Name: induction and assessment of exertional skeletal muscle damage in humans
Uploaded: 2016-12-11T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 33 s
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Os seguintes procedimentos estão em conformidade com as normas do Conselho de Revisão Institucional da Universidade Brigham Young (IRB). 1. Prepare os Protocolos de contração NOTA: As seguintes instruções de protocolo são baseados no software Advantage Biodex. Navegar no software e operar o dinamômetro será diferente se forem utilizados diferentes sistemas. <ol><li> Força isocinética Protocolo de Teste <ol><li> Para fazer o protocolo isocinético, software de controle aberto dinamômetro no computador e selecione a guia &quot;Protocolo&quot; e, em seguida, selecione a guia &quot;Record&quot; na barra de ferramentas na parte superior da tela. Selecione &quot;New Protocol&quot; na lista suspensa. </li><li> Na caixa &quot;Tipo de Estudo&quot;, selecione a opção &quot;Test&quot;. </li><li> Selecione os seguintes parâmetros a partir dos menus suspensos: No menu &quot;Mode&quot; selecione isocinética. Sob o &quot;Joint&quot; menu de seleção do joelho. Debaixo de &amp;#34; Pattern &quot;. Menu de selecção de flexão / extensão Selecione contrações concêntricas para ambos os movimentos de flexão e extensão Escolha.&quot; Reps &quot;sob a&quot; End por &quot;menu suspenso. </li><li> No &quot;unilateral&quot; programa guia 1 conjunto de 3 repetições a uma velocidade de 60 ° / s, tanto para a distância e direção contrações. Para fazer isso, digite &quot;1&quot; no campo &quot;# sets&quot; e digite &quot;3&quot; na linha &quot;End por Reps&quot;. Em seguida, digite 60, tanto a &quot;velocidade Away&quot; e &quot;velocidade em direção à&quot; linhas. </li><li> Use 90 ° como o ponto de referência anatômica e definir a faixa de limites de movimento para aproximadamente 10 ° de distância e 110 ° na direcção (0 ° = extensão total, 135 ° = Flexão completa) .Para fazer isso, selecione o botão &quot;set ROM&quot; no lado esquerdo da tela. Calibra-se o braço de alavanca de modo a que 90 ° é paralelo ao chão (como indicado através do indicador de ângulo do braço de alavanca fornecida no ecrã de computador). Em seguida, utilizando 90 ° o re como anatómicaponto de conferência, defina o intervalo de limites de movimento para aproximadamente 10 ° de distância e 110 ° na direcção (0 ° = extensão total, 135 ° = flexão completa). NOTA: As configurações de ângulo conjuntas dadas aqui são os preferidos, no entanto essas configurações devem ser modificadas em uma base caso-a-caso, especialmente quando se trabalha com indivíduos com a deformidade em flexão fixa ou outra limitação. </li><li> Nome do protocolo no campo &quot;Descrição&quot; no canto inferior esquerdo da tela e selecione o botão Salvar na barra de menu superior. </li></ol></li><li> A força isométrica Protocolo de Teste <ol><li> Repita os passos 1.1.1 para começar a fazer o protocolo isométrico. </li><li> Selecione a opção &quot;Test&quot; na caixa &quot;Tipo de Estudo&quot;. </li><li> Selecione os seguintes parâmetros a partir dos menus suspensos: No menu &quot;Mode&quot; selecione &quot;isométrica&quot;. Sob o menu &quot;Joint&quot;, selecione &quot;joelho&quot;. Sob o menu &quot;Padrão&quot;, selecione &quot;flexão / extensão&quot;. Sob o título &quot;Contraction Direction &quot;menu, selecione&quot; ausente &quot;. Em&quot; fim por &quot;menu, selecione&quot; representantes &quot;. </li><li> Programa um teste com um conjunto de 3 contrações isométricas com duração de 5 segundos cada em um ângulo de articulação de 70 °. Para fazer isso, digite &quot;1&quot; no campo &quot;Posições&quot; na aba &quot;unilateral&quot;. Nos termos da posição # 1 coluna, digite &quot;3&quot; na linha &quot;End por Reps&quot;. Na linha &quot;Angle&quot; selecionar &quot;70&quot;. </li><li> Selecione 90 ° como o ponto de referência anatômica e um limite de distância e 70 °. </li><li> Nome do protocolo no campo &quot;Descrição&quot; no canto inferior esquerdo da tela e selecione o botão Salvar na barra de menu superior. </li></ol></li><li> Muscle Danificar excêntrica Protocolo de exercícios <ol><li> Para fazer o protocolo de exercício excêntrico, software de controle aberto dinamômetro no computador e selecione a guia &quot;Protocolo&quot;. Em seguida, selecione a guia &quot;Record&quot; na barra de ferramentas na parte superior da tela. Agora clique em &quot;Novo Protocolo &amp;# 34; na lista suspensa. </li><li> Selecione a opção &quot;exercício&quot; da caixa &quot;Tipo de Estudo&quot;. </li><li> Selecione os seguintes parâmetros a partir dos menus suspensos: No menu &quot;Mode&quot; selecione &quot;isocinético&quot;. Sob o menu &quot;Joint&quot;, selecione &quot;joelho&quot;. Sob o menu &quot;Padrão&quot;, selecione &quot;Extensão / Flexão&quot;. Sob o menu &quot;contração&quot;, selecione &quot;Con / ECC&quot;. </li><li> Na guia &quot;Unilateral&quot;, programa de 10 séries de 10 repetições com velocidades de 180 ° / seg de distância e 120 ° / s em relação com 60 segundos de descanso entre as séries. <ol><li> Digite &quot;10&quot; no campo &quot;# Sets&quot;. </li><li> Na primeira coluna (rotulado # 1), digite &quot;10&quot; na linha rotulada &quot;End por Reps&quot;. Em seguida, digite &quot;180&quot; na próxima linha &quot;velocidade de distância&quot;. Na próxima linha rotulada &quot;velocidade em direção&quot;, digite &quot;120&quot;. Na linha &quot;Binário&quot;, tipo 200 a 600, dependendo da força antecipada dos sem prejuízo. </li><li> Repita o passo 1.3.4.2 para conjuntos # 2 a # 10. </li><li> Tipo 60 no &quot;Resto Tempo em segundos&quot; campo. </li></ol></li><li> Digite 90 ° no campo &quot;Anatomical Referência&quot;. </li><li> Selecione o botão &quot;Set ROM&quot; no lado esquerdo da tela e definir a faixa de limites de movimento a 40 ° de distância e 110 ° na direcção (0 ° = extensão total, 135 ° = flexão completa). Essas configurações fornecem a amplitude de movimento através do qual o sujeito deve oferecer resistência contra o braço do dinamômetro. Como medida de segurança, o banco vai parar de se mover se o sujeito pára proporcionando resistência dentro deste intervalo especificado de movimento. <ol><li> Para definir a amplitude de movimento, selecione o botão &quot;set ROM&quot; no lado esquerdo da tela. Calibra-se o braço de alavanca de modo a que 90 ° é paralelo ao chão (como indicado através do indicador de ângulo do braço de alavanca fornecida no ecrã de computador). Em seguida, usando 90 ° como o ponto de referência anatômica, set a gama de limites de movimento a 40 ° de distância e 110 ° no sentido de (0º = extensão total, 135 ° = flexão completa). NOTA: Essas configurações de ângulo conjuntas são sugestões para um assunto típico saudável. Estes devem ser modificado para atender as habilidades de um indivíduo para outro. </li></ol></li><li> Nome do protocolo no campo &quot;Description&quot; e selecione o botão &quot;Save&quot; na barra de ferramentas superior. </li></ol></li></ol> 2. Medidas de linha de base <ol><li> Medidas dor <ol><li> Fazer uma escala visual analógica, traçando uma linha 100 milímetros horizontalmente em uma página. </li><li> No lado da mão esquerda da linha indicam &quot;nenhuma dor&quot; e no lado da mão direita da linha indicam &quot;dor extrema&quot; (Figura 1). Este método é comumente usado para avaliar-dor muscular tardia 1,10,11. </li><li> Instruir o sujeito a fazer duas squats de peso corporal. Realizar as duas agachamento com straigh braços estendidost para fora na frente da ombros e os pés na largura dos ombros. profundidade adequada é alcançada quando as pernas superiores são paralelos ao chão antes de voltar à posição inicial. </li><li> Peça ao sujeito para indicar a intensidade da dor que ele ou ela se sentiu no quadríceps femoral durante o agachamento, traçando uma linha vertical no local apropriado na escala analógica visual. </li><li> Quantificar o nível do objecto de dor medindo a distância em milímetros a partir do final de não-dor da escala analógica visual para a marca de assunto. </li></ol></li><li> Serum Creatina Kinase CUIDADO: Usar luvas de protecção antes de manusear sangue e dispor de agulhas imediatamente após o uso em um recipiente apropriado como por hospital ou política da universidade. <ol><li> Siga os procedimentos de flebotomia padronizados para retirar sangue da região antecubital do braço do sujeito em condições de jejum para se obter 5 a 6 ml de sangue 12. </li><li> Centrifugar aamostra de sangue a 15 xg durante 15 min a 3 ° C para separar o soro a partir de células de sangue. </li><li> Usando uma pipeta de transferência, transferir a amostra de soro para um tubo de microcentrífuga rotulado de forma adequada para o ponto de tempo e sujeito. </li><li> Armazenar a amostra a -80 ° C para uso posterior. </li><li> Ensaiar a amostras de soro para a actividade da creatina quinase, utilizando um kit disponível comercialmente de acordo com o protocolo do fabricante. Alternativamente, as amostras de soro pode ser transportado para um laboratório para diagnóstico médico local para análise. </li></ol></li><li> Preparação Assunto <ol><li> Quarenta e oito horas antes da visita do assunto, instruí-los a evitar exercícios extenuantes ou não acostumados, não-esteróides anti-inflamatórios e álcool. </li><li> Quando o assunto chega, recolher peso, altura, sexo e perna informações dominância antes da instalação. dominância na perna pode ser determinada por pedir o assunto com qual perna que iria escolher para chutar uma bola. </li><li> Ter a subjetividadet aquecer a 50 a 150 W por 10 minutos em uma bicicleta ergométrica antes de realizar os testes de resistência. </li><li> Após o warm-up pergunte o assunto para se sentar na cadeira do dinamômetro. Para ajustar a inclinação, altura, profundidade, reclinar, e a rotação do braço do assento e do eixo para encaixar o assunto. Utilizar o côndilo femoral lateral como uma referência e alinhar o eixo de rotação do joelho com que o braço do eixo de dinamómetro. Ajuste o comprimento do braço do eixo de modo que é apenas proximal ao maléolo medial, e seguro com cinta. Assunto deve ser capaz de plantar flex confortavelmente com gama completa de movimento. </li><li> Deixar espaço suficiente (25 mm) entre o bordo frontal do assento e a parte traseira da perna para permitir a máxima flexão da articulação do joelho sem beliscar ou desconforto. </li><li> Estabilizar assunto com alças de ombro, quadril, tornozelo e coxa. Para isolar os extensores do joelho e evitar envolvimento muscular acessório, é essencial que o assunto ser firmemente estabilizada. </li><li> Tenha o assunto executar3-5 extensão prática manobras / flexão do joelho, gama de monitores de movimento e sinais de desconforto que possam existir antes de iniciar o protocolo de contração, e ajustar conforme necessário. </li><li> Agora que os componentes ajustáveis ​​do banco são devidamente equipado para o assunto, registrar a posição configurações de posição do assento e braço do eixo para a instalação repetível nas visitas subseqüentes. NOTA: É importante que o assunto é seguro e confortável. O banco de rolos é equipado com um botão de parada de emergência, tanto para o sujeito e do operador em caso de uma emergência. </li></ol></li><li> Medição de força <ol><li> Após o assunto está devidamente orientada no banco e o protocolo de teste de força isométrica é carregado, instrua o assunto sobre como realizar o teste. <ol><li> Diga o assunto que ele ou ela será contratante contra o braço de alavanca que vai ficar parado. Diga o assunto para seguir as instruções da tela do computador fazendo 3 contrações com duração de 5 segundos each. </li><li> Diga o assunto para manter o esforço máximo para cada contração. Diga o assunto para respirar durante as contrações. Peça ao indivíduo para cruzar os braços sobre o peito durante o teste. </li><li> Inicie o protocolo isométrica e permitir que o sujeito praticar o teste com esforço submáximo. Este julgamento prática vai familiarizar o sujeito ao teste, bem como fornecer um específico do teste warm-up. Permitir que o sujeito para praticar o teste de 2 a 3 vezes. </li></ol></li><li> Uma vez que o assunto está pronto, iniciar o teste e verbalmente incentivar o assunto para fornecer esforço máximo para cada contração. </li><li> Registro de torque, potência e trabalho. O software também calcula o coeficiente de variação (uma representação estatística da validade do teste baseado em reprodutibilidade de desempenho, valores mais baixos indicam maior reprodutibilidade). Se o coeficiente de variação superior a 15%, repetir o teste. Repita o teste até 4 vezes. Se o sujeito é incapaz de produzir um coeficiente of variação inferior a 15% após 4 tentativas utilizar os dados a partir do conjunto que rendeu o menor coeficiente de valor de variação. </li><li> Permitir que o assunto de dois a três minutos para descansar, e depois carregar o protocolo isocinético para obter dados de força isocinética. </li><li> Após o sujeito é presa no assento, instruir sobre como realizar o ensaio isocinético. <ol><li> Diga o assunto que eles vão estar fazendo três contrações de flexão e extensão contra o braço de alavanca que irá mover a uma taxa fixa. Diga o assunto, o objetivo é contratar com tanta força quanto possível em toda a amplitude de movimento para cada contração. </li><li> Diga-lhes que o braço de alavanca vai parar quando atingem o fim da amplitude de movimento. Peça ao sujeito para cruzar os braços sobre o peito durante o teste. Relembre o assunto para não se prender a respiração durante as contrações NOTA: Embora os dados recolhidos a partir do componente de flexão da contração pode não ser de interesse para o pesquisador, subjECTS que fornecem esforço máximo, tanto para a flexão e extensão manobras tendem a produzir uma melhor consistência vigor durante a manobra de extensão. </li></ol></li><li> Iniciar o teste e verbalmente incentivar o assunto para fornecer esforço máximo. </li><li> Registro de torque, potência e trabalho. O software também calcula o coeficiente de variação (uma representação estatística da validade do teste baseado em reprodutibilidade de desempenho, valores mais baixos indicam maior reprodutibilidade). Se o coeficiente de variação superior a 15%, repetir o teste. <ol><li> Repita o teste até 4 vezes. Se o sujeito é incapaz de produzir um coeficiente de variação inferior a 15% após 4 tentativas, utilizar os dados a partir do conjunto que rendeu o menor coeficiente de valor de variação. </li></ol></li></ol></li></ol> Indução 3. Danos <ol><li> Um a três dias após as medições da linha de base da Parte 2, tem o retorno sujeito para o laboratório para a porção de indução do danoprotocolo </li><li> Tenha o assunto warm-up em uma bicicleta ergométrica durante 10 minutos a 50 a 150 W. </li><li> Após o warm-up, orientar e proteger o indivíduo no dinamômetro usando as configurações de ajuste gravadas na etapa 2.3.7, carregar o músculo danificar protocolo de exercício excêntrico e instruir o assunto sobre como executar corretamente o exercício. <ol><li> Conte o assunto que eles vão contrair contra o braço de alavanca para iniciar o movimento do braço do eixo para cada contracção. Diga o assunto que, como o braço do eixo se move na direção deles a uma taxa fixa, seu objetivo é contratar contra ele com toda a força possível. </li><li> Permitir que o sujeito a agarrar as pegas localizadas em ambos os lados do assento. </li><li> Diga o assunto para respirar durante as contrações; expire durante a fase excêntrica. </li></ol></li><li> Quando o assunto estiver pronto, iniciar o primeiro conjunto de contrações, pressionando o botão start na tela. </li><li> Verbalmente incentivar o assunto para manter ef máximafort para cada contração. </li><li> Siga as instruções na tela que irá orientar o assunto através de 10 séries de 10 repetições com um período de descanso de 1 min entre as séries. </li><li> Uma vez que 10 conjuntos estão concluídas permitir que o sujeito 1 a 5 min para descansar antes de repetir o protocolo. NOTA: O número máximo de conjuntos disponíveis no âmbito do protocolo excêntrico é de 10 no entanto, isso pode variar dependendo do dinamômetro e software usado. O restante fornece o tempo para o operador para recarregar o protocolo, se necessário. </li><li> Repetir o procedimento mais duas vezes para um total de 300 contracções predominantemente excêntricos. </li></ol> Avaliação de Danos 4. Muscle <ol><li> Repetir ambos os testes de força isométrica, como descrito em 2.4, imediatamente após o exercício e prejudicial às 24, 48, 72, e 96 horas depois e isocinética. </li><li> Repetir a medição dor como descrito na parte 2.1 em 24, 48, 72 e 96 horas depois de danificar exercício. Certifique-se de usar uma nova escala visual analógica para cadaavaliação de modo a que o sujeito não pode ver as suas respostas anteriores. </li><li> Repetir a retirada de sangue, conforme descrito na parte 2.2 para o ensaio de cinase de creatina em 48 e 120 horas após o dano de exercício, ou em pontos de tempo ditados pelo protocolo experimental. </li><li> Determinar os dados de creatina-quinase, resistência e dor no eixo dos y de um gráfico em função do tempo no eixo x. </li><li> Observe como essas variáveis ​​desviar-se e voltar aos valores basais nos dias seguintes exercício, indicando danos e reparação, respectivamente. </li></ol>

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The authors have nothing to disclose.

Vários passos são fundamentais para a obtenção dos resultados desejados do presente protocolo. Em primeiro lugar, os indivíduos devem ser adequadamente familiarizado com os protocolos contração, particularmente as medições de força. Certifique-se de que o sujeito entende exatamente o que eles são esperados para fazer e dar-lhes uma oportunidade de praticar os testes de resistência antes da coleta de dados. Indivíduos que não estejam adequadamente familiarizados com estes procedimentos podem mostrar uma curva de aprendizado ao longo dos dias após a indução de danos. Esta pode ser uma variável de confusão tornando as medições da força inválido. A Figura 5 mostra dados de um indivíduo que pode não ter sido devidamente familiarizados. Este assunto mostraram aumento da força devido, talvez, à aprendizagem ao longo da experiência, apesar do exercício prejudicial. Em segundo lugar, a selecção da população sujeita também pode ser crítica para este protocolo. danos musculares por esforço pode variar muito de indivíduo para indivíduo dependendo de muitos fatores, incluindo o status treinados do indivíduo. Os indivíduos acostumados a exercício excêntrico vai mostrar muito menos danos em comparação com indivíduos que não estão habituadas. Esta pode ser uma consideração importante ao selecionar uma população assunto. Se um pesquisador está interessado em observar uma grande resposta a danos, uma população acostumada a exercício excêntrico será mais provável para fornecer este resultado. Finalmente, é fundamental que o assunto é constantemente posicionado no dinamômetro sobre as visitas repetidas. O pesquisador deve gravar as configurações de posição para cada componente ajustável do banco para cada assunto e reposicioná-la adequadamente para cada teste de acompanhamento. Isto irá minimizar a variabilidade devido a diferenças posturais. Muitos dynameters diferentes estão disponíveis. Embora os métodos fornecidos aqui são específicos para o dinamômetro e controle software Biodex, esses métodos podem ser adaptados para uso com outros dinamômetros após a contabilização de operatindiferenças g. O uso do dinamómetro como aqui apresentado proporciona vantagens em relação a outros métodos utilizados para induzir o dano muscular em seres humanos. Estas vantagens incluem a quantificação exacta do trabalho total realizado durante o exercício, controlando a velocidade angular, e medir com precisão a perda de força e resistência. No entanto, outros métodos de indução de dano pode ser utilizado no caso de um banco de rolos não está disponível ou não preferido. Hubal e colaboradores 13 utilizaram um sit cadeira repetidas e método de ascensão para efetivamente induzida lesão muscular. Neste estudo, os indivíduos realizaram alongamento contrações baixando em uma cadeira. Stupka e colaboradores 14 utilizadas exercício extensor do joelho tradicional durante o qual os sujeitos realizaram o componente de alongamento da contração em 120% de uma repetição máxima concêntrica. Downhill corrida é também um estímulo eficaz para causar dano muscular 15,16. Estes outros métodos de indução de dano pode ser preferível se o pesquisador estáinteressado em observar os danos de um mundo real mais ou estímulo específico-esporte ou de um movimento em cadeia cinética fechada. Outra modificação a este protocolo que o pesquisador pode considerar é a frequência de amostragem de sangue para medição de creatina quinase. Para obter a imagem mais informativo de soro de creatina quinase pós-exercício, o pesquisador pode optar por tomar amostras de sangue a cada 24 horas durante cinco a seis dias após o dano. Isso irá garantir que os valores de creatina cinase no soro de pico não são perdidas. Além disso, este irá fornecer uma melhor informação quanto à natureza das alterações na creatina cinase no soro, tal como se segue a curva de um mono ou forma bifásica. Uma limitação deste protocolo é que a perda de força, a creatina quinase sérica, e dor, são marcadores indiretos de dano. Embora a prova directa de danos pode ser observada através da obtenção de uma amostra de músculo e usando a microscopia electrónica, outros métodos histológicos usado em estudos com roedores não detectar voluinduzida por danos contração ntary no músculo humano 17,18. Considerando os métodos limitados capazes de detectar directamente o dano muscular no contexto de danos induzidos pela contração voluntária em seres humanos, os marcadores de danos indirectos estão entre as melhores opções 10. Aspectos de ambos recolha e análise de dados pode exigir a solução de problemas. Durante o protocolo prejudicial muscular, o sujeito deve provocar o movimento do braço do veio excêntrico para cada contracção. O assunto faz isso através da contratação contra o braço imobilizado numa posição joelho estendido até que um valor limiar for cumprido o que desencadeia o movimento do eixo e a contração excêntrica. O valor da força de limiar é de 10% do valor binário programado para a contracção protocolo (passo 1.3.4.2). Os indivíduos podem ter dificuldade em cumprir a força limite na posição inicial joelho estendido, especialmente depois de vários conjuntos foram concluídos. O pesquisador pode ajudar o assunto chegar ao threshold para iniciar as contracções puxando o braço do eixo. Alternativamente, o valor de binário programado em cada contracção do protocolo (1.3.4.2) pode ser reduzido, de modo que o limiar for inferior. No entanto, o valor de binário não deve ser demasiado baixo, porque se o assunto ultrapassa o valor de binário do braço do eixo irá parar e a contração será interrompido. A natureza dos dados quinase e dor de creatina também pode fornecer algum problema para o investigador. Estes conjuntos de dados muitas vezes não são normalmente distribuídos. Ambas as variáveis ​​tendem a mostrar não homogeneidade de variância tal que maior variabilidade ocorre com valores médios mais elevados. Devido à natureza dessas variáveis, uma transformação logarítmica é muitas vezes apropriado para normalizar as distribuições e homogeneizar a variância antes da análise estatística. Alternativamente, podem ser utilizados testes não-paramétricos. O protocolo de lesão muscular induzida pelo exercício descrito neste trabalho pode ter aplicações amplas. O str primáriaength de usar o protocolo é o potencial para estudar os processos celulares e moleculares que regulam a reparação do músculo, a regeneração, e a adaptação directa em seres humanos. Além disso, dor muscular tardia e as perdas de força temporário são muitas vezes consequências indesejadas de exercício extenuante, ou romance. Usando um protocolo de danos à base de exercício, como a descrita aqui, os investigadores são fornecidos um modelo validado pode testar a eficácia de intervenções nutricionais, nutracêuticos, ou farmacológicos ou outros tratamentos que visam proteger contra a dor muscular tardia após o exercício. Em conclusão, este manuscrito descreve um método seguro e confiável para causar danos e quantificar músculo esquelético induzida pela contração em seres humanos. Ele usa contrações excêntricas dos extensores do joelho que são controlados por um dinamômetro para induzir danos. A lesão muscular é avaliado de forma não invasiva com dor muscular de início tardio,creatina cinase no soro e a perda de força. Enquanto que o protocolo é escrito para um dinamómetro específico para medições de indução de dano e força, o protocolo pode ser adaptado para utilização com outros dinamómetros, bem como outros modos de contracção induzida por danos todos juntos.

The overall goal of this procedure is to induce exertional damage to the quadriceps femoris muscles using voluntary lengthening (eccentric) contractions in human subjects.
Contraction-induced skeletal muscle damage is a common consequence of exercise that is marked by delayed onset muscle soreness1, transient strength loss, and elevated muscle-specific enzymes in the blood2. Exertional muscle damage is most pronounced following exercise to which the subject is unaccustomed, particularly when eccentric contractions are involved3. Exertional muscle damage is typically benign. Soreness subsides, and both serum proteins and strength typically return to pre-damage levels within a few days to weeks after the damaging insult. In extreme cases, exertional muscle damage can lead to a life-threatening syndrome know as rhabdomyolysis. However, exertional muscle damage is usually insufficient to cause clinical rhabdomyolysis in healthy individuals4 in the absence of compounding factors including heat stress, dehydration5, infection6 or rare genetic predispositions7. 
Contraction-induced muscle damage is typically less severe than toxin-induced or freezing-induced injury, methods often used in rodent studies8,9. Yet, contraction-induced injury provides a useful method to study the muscle damage response with notable advantages. First, it is a safe and ethical method for use with human subjects1-3. Thus, interspecies translation of the results is not needed as data can be obtained directly from human subjects. Moreover, translating data obtained from rodent studies is very difficult given that the severity of injury seen in the rodent injury models exceeds the level of damage that would be ethical to induce in human subjects. Second, contraction-induced damage is commonly experienced and a natural process of exercise. Therefore, this mode of damage induction is useful for studying muscle damage in the context of exercise, adaptation to exercise as well as overt muscle injury. Here we describe a safe and reliable method to induce and evaluate skeletal muscle damage using lengthening contractions in humans.

<table><tbody><tr><td>Biodex Dynomometer</td><td>Biodex Medical Systems</td><td>850-000</td><td>Other models are available and should produce similar results</td></tr><tr><td>Creatine Kinase kit</td><td>Sigma-Aldrich&amp;nbsp;</td><td>MAK116</td><td></td></tr><tr><td>Serum Vacutainers</td><td>BD Bioscience</td><td>367812</td><td></td></tr><tr><td>Winged safety push button blood collection set</td><td>BD Bioscience</td><td>367338</td><td></td></tr><tr><td>Cryogenic vials</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>V5007</td><td>We use the 2&amp;nbsp;ml vials to store serum aliquots</td></tr></tbody></table>

induction and assessment of exertional skeletal muscle damage in humans

lesão muscular induzida pela contração via (alongamento) contrações voluntárias excêntricos oferece um excelente modelo para o estudo de adaptação e recuperação muscular em seres humanos. Aqui discutimos a concepção de um protocolo de exercício excêntrico para induzir a danos nos músculos do quadríceps, marcadas por mudanças na força, dor, e os níveis de creatina quinase plasmática. Este método é simples, ético e amplamente aplicáveis, uma vez que é realizada em participantes humanos e elimina a interespécies tradução dos resultados. Indivíduos executam 300 contrações excêntricas máximas dos músculos extensores do joelho a uma velocidade de 120 ° / s em um dinamômetro isocinético. A extensão dos danos é mensurável através de medidas isocinéticos e isométricos relativamente não-invasivas de perda de força, dor, e os níveis de creatina quinase plasmática ao longo de vários dias após o exercício. Portanto, a sua aplicação pode ser direcionado para populações específicas, na tentativa de identificar mecanismos para o músculoadaptação e regeneração.

Utilizando os métodos aqui apresentados, dor de linha de base, a atividade da creatina quinase sérica e força medições (isométrica e isocinética) foram tiradas em 7 homens jovens destreinados. No dia seguinte, os indivíduos foram submetidos músculo danificar protocolo de contração excêntrica descrito acima. Para fornecer índices de lesão muscular, acompanhar as avaliações de força, dor e atividade da creatina quinase sérica foram feitas. A força foi medido imediatamente após, bem como 24, 48, 72, e 96 h após o exercício. Dor foi medida 24, 48, 72 e 96 horas após o exercício. creatina quinase sérica foi medida em 48 e 120 horas após o exercício. Estes dados foram analisados ​​usando um one-way análise de medidas repetidas de variância com testes de comparações múltiplas de Dunnett para comparar os valores pós-exercício com o valor pré-exercício. Comparado ao pré-exercício, isométrica e força isocinética foi diminuída para 24 e 48 horas pós-exercício, respectivamente, e<html> devolvido semelhantes aos valores pré-exercício, posteriormente, (Figura 2). Dor foi significativamente aumentada às 24, 48, e 72 h após o exercício (Figura 3). Serum creatina quinase foi significativamente elevados 48 horas após o exercício (Figura 4). A Figura 5 mostra uma curva de força isométrica atípica nos dias após o exercício prejudicial. <img alt="figura 1" src="/files/ftp_upload/54859/54859fig1.jpg" /> Figura 1: A escala visual analógica utilizada para quantificar a dor muscular do quadríceps femoral. Os pacientes são instruídos a fazer duas agachamentos corporal e, em seguida, indicam na linha do grau de dor que sentia nos músculos do quadríceps durante a manobra de agachamento. O pesquisador quantifica esta medindo a distância da marca em mm da extremidade sem dor da escala.&quot;Http://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/54859/54859fig1large.jpg&quot; target = &quot;_ blank&quot;&gt; Clique aqui para ver uma versão maior desta figura. <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/54859/54859fig2.jpg" /> Figura 2: força isométrica (A) e 60 o / s força isocinética (B) dos músculos extensores do joelho, um dia antes (pré), imediatamente após (pós imm), 24, 48, 72 e 96 horas após um ataque de 300 máximos alongamento do esforço de contrações. Os dados são expressos como uma percentagem do valor de força de pré-esforço (média ± DP). Os dados foram analisados ​​com um one-way análise de medidas repetidas de variância com teste de Dunnett para comparações múltiplas. * Indica diferença significativa a partir de pré (p &lt;0,05). Este valor é adaptado de referência de 3. <a href="https://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/54859/54859fig2large.jpg" target="_blank">Por favor clique aqui para ver uma maior ve</a>rsion desta figura. <img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/54859/54859fig3.jpg" /> Figura 3: A curva de resposta a dor um dia antes do exercício (pré), bem como em 24, 48, 72, e 96 horas a seguir contracções alongamento máximo 300-esforço. Os dados estão expressos na escala de log 10 (média ± DP). * Indica diferença significativa a partir de pré exercício (p &lt;0,05). Este valor é adaptado de referência de 3. <a href="https://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/54859/54859fig3large.jpg" target="_blank">Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a> <img alt="Figura 4" src="/files/ftp_upload/54859/54859fig4.jpg" /> Figura 4: creatina quinase no soro (CK) atividade (média ± SD) 24 horas antes (pré), 48 e 120 horas após 300 máximo esforço alongamento contractions (LC). Os dados são apresentados como a percentagem dos valores pré-exercício na escala de log 10. * Indica diferença significativa a partir de pré (p &lt;0,05), NS indica que não há diferença significativa. <a href="https://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/54859/54859fig4large.jpg" target="_blank">Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a> <img alt="Figura 5" src="/files/ftp_upload/54859/54859fig5.jpg" /> Figura 5: força isométrica dos músculos extensores do joelho de um assunto que mostraram uma resposta atípica. medidas de força imediatamente após (imm post) 24, 48, 72 e 96 horas após um ataque das contrações alongamento 300 máximo de esforço não foram reduzidos em comparação com o valor pré exercício (pré) neste assunto. <a href="https://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/54859/54859fig5large.jpg" target="_blank">Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a></a>

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Induction and Assessment of Exertional Skeletal Muscle Damage in Humans

This article describes a safe and reliable method to induce and quantify exertional skeletal muscle damage in human subjects.

Indução e Avaliação da Exertional lesão muscular esquelético em humanos

Contraction-induced muscle damage via voluntary eccentric (lengthening) contractions offers an excellent model for studying muscle adaptation and recovery ...

induction-assessment-exertional-skeletal-muscle-damage

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Medicine

7.4K visualizações.  Brigham Young University. This article describes a safe and reliable method to induce and quantify exertional skeletal muscle damage in human subjects.

Vídeo: Induction and Assessment of Exertional Skeletal Muscle Damage in Humans

In Vivo Canine Muscle Function Assay

We describe a minimally-invasive and reproducible method to measure canine pelvic limb muscle strength and muscle response to repeated eccentric 
contractions. The pelvic limb of an anesthetized dog is immobilized in a stereotactic frame to align the tibia at a right angle to the femur. Adhesive wrap affixes the 
paw to a pedal mounted on the shaft of a servomotor to measure torque. Percutaneous nerve stimulation activates pelvic limb muscles of the paw to either push (extend) or 
pull (flex) against the pedal to generate isometric torque. Percutaneous tibial nerve stimulation activates tibiotarsal extensor muscles. Repeated eccentric (lengthening) 
contractions are induced in the tibiotarsal flexor muscles by percutaneous peroneal nerve stimulation. The eccentric protocol consists of an initial isometric contraction 
followed by a forced stretch imposed by the servomotor. The rotation effectively lengthens the muscle while it contracts, e.g., an eccentric contraction. During 
stimulation flexor muscles are subjected to an 800 msec isometric and 200 msec eccentric contraction. This procedure is repeated every 5 sec. To avoid fatigue, 4 min rest 
follows every 10 contractions with a total of 30 contractions performed.

In Vivo Canine Muscle Function Assay

We describe a minimally-invasive and painless method to measure canine hindlimb muscle strength and muscle response to repeated eccentric contractions.

Em função Assay Canine Muscle Vivo

We describe a minimally-invasive and reproducible method to measure canine pelvic limb muscle strength and muscle response to repeated eccentric 
...

Medicina

Manual Muscle Testing:  A Method of Measuring Extremity Muscle Strength Applied to Critically Ill Patients 

Survivors of acute respiratory distress syndrome (ARDS) and other causes of critical illness often have generalized weakness, reduced exercise tolerance, and persistent nerve and muscle impairments after hospital discharge.1-6 Using an explicit protocol with a structured approach to training and quality assurance of research staff, manual muscle testing (MMT) is a highly reliable method for assessing strength, using a standardized clinical examination, for patients following ARDS, and can be completed with mechanically ventilated patients who can tolerate sitting upright in bed and are able to follow two-step commands. 7, 8 
This video demonstrates a protocol for MMT, which has been taught to &ge;43 research staff who have performed &gt;800 assessments on &gt;280 ARDS survivors. Modifications for the bedridden patient are included. Each muscle is tested with specific techniques for positioning, stabilization, resistance, and palpation for each score of the 6-point ordinal Medical Research Council scale.7,9-11 Three upper and three lower extremity muscles are graded in this protocol: shoulder abduction, elbow flexion, wrist extension, hip flexion, knee extension, and ankle dorsiflexion. These muscles were chosen based on the standard approach for evaluating patients for ICU-acquired weakness used in prior publications. 1,2.

Manual Muscle Testing:  A Method of Measuring Extremity Muscle Strength Applied to Critically Ill Patients

Survivors of acute respiratory distress syndrome (ARDS) and critical illness frequently develop long-lasting muscle weakness. Manual muscle testing (MMT) is a standardized clinical examination commonly used to measure strength of peripheral skeletal muscle groups. This video demonstrates MMT using the 6-point Medical Research Council scale.

Teste muscular manual: um método de medir a força muscular Extremidade Aplicada à pacientes criticamente enfermos

Survivors of acute respiratory distress syndrome (ARDS) and other causes of critical illness often have generalized weakness, reduced exercise tolerance, ...

An in vivo Rodent Model of Contraction-induced Injury and Non-invasive Monitoring of Recovery

Muscle strains are one of the most common complaints treated by physicians. A muscle injury is typically diagnosed from the patient history and physical exam alone, however the clinical presentation can vary greatly depending on the extent of injury, the patient's pain tolerance, etc. In patients with muscle injury or muscle disease, assessment of muscle damage is typically limited to clinical signs, such as tenderness, strength, range of motion, and more recently, imaging studies. Biological markers, such as serum creatine kinase levels, are typically elevated with muscle injury, but their levels do not always correlate with the loss of force production. This is even true of histological findings from animals, which provide a "direct measure" of damage, but do not account for all the loss of function. Some have argued that the most comprehensive measure of the overall health of the muscle in contractile force. Because muscle injury is a random event that occurs under a variety of biomechanical conditions, it is difficult to study. Here, we describe an in vivo animal model to measure torque and to produce a reliable muscle injury. We also describe our model for measurement of force from an isolated muscle in situ. Furthermore, we describe our small animal MRI procedure.

An in vivo Rodent Model of Contraction-induced Injury and Non-invasive Monitoring of Recovery

An in vivo animal model of injury is described. The method takes advantage of the subcutaneous position of the fibular nerve. Velocity, timing of muscle activation, and arc of motion are all pre-determined and synchronized using commercial software. Post injury changes are monitored in vivo using MR imaging/spectroscopy.

Um In vivo Modelo de Contração de roedores induzida por lesões e não-invasivos acompanhamento da recuperação

Muscle strains are one of the most  common complaints treated by physicians. A muscle injury is typically diagnosed from the patient history and  physical ...

The Use of Thermal Infra-Red Imaging to Detect Delayed Onset Muscle Soreness

Delayed onset muscle soreness (DOMS), also known as exercise induced muscle damage (EIMD), is commonly experienced in individuals who have been physically inactive for prolonged periods of time, and begin with an unexpected bout of exercise1-4, but can also occur in athletes who exercise beyond their normal limits of training5. The symptoms associated with this painful phenomenon can range from slight muscle tenderness, to severe debilitating pain1,3,5. The intensity of these symptoms and the related discomfort increases within the first 24 hours following the termination of the exercise, and peaks between 24 to 72 hours post exercise1,3. For this reason, DOMS is one of the most common recurrent forms of sports injury that can affect an individual&#x2019;s performance, and become intimidating for many1,4.
For the last 3 decades, the DOMS phenomenon has gained a considerable amount of interest amongst researchers and specialists in exercise physiology, sports, and rehabilitation fields6. There has been a variety of published studies investigating this painful occurrence in regards to its underlying mechanisms, treatment interventions, and preventive strategies1-5,7-12. However, it is evident from the literature that DOMS is not an easy pathology to quantify, as there is a wide amount of variability between the measurement tools and methods used to quantify this condition6. It is obvious that no agreement has been made on one best evaluation measure for DOMS, which makes it difficult to verify whether a specific intervention really helps in decreasing the symptoms associated with this type of soreness or not. Thus, DOMS can be seen as somewhat ambiguous, because many studies depend on measuring soreness using a visual analog scale (VAS)10,13-15, which is a subjective rather than an objective measure. Even though needle biopsies of the muscle, and blood levels of myofibre proteins might be considered a gold standard to some6, large variations in some of these blood proteins have been documented 6,16, in addition to the high risks sometimes associated with invasive techniques. 
Therefore, in the current investigation, we tested a thermal infra-red (IR) imaging technique of the skin above the exercised muscle to detect the associated muscle soreness. Infra-red thermography has been used, and found to be successful in detecting different types of diseases and infections since the 1950&#x2019;s17. But surprisingly, near to nothing has been done on DOMS and changes in skin temperature. The main purpose of this investigation was to examine changes in DOMS using this safe and non-invasive technique.

The purpose of this investigation was to assess whether using an infra-red thermal camera is a valid tool for detecting and quantifying the muscle soreness after exercising.

O Uso de Imagens Infra-Vermelho térmico para detectar dor muscular de início retardado

Delayed onset muscle soreness (DOMS), also known as exercise induced muscle damage (EIMD), is commonly experienced in individuals who have been physically ...

Induction of Acute Skeletal Muscle Regeneration by Cardiotoxin Injection

Skeletal muscle regeneration is a physiological process that occurs in adult skeletal muscles in response to injury or disease. Acute injury-induced skeletal muscle regeneration is a widely used, powerful model system to study the events involved in muscle regeneration as well as the mechanisms and different players. Indeed, a detailed knowledge of this process is essential for a better understanding of the pathological conditions that lead to skeletal muscle degeneration, and it aids in identifying new targeted therapeutic strategies. The present work describes a detailed and reproducible protocol to induce acute skeletal muscle regeneration in mice through a single intramuscular injection of cardiotoxin (CTX). CTX belongs to the family of snake venom toxins and causes myolysis of myofibers, which eventually triggers the regeneration events. The dynamics of skeletal muscle regeneration is evaluated by histological analysis of muscle sections. The protocol also illustrates the experimental procedures for dissecting, freezing, and cutting the Tibialis Anterior muscle, as well as the routine Hematoxylin &#38; Eosin staining that is widely used for subsequent morphological and morphometric analysis.

This manuscript describes a detailed protocol to induce acute skeletal muscle regeneration in adult mice and subsequent manipulations of the muscles, such as dissection, freezing, cutting, routine staining, and myofiber cross-sectional area analysis.

Indução da Aguda Skeletal regeneração muscular por cardiotoxina Injection

Skeletal muscle regeneration is a physiological process that occurs in adult skeletal muscles in response to injury or disease. Acute injury-induced ...

Biologia do Desenvolvimento

Human Skeletal Muscle Biopsy Procedures Using the Modified Bergstr&#246;m Technique

The percutaneous biopsy technique enables researchers and clinicians to collect skeletal muscle tissue samples. The technique is safe and highly effective. This video describes the percutaneous biopsy technique using a modified Bergstr&#246;m needle to obtain skeletal muscle tissue samples from the vastus lateralis of human subjects. The Bergstr&#246;m needle consists of an outer cannula with a small opening (&#8216;window&#8217;) at the side of the tip and an inner trocar with a cutting blade at the distal end. Under local anesthesia and aseptic conditions, the needle is advanced into the skeletal muscle through an incision in the skin, subcutaneous tissue, and fascia. Next, suction is applied to the inner trocar, the outer trocar is pulled back, skeletal muscle tissue is drawn into the window of the outer cannula by the suction, and the inner trocar is rapidly closed, thus cutting or clipping the skeletal muscle tissue sample. The needle is rotated 90&#176;&#160;and another cut is made. This process may be repeated three more times. This multiple cutting technique typically produces a sample of 100-200 mg or more in healthy subjects and can be done immediately before, during, and after a bout of exercise or other intervention. Following post-biopsy dressing of the incision site, subjects typically resume their activities of daily living right away and can fully participate in vigorous physical activity within 48-72 hr. Subjects should avoid heavy resistance exercise for 48 hr to reduce the risk of herniation of the muscle through the incision in the fascia.

The purpose of this video is to present the modified Bergstr&#246;m skeletal muscle biopsy technique on human subjects.

Procedimentos de biópsia de músculo esquelético humano, utilizando a técnica Bergström Modificado

The percutaneous biopsy technique enables researchers and clinicians to collect skeletal muscle tissue samples. The technique is safe and highly ...

Ex Vivo Assessment of Contractility, Fatigability and Alternans in Isolated Skeletal Muscles

Described here is a method to measure contractility of isolated skeletal muscles. Parameters such as muscle force, muscle power, contractile kinetics, fatigability, and recovery after fatigue can be obtained to assess specific aspects of the excitation-contraction coupling (ECC) process such as excitability, contractile machinery and Ca2+ handling ability. This method removes the nerve and blood supply and focuses on the isolated skeletal muscle itself. We routinely use this method to identify genetic components that alter the contractile property of skeletal muscle though modulating Ca2+ signaling pathways. Here, we describe a newly identified skeletal muscle phenotype, i.e., mechanic alternans, as an example of the various and rich information that can be obtained using the in vitro muscle contractility assay. Combination of this assay with single cell assays, genetic approaches and biochemistry assays can provide important insights into the mechanisms of ECC in skeletal muscle.

Ex Vivo Assessment of Contractility, Fatigability and Alternans in Isolated Skeletal Muscles

We describe a method to directly measure muscle force, muscle power, contractile kinetics and fatigability of isolated skeletal muscles in an in vitro system using field stimulation. Valuable information on Ca2+ handling properties and contractile machinery of the muscle can be obtained using different stimulating protocols.

Avaliação ex vivo de Fatigabilidade Contratilidade e Alternans em músculos esqueléticos isolados

 
Described here is a method to measure contractility of isolated skeletal muscles. Parameters such as muscle force, muscle power, contractile kinetics, ...

Biologia

Isometric and Eccentric Force Generation Assessment of Skeletal Muscles Isolated from Murine Models of Muscular Dystrophies

Critical to the evaluation of potential therapeutics for muscular disease are sensitive and reproducible physiological assessments of muscle function. Because many pre-clinical trials rely on mouse models for these diseases, isolated muscle function has become one of the standards for Go/NoGo decisions in moving drug candidates forward into patients. We will demonstrate the preparation of the extensor digitorum longus (EDL) and diaphragm muscles for functional testing, which are the predominant muscles utilized for these studies. The EDL muscle geometry is ideal for isolated muscle preparations, with two easily accessible tendons, and a small size that can be supported by superfusion in a bath. The diaphragm exhibits profound progressive pathology in dystrophic animals, and can serve as a platform for evaluating many potential therapies countering fibrosis, and promoting myofiber stability. Protocols for routine testing, including isometric and eccentric contractions, will be shown. Isometric force provides assessment of strength, and eccentric contractions help to evaluate sarcolemma stability, which is disrupted in many types of muscular dystrophies. Comparisons of the expected results between muscles from wildtype and dystrophic muscles will also be provided. These measures can complement morphological and biochemical measurements of tissue homeostasis, as well as whole animal assessments of muscle function.

Muscle function measurements contribute to the evaluation of potential therapeutics for muscle pathology, as well as to the determination of mechanisms underlying physiology of this tissue. We will demonstrate the preparation of the extensor digitorum longus and diaphragm muscles for functional testing. Protocols for isometric and eccentric contractions will be shown, as well as differences in results between dystrophic muscles, representing a pathological state, and wildtype muscles.

Avaliação Geração isométrica e excêntrica Força dos músculos esqueléticos Isolado de modelos murinos de Distrofias Musculares

Critical to the evaluation of potential  therapeutics for muscular disease are sensitive and reproducible physiological  assessments of muscle function. ...

Skeletal Muscle Neurovascular Coupling, Oxidative Capacity, and Microvascular Function with 'One Stop Shop' Near-infrared Spectroscopy

Exercise represents a major hemodynamic stress that demands a highly coordinated neurovascular response in order to match oxygen delivery to metabolic demand. Reactive hyperemia (in response to a brief period of tissue ischemia) is an independent predictor of cardiovascular events and provides important insight into vascular health and vasodilatory capacity. Skeletal muscle oxidative capacity is equally important in health and disease, as it determines the energy supply for myocellular processes. Here, we describe a simple, non-invasive approach using near-infrared spectroscopy to assess each of these major clinical endpoints (reactive hyperemia, neurovascular coupling, and muscle oxidative capacity) during a single clinic or laboratory visit. Unlike Doppler ultrasound, magnetic resonance images/spectroscopy, or invasive catheter-based flow measurements or muscle biopsies, our approach is less operator-dependent, low-cost, and completely non-invasive. Representative data from our lab taken together with summary data from previously published literature illustrate the utility of each of these end-points. Once this technique is mastered, application to clinical populations will provide important mechanistic insight into exercise intolerance and cardiovascular dysfunction.

Here, we describe a simple, non-invasive approach using near-infrared spectroscopy to assess reactive hyperemia, neurovascular coupling and skeletal muscle oxidative capacity in a single clinic or laboratory visit.

Acoplamento de Neurovascular do músculo esquelético, capacidade oxidativa e função Microvascular com 'Balcão único' espectroscopia de infravermelho próximo

Exercise represents a major hemodynamic stress that demands a highly coordinated neurovascular response in order to match oxygen delivery to metabolic ...

Non-invasive Assessment of Dorsiflexor Muscle Function in Mice

Assessment of skeletal muscle contractile function is an important measurement for both clinical and research purposes. Numerous conditions can negatively affect skeletal muscle. This can result in a loss of muscle mass (atrophy) and/or loss of muscle quality (reduced force per unit of muscle mass), both of which are prevalent in chronic disease, muscle-specific disease, immobilization, and aging (sarcopenia). Skeletal muscle function in animals can be evaluated by a range of different tests. All tests have limitations related to the physiological testing environment, and the selection of a specific test often depends on the nature of the experiments. Here, we describe an in vivo, non-invasive technique involving a helpful and easy assessment of force frequency-curve (FFC) in mice that can be performed on the same animal over time. This permits monitoring of disease progression and/or efficacy&#160;of a potential therapeutic treatment.

Measurement of rodent skeletal muscle contractile function is a useful tool that can be used to track disease progression as well as efficacy of therapeutic intervention. We describe here the non-invasive, in vivo assessment of the dorsiflexor muscles that can be repeated over time in the same mouse.

Avaliação não-invasiva da função de músculos levantadores em ratos

Assessment of skeletal muscle contractile function is an important measurement for both clinical and research purposes. Numerous conditions can negatively ...