honey+bee,+Apis+mellifera.">Nest site selection by the honey bee, Apis mellifera.</a> Insect Sco. 25, 323-337 (1978).</li><li>Schmidt, J. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Attraction+of+reproductive+honey+bee+swarms+to+artificial+nests+by+nasonov+pheromone.">Attraction of reproductive honey bee swarms to artificial nests by nasonov pheromone.</a> J Chem Ecol. 20, 1053-1056 (1994).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

Son derece başarılı bir istilacı böcek 17 olarak AHB onların aralığı boyunca kavite-yuvalama kuşlar için önemli bir rakip oluşturmaktadır. Burada sunulan protokol AHB ile kuş yuva kutuları kolonizasyon oranlarını azaltmak için tasarlanmıştır. Bu tasarımın ana bileşenleri 1) itici ve kuş güvenli insektisit, permetrin kullanımı yer alır; 2) Arılar için alternatif bir yuva sitenin sağlanması; ve 3) tuzak kutuları içinde bir çekici feromon kullanımı. Yeni bir yuva sitesi 18 seçerken Arılar genellikle &quot;doğru&quot; karar. kuş yuva kutuları daha tuzak kutuları daha cazip hale seçilen eski varlık olasılığını artıracaktır. Özellikle, tuzak kutuları tavan 23 daha yere yakın bulunan küçük bir giriş deliği olmalıdır. Son olarak, yüksek kutuları bal arıları tarafından tercih olma eğilimindedir. AHB EHB 2&#39;den yuva siteleri hakkında çok daha az choosey çünkü Ancak, feromon attr en önemli bileşenidiraktiflik 24. Bu protokol, çeşitli durumlarda uyacak şekilde adapte edilebilir. bal arılarının çok yüksek yoğunluğu olan alanlarda, bir yuva kutu başına iki tuzakları yükleyebilirsiniz. uçurum yuvalama kuşlar için tuzaklar bir yuva boşluğuna veya yukarıda ve aşağıda yer paralel içine çekilir edilebilir. Tuzak kutuları ulaşılması zor alanlarda kolay kaldırılması için kasnak sistemlerine yerleştirilebilir. Africanized bal arılarının bir kaynıyordu sezon ve konumu değişir bir kaçma sezon var. Genellikle swarming çiçek zirve çiçeklenme dönemine rastlar. Arıların tüm koloni nedeniyle genellikle yuva sitenin bir eksiklik ya da bozulma, bir yuva siteyi terk zaman kaçma oluşur. Mevsim olduğunda tahmin etmek önemlidir. kaynıyordu ve kaçma değişir zamanlaması ve sıklığı ve genellikle literatürde olduğundan, bir bilgi almak için yerel arıcılar veya tarımsal kurumları başvurmalısınız. Bu permetrin a daha hedefli uygulama için izin vereceknd / veya cezbeder. Ayrıca, bir yönetim planı bu protokolün başarısı için esastır. İşgal altındaki tuzak kutuları (en az üç hafta) düzenli olarak izlenir ve kaydırılması ya da imha edilmesi gerekir. protokol etkili olabilmesi için kolonize Arılar için kullanılabilir tuzak kutuları bakım önemlidir. Genel amaç bir alanda arıların nüfusu azaltmak için değil, onlara alternatif yuva siteleri vermek değildir. Güvenlik her zaman bir öncelik olmalıdır. Örneğin, arılar genellikle daha yüksek yuva siteleri tercih olsa da, biz onların güvenli çıkarılmasını kolaylaştırmak için yere alt tuzak kutuları yerleştirmek eğilimindedir. Tuzak kutuları tehlikede bir kuş yuva kutusu durumunu kontrol biyolog koymayın olacak yerlere konulmalıdır. Kişisel koruyucu ekipman (arı takım elbise ya da ceket ve arı eldiven) içinde arılar bir tuzak kutusu kaldırarak herkes tarafından giyilmelidir. Biz çünkü ben bu çalışmada bir mikro kapsüllü permetrin sprey formülasyonu kullanılır60 gün boyunca etkili s. Diğer formülasyonlar, emülsifiye edilmiş konsantreler (EC) ve tozlar bulunmaktadır. Toz formülasyonları üstleri ve izci arılar performans değerlendirme yürür zaman çoğunluğu harcamak kutuları, kenarlarına uygulamak zordur. AT formülasyonları uygulamak yaygın ve kolay olmasına rağmen, sadece iki hafta boyunca etkili olmaya devam etmektedir. o ışığa ve bir kaç gün için tek etkili olduğu doğal ürün otundan kullanılması tavsiye edilmez. kuşlar ve insanlar için nispeten toksik olmayan, çünkü Permetrin tercih insektisittir. Bu ortamda, arılara itici ve doğal kaynaklı kimyasal daha uzun sürer kalıcı değil. sprey formülasyon permetrin Bu nedenle tavsiye edilir. alanların dışında AHB tutmak için girişimleri Amerika genelinde başarısız oldu. Florida&#39;da yakın bağlantı noktalarını yakalama, AHB gelişini gecikmiş, ancak 2007 yılına kadar onlar devlet güney kesiminde boyunca kuruldu. AHB hakim Ülkeler, s varima vazgeçmiş ve AHB nasıl yönetileceğini öğrenme başvurdu. AHB yönetmek yasadışı değildir yerlerde, tuzak kutuları taşınmak arılar kolayca çıkarılabilir ve arıcılık için kullandı. Onlar yönetimi için bir arılık taşındı veya yerel arıcılar verilebilir. kolonize kutuları kaldırarak projede yardımcı olmak için yerel bir arıcı birleştirilerek her iki taraf yararlanabilir. arıcı ücretsiz arılar alır ve biyologlar ile kendilerini ilgilendiren bir daha görev var. Bu itme-çekme yöntemi büyük ölçüde AHB tarafından Peçeli baykuş yuva kutuları kolonizasyonu azalır. AHB savunma doğası ve yuva kutuları sürüleri kaldırma zorluk önleme protokolü gerekli kılar. Bu protokol, herhangi bir boşluk iç içe kuş olarak boşluğu iç içe memeliler için kullanılabilir. Bu (son zamanlarda Asya bal arısı tanıttı Karayipler, Güney Amerika, Afrika ve hatta Avustralya boyunca birçok nesli tükenmekte olan papağanların kurtarma önemli bir koruma aracı olarak kanıtlamak olabilirApis cerana) hızla yayılıyor.

1957 1 Sao Paulo, Brezilya içine iki düzineden fazla Afrika bal arısı kraliçe yanlışlıkla tanıtılmasından bu yana, bu böcekler (daha az iyi adapte Avrupa bal arılarının gasp ve değiştirilmesi, Güney ve Orta Amerika boyunca ve yukarı güney Amerika Birleşik Devletleri içine yayıldı vahşi nüfus EHB). Bu melez Africanized bal arıları (AHB) insanlarda ve yaban hayatı hem de çatışma koyun özelliklere sahip. Onlar, son derece savunmacı davranışlar çok hızlı yeniden ve onlar bir ev 1,2 yapmak nerede daha az seçici bulunmaktadır. Yuva kutuları uzun kavite-yuvalama kuşlar 3,4 ile üreme geliştirmek için kuş bilimcilerin kullandığı olmasına rağmen, bunların kullanımı tropik 5,6 tehdit ve tehlike altında olan papağan üreme arttırmak için özellikle etkili olduğu görülmüştür. Ne yazık ki, Africanized bal arıları genellikle bu aynı yuva kutuları seçmek - hatta bazen oturan öldürmes. Onlar yuva çalışmalar yapıyorlar Ayrıca, bu AHB biyologlar için önemli bir tehdit oluşturmaktadır. AHB kurulmuştur Güney Amerika bölgelerinde, çeşitli papağan koruma projeleri AHB 7-10 tarafından işgal onların yapay yuva kutuları gördük. bal arıları ile yuva kutuları için Rekabet yaygın ve papağan sınırlı değildir. Yeni ve Eski Dünya&#39;da birçok diğer kuş türleri 11-15 etkilenir. bu istilacı AHB tehdidini azaltmak için çabaları olmadan, papağan korunmasında son başarılar kaybolmuş olabilir. Arılar rekabet yönetmek için mevcut uygulamaları derhal sezon 8 veya yuva kutuları 15 dıştan dışa kimyasalların uygulanması ıslah sonra, elle sürüleri kaldırarak, 7 permetrin yuva girişlerini kapatarak tekrarlanan, yüksek dozlarda kullanımını içerir. emek katılan ve biyologlar için tehlike daha uygun daha bu stratejileri vermekteyiz. Bir preventio geliştirilmesin protokol garanti edilir. Bal arısı kolonileri eski kraliçe işçi arıların 16 kadar dörtte üçü ile koloni bırakır kaynıyordu, olarak bilinen bir süreç yoluyla çoğalırlar. Africanized bal arıların yüksek üreme oranı onları daha sık 17 (yılda bir veya iki kez sürüsü) EHB daha (yılda dört ila sekiz kez) sürüsü verir. Ayrıca, AHB yıl boyunca yerine EHB gibi belirli bir sezon boyunca sürüsü olabilir. Sonuç olarak, AHB hızla belirli bir bölgede uygun yuvalama alanlarının çoğu işgal edebilir. Bal arısı ev avcılık davranış yuva sitenin kendi seçimini etkilemek için kullanılabilir. bir sürüsü içinde arıların küçük bir kısmı bulmak ve yeni potansiyel yuva siteleri incelemek için uçup. Birkaç potansiyel yuva siteleri aynı anda için Gözlemlenmemiş edilir. Bu keşif arılar sürüsü dönmek ve sitenin yerini belirtmek için dansları. SCO güçlü dans bir site için, daha hızlı numaraut arılar bu sitede 18 kurar. Bu nedenle, arılar vasat veya kötü sitelere kıyasla daha kaliteli siteler için güçlü dans. Bir çekirdek eşik ulaşıldığında, oğul kapalı alır ve yeni seçilen ev sitesine 18 uçar. Insektisit permetrin Alt öldürücü temas dozları yönlendirmek ve aktivite düzeyi 19,20 azaltmak için izci arı yeteneğini engelleyebilir. Ilk başta yuva kutuları içinde permetrin bir uygulama kimyasal düşerse olarak arılar 21 ve fazla mesai keşif için itici gerektiğini, kutunun kendi değerlendirmesi sırasında permetrin maruz kalan izci arılar, miktarını azaltarak, güçlü işe alım dansları daha az yetenekli hale getirilmelidir ve izci arılar siteye işe. Daha uygun bir (altta yer alan ideal bir oyuk hacmi, küçük giriş deliği ve bir feromon çekici) diğer yuva Alanı arılar için bir tuzak kutu biçiminde temin edilmektedir. Bu mükemmel tuzak sitesi hızlı bir çekirdek ulaşmalıdırinsektisit tedavi kuş kutusundan daha kuş kutusunun üzerine tuzak kutusunu seçmek için sürüsü lider. Bir örnek olarak, biz Güney Florida şeker kamışı alanları AHB tarafından Peçeli baykuş yapay yuva kutuları kolonizasyonu azaltmak için bir deney açıklanmaktadır. Amacımız feromon baited sürüsü tuzakları doğru &quot;çekme&quot; olarak bir insektisit ile tedavi baykuş yuva kutuları uzak arıları &quot;itme&quot; ve bir itme-çekme yöntemini kullanarak etkinliğini test etmek oldu.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="652">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Citral (ACROS Organics)</td>
			<td style="width:117px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">AC11044-1000</td>
			<td style="width:200px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Geraniol (ACROS Organics)</td>
			<td style="width:117px;">Fisher Scientific</td>
			<td>AC41090-1000</td>
			<td style="width:200px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">PermaCap CS</td>
			<td style="width:117px;">BASF</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>controlled release permethrin</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a push-pull protocol to reduce colonization of bird nest boxes by honey bees

Introduction of the invasive Africanized honey bee (AHB) into the Neotropics is a serious problem for many cavity nesting birds, specifically parrots. These bees select cavities that are suitable nest sites for birds, resulting in competition. The difficulty of removing bees and their defensive behavior makes a prevention protocol necessary. Here, we describe a push-pull integrated pest management protocol to deter bees from inhabiting bird boxes by applying a bird safe insecticide, permethrin, to repel bees from nest boxes, while simultaneously attracting them to pheromone-baited swarm traps. Shown here is an example experiment using Barn Owl nest boxes. This protocol successfully reduced colonization of Barn Owl nest boxes by Africanized honey bees. This protocol is flexible, allowing adjustments to accommodate a wide range of bird species and habitats. This protocol could benefit conservation efforts where AHB are located.

Brezilya&#39;da yapılan bir önceki küçük pilot itme-çekme çalışması sürüsü tuzakları etkili olduğunu gösterdi ve papağan yuva kutuları 22 arı işgal azalır. itme-çekme yöntemi AHB tarafından kuş yuva kutuları kolonizasyonunu azaltmak için daha büyük bir ölçekte etkili olabilir eğer belirlemek için, güney Florida, ABD&#39;de şekerkamışı tarlalarında bir alan çalışması yapılmıştır. Altmış Peçeli baykuş yuva kutuları monte edildi ve her 15 metre uzaklıkta bulunan bir sürüsü kapanı ile eşleşmiş oldu. Her sürüsü tuzak feromon yem aldı. Tek sayılı baykuş kutuları her 60 günde bir mikrokapsüllü permetrin püskürtme insektisid ile muamele edildi ve çift sayılı bir yuva kutusu muamele edilmemiş kontrol olarak bırakıldı. Nest kutuları ve sürüsü tuzakları varlığı veya yokluğu 1) izci arılar ve 2) arı kolonileri için haftalık kontrol edildi. Kutular ve tuzaklar Mart 2014 tarihinden itibaren 77 sürüleri yakalandı Of Temmuz 2015 için izlendi, 75 &lt;(sürüsü tuzakları vardıstrong&gt; Şekil 1). Sadece iki baykuş yuva kutuları, bu deney sırasında kolonize edildi; Her iki tedavi edilmemiştir. Biz 4 km uzaklıkta bir arılık onları taşındı önce arıların iki hafta en az tuzak kutuları kalmasına izin verdi. Biz yeni bir kovan kutusuna aktarılmıştır önce onları ek bir iki hafta boyunca tuzak kutusunda kalmasına izin (tuzak kutusuna bırakarak) kaçma arıların olasılığını azaltmak için. Petek ve enkaz tuzak kutunun dışına kazınmış, deneysel sitede yeniden monte edildi ve yeni bir cazibesi içine yerleştirilmiştir. Önemli ölçüde daha fazla arı işlenmemiş baykuş kutuların üzerinde sürüsü tuzakları seçti (X 2 (df = 1) = 29.2, p &lt;0.0001) ve işlenmiş baykuş kutuları (X 2 (df = 1) = 36.1, p &lt;0.0001) Pearson Ki tarafından belirlenen Yates &#39;süreklilik düzeltmesi ile kare testi. birden fazla arılar tarafından kolonize edildi Çeşitli tuzak kutuları, 12 tuzak kutuları arılar tarafından iki kez işgal edildi, beş kutu üç kez ve iki kutu işgal edildi işgal edildi<html> dört kere. İstatistiksel analiz için, tuzak kutu başına doluluk sadece bir kez sayıldı. Bir yuva sitesinde önceki arı kolonilerinden Parfüm 23 çok büyük olasılıkla daha önce işgal tuzak kutuları boş kutuları daha cazip olan yeni koloniler çekebilecek. Birkaç tedavi baykuş yuva kutuları bal arıları tarafından keşfedildiğinde rağmen, hiçbir sürüleri bu kutulara taşındı. (30 Barn baykuş kutuları içeren) bir yakın kontrol yerinde bal arılarının kutuları% 63 kolonize. Biz sürüsü tuzakları kullanımı büyük ölçüde baykuş yuva kutuları işgal arı kolonilerinin sayısını azalttığını buldular. Hiçbir tedavi yuva kutuları o permetrin düşündüren yuva kutuları kolonize AHB tutmak etkili olduğunu, kolonize edildi. Ancak, sürüsü tuzakları tek başına permetrin nedenle uygulama sadece kritik zaman aralıklarında (yani, arı sürüsü sezonu ve hemen önce kuşların üreme sezonu için) yerine yıl boyunca uygulanması daha kullanılabilir, etkili olmuştur. &quot;Src =&quot; / files / ftp_upload / 53950 / 53950fig1.jpg &quot;/&gt; Güney Florida şekerkamışı tarlalarında içinde (2015 yılı Temmuz 2014 Mart) 17 aylık bir süre boyunca tuzak kutuları veya işlenmemiş peçeli baykuş yuva kutuları ya kolonize Africanized bal arısı sürüleri Şekil bal arıları tarafından kolonize kutuların 1. sayısı. Sayı. <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/53950/53950fig1large.jpg" target="_blank">Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a>

Watch this Scientific Journal Video about A Push-pull Protocol to Reduce Colonization of Bird Nest Boxes by Honey Bees at JoVE.com

A Push-pull Protocol to Reduce Colonization of Bird Nest Boxes by Honey Bees

invaziv Africanized bal arıları tarafından kuş yuva kutuları kolonizasyonu önlenmesi yuva site sınırlı kuşların koruma çalışmaları için çok önemlidir. Biz &quot;itme&quot; arılar uzak yuva kutuları bir itici insektisit, permetrin ile entegre zararlı yönetimi yaklaşımı sağlamak ve feromon baited sürüsü tuzakları doğru onları &quot;çekme&quot;.

Bir Push-pull Protokolü Bal Arısı ile kolonizasyon Bird Nest Kutular azaltmak için

Introduction of the invasive Africanized honey bee (AHB) into the Neotropics is a serious problem for many cavity nesting birds, specifically parrots. ...

a-push-pull-protocol-to-reduce-colonization-bird-nest-boxes-honey

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Environment

8.6K Görüntüleme.  University of Florida.  invaziv Africanized bal arıları tarafından kuş yuva kutuları kolonizasyonu önlenmesi yuva site sınırlı kuşların koruma çalışmaları için çok önemlidir. Biz "itme" arılar uzak yuva kutuları bir itici insektisit, permetrin ile entegre zararlı yönetimi yaklaşımı sağlamak ve feromon baited sürüsü tuzakları doğru onları "çekme". 

Video: A Push-pull Protocol to Reduce Colonization of Bird Nest Boxes by Honey Bees

Optimized Negative Staining: a High-throughput Protocol for Examining Small and Asymmetric Protein Structure by Electron Microscopy

Structural determination of proteins is rather challenging for proteins with molecular masses between 40 - 200 kDa. Considering that more than half of natural proteins have a molecular mass between 40 - 200 kDa1,2, a robust and high-throughput method with a nanometer resolution capability is needed. Negative staining (NS) electron microscopy (EM) is an easy, rapid, and qualitative approach which has frequently been used in research laboratories to examine protein structure and protein-protein interactions. Unfortunately, conventional NS protocols often generate structural artifacts on proteins, especially with lipoproteins that usually form presenting rouleaux artifacts. By using images of lipoproteins from cryo-electron microscopy (cryo-EM) as a standard, the key parameters in NS specimen preparation conditions were recently screened and reported as the optimized NS protocol (OpNS), a modified conventional NS protocol 3 . Artifacts like rouleaux can be greatly limited by OpNS, additionally providing high contrast along with reasonably high&#8208;resolution (near 1 nm) images of small and asymmetric proteins. These high-resolution and high contrast images are even favorable for an individual protein (a single object, no average) 3D reconstruction, such as a 160 kDa antibody, through the method of electron tomography4,5. Moreover, OpNS can be a high&#8208;throughput tool to examine hundreds of samples of small proteins. For example, the previously published mechanism of 53 kDa cholesteryl ester transfer protein (CETP) involved the screening and imaging of hundreds of samples 6. Considering cryo-EM rarely successfully images proteins less than 200 kDa has yet to publish any study involving screening over one hundred sample conditions, it is fair to call OpNS a high-throughput method for studying small proteins. Hopefully the OpNS protocol presented here can be a useful tool to push the boundaries of EM and accelerate EM studies into small protein structure, dynamics and mechanisms.

More than half of proteins are small proteins (molecular mass &#60;200 kDa) that are challenging for both electron microscope imaging and three-dimensional reconstructions. Optimized negative staining is a robust and high-throughput protocol to obtain high contrast and relatively high resolution (~1 nm) images of small asymmetric proteins or complexes under different physiological conditions.

Optimize Negatif Boyama: Elektron Mikroskobu ile Küçük ve Asimetrik Protein Yapısı incelenmesi için Yüksek verim Protokolü

Structural determination of proteins is rather challenging for proteins with molecular masses between 40 - 200 kDa. Considering that more than half of ...

Çevre

Experimental Protocol for Manipulating Plant-induced Soil Heterogeneity

Coexistence theory has often treated environmental heterogeneity as being independent of the community composition; however biotic feedbacks such as plant-soil feedbacks (PSF) have large effects on plant performance, and create environmental heterogeneity that depends on the community composition. Understanding the importance of PSF for plant community assembly necessitates understanding of the role of heterogeneity in PSF, in addition to mean PSF effects. Here, we describe a protocol for manipulating plant-induced soil heterogeneity. Two example experiments are presented: (1) a field experiment with a 6-patch grid of soils to measure plant population responses and (2) a greenhouse experiment with 2-patch soils to measure individual plant responses. Soils can be collected from the zone of root influence (soils from the rhizosphere and directly adjacent to the rhizosphere) of plants in the field from conspecific and heterospecific plant species. Replicate collections are used to avoid pseudoreplicating soil samples. These soils are then placed into separate patches for heterogeneous treatments or mixed for a homogenized treatment. Care should be taken to ensure that heterogeneous and homogenized treatments experience the same degree of soil disturbance. Plants can then be placed in these soil treatments to determine the effect of plant-induced soil heterogeneity on plant performance. We demonstrate that plant-induced heterogeneity results in different outcomes than predicted by traditional coexistence models, perhaps because of the dynamic nature of these feedbacks. Theory that incorporates environmental heterogeneity influenced by the assembling community and additional empirical work is needed to determine when heterogeneity intrinsic to the assembling community will result in different assembly outcomes compared with heterogeneity extrinsic to the community composition.

Understanding the role of environmental heterogeneity in species coexistence has typically focused on types of heterogeneity that are extrinsic to the community&#8217;s species composition. We provide novel detailed methods for creating soil heterogeneity treatments using soils subject to plant-soil feedback conditioning, or heterogeneity intrinsic to the community composition.

Kurgulama Bitki kaynaklı Toprak Heterojen Deneysel Protokol

Coexistence theory has often treated environmental heterogeneity as being independent of the community composition; however biotic feedbacks such as ...

A Protocol for Conducting Rainfall Simulation to Study Soil Runoff

Rainfall is a driving force for the transport of environmental contaminants from agricultural soils to surficial water bodies via surface runoff. The objective of this study was to characterize the effects of antecedent soil moisture content on the fate and transport of surface applied commercial urea, a common form of nitrogen (N) fertilizer, following a rainfall event that occurs within 24&#160;hr&#160;after fertilizer application. Although urea is assumed to be readily hydrolyzed to ammonium and therefore not often available for transport, recent studies suggest that urea can be transported from agricultural soils to coastal waters where it is implicated in harmful algal blooms. A rainfall simulator was used to apply a consistent rate of uniform rainfall across packed soil boxes that had been prewetted to different soil moisture contents. By controlling rainfall and soil physical characteristics, the effects of antecedent soil moisture on urea loss were isolated. Wetter soils exhibited shorter time from rainfall initiation to runoff initiation, greater total volume of runoff, higher urea concentrations in runoff, and greater mass loadings of urea in runoff. These results also demonstrate the importance of controlling for antecedent soil moisture content in studies designed to isolate other variables, such as soil physical or chemical characteristics, slope, soil cover, management, or rainfall characteristics. Because rainfall simulators are designed to deliver raindrops of similar size and velocity as natural rainfall, studies conducted under a standardized protocol can yield valuable data that, in turn, can be used to develop models for predicting the fate and transport of pollutants in runoff.

A rainfall simulator was used to apply a consistent rate of uniform rainfall to packed soil boxes in a study of the fate and transport of urea, a nonpoint source environmental contaminant. Under uniform soil and rainfall conditions, antecedent soil moisture content exerted strong control over urea loss in surface runoff.

Toprak Debinin Eğitim için Yağmur Simülasyon yürütülmesi için protokol

Rainfall is a driving force for the transport of environmental contaminants from agricultural soils to surficial water bodies via surface runoff. The ...

A Protocol for Collecting and Constructing Soil Core Lysimeters

Leaching of nutrients from land applied fertilizers and manure used in agriculture can lead to accelerated eutrophication of surface water. Because the landscape has complex and varied soil morphology, an accompanying disparity in flow paths for leachate through the soil macropore and matrix structure is present. The rate of flow through these paths is further affected by antecedent soil moisture. Lysimeters are used to quantify flow rate, volume of water and concentration of nutrients leaching downward through soils. While many lysimeter designs exist, accurately determining the volume of water and mass balance of nutrients is best accomplished with bounded lysimeters that leave the natural soil structure intact. 
Here we present a detailed method for the extraction and construction of soil core lysimeters equipped with soil moisture sensors at 5 cm and 25 cm depths. Lysimeters from four different Coastal Plain soils (Bojac, Evesboro, Quindocqua and Sassafras) were collected on the Delmarva Peninsula and moved to an indoor climate controlled facility. Soils were irrigated once weekly with the equivalent of 2 cm of rainfall to draw down soil nitrate-N concentrations. At the end of the draw down period, poultry litter was applied (162 kg TN ha-1) and leaching was resumed for an additional five weeks. Total recovery of applied irrigation water varied from 71% to 85%. Nitrate-N concentration varied over the course of the study from an average of 27.1 mg L-1 before litter application to 40.3 mg L-1 following litter application. While greatest flux of nutrients was measured in soils dominated by coarse sand (Sassafras) the greatest immediate flux occurred from the finest textured soil with pronounced macropore development (Quindocqua).

A detailed method for extraction and assembly of intact soil core lysimeters and their use for study of leachate and associated loss of nutrients from surface applied poultry litter is demonstrated.

Toprak Çekirdek lizimetereleri Toplama ve oluşturulması için bir protokol

Leaching of nutrients from land applied fertilizers and manure used in agriculture can lead to accelerated eutrophication of surface water. Because the ...

Evaluating the Effect of Environmental Chemicals on Honey Bee Development from the Individual to Colony Level

The presence of pesticides in the beekeeping environment is one of the most serious problems that impacts the life of a honey bee. Pesticides can be brought back to the beehive after the bees have foraged on flowers that have been sprayed with pesticides. Pesticide contaminated food can be exchanged between workers which then feed larvae and therefore can potentially affect the development of honey bees. Thus, residual pesticides in the environment can become a chronic damaging factor to honey bee populations and gradually lead to colony collapse. In the presented protocol, honey bee feeding methods are described and applied to either an individual honey bee or to a colony. Here, the insect growth regulator (IGR) pyriproxyfen (PPN), which is widely used to control pest insects and is harmful to the development of honey bee larvae and pupae, is used as the pesticide. The presenting procedure can be applied to other potentially harmful chemicals or honeybee pathogens for further studies.

Herein we present a method to feed pesticide contaminated food to both an individual honey bee and a beehive colony. The procedure evaluates the pesticide effect on individual honey bees by in vivo feeding of basic larval diet and also on the natural condition of beehive colony.

Koloni Düzeyde Bireysel olan Bal Arısı Kalkınma Çevre Kimyasalların Etkisinin Değerlendirilmesi

The presence of pesticides in the beekeeping environment is one of the most serious problems that impacts the life of a honey bee. Pesticides can be ...

Video Tracking Protocol to Screen Deterrent Chemistries for Honey Bees

The European honey bee, Apis mellifera L., is an economically and agriculturally important pollinator that generates billions of dollars annually. Honey bee colony numbers have been declining in the United States and many European countries since 1947. A number of factors play a role in this decline, including the unintentional exposure of honey bees to pesticides. The development of new methods and regulations are warranted to reduce pesticide exposures to these pollinators. One approach is the use of repellent chemistries that deter honey bees from a recently pesticide-treated crop. Here, we describe a protocol to discern the deterrence of honey bees exposed to select repellent chemistries. Honey bee foragers are collected and starved overnight in an incubator 15 h prior to testing. Individual honey bees are placed into Petri dishes that have either a sugar-agarose cube (control treatment) or sugar-agarose-compound cube (repellent treatment) placed into the middle of the dish. The Petri dish serves as the arena that is placed under a camera in a light box to record the honey bee locomotor activities using video tracking software. A total of 8 control and 8 repellent treatments were analyzed for a 10 min period with each treatment was duplicated with new honey bees. Here, we demonstrate that honey bees are deterred from the sugar-agarose cubes with a compound treatment whereas honey bees are attracted to the sugar-agarose cubes without an added compound.

The loss of honey bee colonies presents a challenge to crop pollination services. Current pollinator protection practices warrant an alternative approach to minimize the contact of honey bees to harmful pesticides using repellent chemistries. Here, we provide detailed methods for a visual tracking protocol to screen deterrents for bees.

Bal Arıları İçin Ekran Koruma Kimyagerleri için Video İzleme Protokolü

The European honey bee, Apis mellifera L., is an economically and agriculturally important pollinator that generates billions of dollars annually. Honey ...

Experimental Protocol for Detecting Mitochondrial Function in Hepatocytes Exposed to Organochlorine Pesticides

This paper presents detailed methods on detecting hepatic mitochondrial function for a better understanding the cause of metabolic disorders caused by environmental organochlorine pesticides (OCPs) in hepatocytes. HepG2 cells were exposed to &#946;-hexachlorocyclohexane (&#946;-HCH) for 24 h at an equivalent dose of internal exposure in general population. Ultrastructure in hepatocytes was examined by transmission electron microscopy (TEM) to show the damage of mitochondria. Mitochondrial function was further evaluated by mitochondrial fluorescence intensity, adenosine 5'-triphosphate (ATP) levels, oxygen consumption rate (OCR) and mitochondrial membrane potential (MMP) in HepG2 cells incubated with &#946;-HCH. The mitochondria fluorescence intensity after stained by mitochondrial green fluorescent probe was observed with a fluorescence microscopy. The luciferin-luciferase reaction was used to determine ATP levels. The MMP was detected by the cationic dye JC-1 and analyzed under flow cytometry. OCR was measured with an extracellular flux analyzer. In summary, these protocols were used in detecting mitochondrial function in hepatocytes with to investigate mitochondria damages.

Understanding the influence of environmental organochlorine pesticides (OCPs) on mitochondrial function in hepatocytes is important in exploring the mechanism of OCPs causing metabolic disorders. This paper presents detailed methods on detecting hepatic mitochondrial function.

Organoklor Intarımlarına Maruz Kalan Hepatositlerde Mitokondriyal Fonksiyonun Saptanması Için Deneysel Protokol

This paper presents detailed methods on detecting hepatic mitochondrial function for a better understanding the cause of metabolic disorders caused by ...

In Vitro Rearing of Solitary Bees: A Tool for Assessing Larval Risk Factors

Although solitary bees provide crucial pollination services for wild and managed crops, this species-rich group has been largely overlooked in pesticide regulation studies. The risk of exposure to fungicide residues is likely to be especially high if the spray occurs on, or near host plants while the bees are collecting pollen to provision their nests. For species of Osmia that consume pollen from a select group of plants (oligolecty), the inability to use pollen from non-host plants can increase their risk factor for fungicide-related toxicity. This manuscript describes protocols used to successfully rear oligolectic mason bees, Osmia ribifloris sensu lato, from egg to prepupal stage within cell culture plates under standardized laboratory conditions. The in vitro-reared bees are subsequently used to investigate the effects of fungicide exposure and pollen source on bee fitness. Based on a 2 &#215; 2 fully crossed factorial design, the experiment examines the main and interactive effects of fungicide exposure and pollen source on larval fitness, quantified by prepupal biomass, larval developmental time, and survivorship. A major advantage of this technique is that using in vitro-reared bees reduces natural background variability and allows the simultaneous manipulation of multiple experimental parameters. The described protocol presents a versatile tool for hypotheses testing involving the suite of factors affecting bee health. For conservation efforts to be met with significant, lasting success, such insights into the complex interplay of physiological and environmental factors driving bee declines will prove to be critical.

In Vitro Rearing of Solitary Bees: A Tool for Assessing Larval Risk Factors

Fungicide sprays on flowering plants may expose solitary bees to high concentrations of pollen-borne fungicide residues. Using laboratory-based experiments involving in vitro-reared bee larvae, this study investigates the interactive effects of consuming fungicide-treated pollen derived from host and non-host plants.

Vitro Yalnız arı yetiştirme: larva Risk faktörleri değerlendirmek için bir araç

Although solitary bees provide crucial pollination services for wild and managed crops, this species-rich group has been largely overlooked in pesticide ...

Experimental Protocol for Examining Behavioral Response Profiles in Larval Fish: Application to the Neuro-stimulant Caffeine

Fish models and behaviors are increasingly used in the biomedical sciences; however, fish have long been the subject of ecological, physiological and toxicological studies. Using automated digital tracking platforms, recent efforts in neuropharmacology are leveraging larval fish locomotor behaviors to identify potential therapeutic targets for novel small molecules. Similar to these efforts, research in the environmental sciences and comparative pharmacology and toxicology is examining various behaviors of fish models as diagnostic tools in tiered evaluation of contaminants and real-time monitoring of surface waters for contaminant threats. Whereas the zebrafish is a popular larval fish model in the biomedical sciences, the fathead minnow is a common larval fish model in ecotoxicology. Unfortunately, fathead minnow larvae have received considerably less attention in behavioral studies. Here, we develop and demonstrate a behavioral profile protocol using caffeine as a model neurostimulant. Though photomotor responses of fathead minnows were occasionally affected by caffeine, zebrafish&#160;were markedly more sensitive for photomotor and locomotor endpoints, which responded at environmentally relevant levels. Future studies are needed to understand comparative behavioral sensitivity differences among fish with age and time of day, and to determine whether similar behavioral effects would occur in nature and be indicative of adverse outcomes at the individual or population levels of biological organization.

Here, we present a protocol to examine larval zebrafish and fathead minnow locomotor activities and photomotor responses (PMR) using an automated tracking software. When incorporated in common toxicology bioassays, analyses of these behaviors provide a diagnostic tool to examine chemical bioactivity. This protocol is described using caffeine, a model neurostimulant.

Davranışsal yanıt profilleri larva balık incelenmesi için deneysel protokol: nöro-uyarıcı kafein uygulamaya

Fish models and behaviors are increasingly used in the biomedical sciences; however, fish have long been the subject of ecological, physiological and ...

Measuring Hypopharyngeal Gland Acinus Size in Honey Bee (Apis mellifera) Workers

The nurse hypopharyngeal glands produce the protein fraction of the worker and royal jelly that is fed to developing larvae and queens. These paired glands that are located in the head of the bee are highly sensitive to the quantity and quality of pollen and pollen substitutes that the nurse bee consumes. The glands get smaller when nurses are fed deficient diets and are large when they are fed complete diets. Because nurse hypopharyngeal gland size is a robust indicator of nurse nutrition, it is essential that those studying honey bee nutrition know how to measure these glands. Here, we provide detailed methods for dissecting, staining, imaging, and measuring nurse bee hypopharyngeal glands. We present comparisons of unstained and stained tissue and data that were used to study the impact of pollen on gland size. This method has been used to test how diet impacts hypopharyngeal gland size but has further use for understanding the role of these glands in hive health.

Measuring Hypopharyngeal Gland Acinus Size in Honey Bee Apis mellifera Workers

Hypopharyngeal gland acinus size is a robust measure of nurse honey bee nutrition. Here, we provide a detailed protocol for dissecting, staining, imaging, and measuring nurse bee hypopharyngeal gland acini.

Ölçüm Hypopharyngeal bezi Acinus boyutunda bal arı (Apis mellifera) işçi

The nurse hypopharyngeal glands produce the protein fraction of the worker and royal jelly that is fed to developing larvae and queens. These paired ...