This work was supported in part by the National Institute on Drug Abuse T32 DA 016176, National Institute on Drug Abuse DA 038817, and National Institute on Drug Abuse DA 040047.

1.細胞培養およびトランスフェクション<ol><li> 増殖培地中のマウスの神経芽細胞腫2aを（N2aの）細胞を維持。 <ol><li>高グルコースで200mlダルベッコのイーグル培地（DMEM）500からmlのN2aの増殖培地を行い、250mlの血清培地50mlのウシ胎児血清（FBS）を低減し、5 mlのペニシリン/ストレプトマイシン（100×）。 </li><li> 5％CO 2インキュベーター中で37℃でT75フラスコ中の細胞を維持します。 </li><li>スプリット細胞午前1時15分、必要なとき、または約80〜90％の密集度。これは通常、週2-3回です。 </li></ol></li><li> ポリ-D-リジンでコート35ミリメートルガラスボトムディッシュ。 <ol><li>層流バイオセーフティキャビネットでは、滅菌35mmディッシュのガラス底の領域には0.1μg/ mlのポリ-D-リジン200μlのを追加します。 </li><li> 1時間37℃のインキュベーターに皿を置きます。 </li><li>慎重のddH 2 Oで3〜4回の皿をすすぎます。 </li><li> 1時間以上のための料理は完全に乾燥させます。 </li><li> Steril必要に応じて、生物学的安全キャビネットの中で、UV光を使用して料理をIZE。 </li></ol></li><li> TIRFMイメージングのためのN2a細胞をプレート。 <ol><li>接着細胞から増殖培地を除去します。 </li><li> 5％CO 2インキュベーター中、37℃で5分間、1ミリリットルの1xトリプシン（+ EDTA）でインキュベートすることにより、フラスコから細胞を剥離。 </li><li> 9 mlの増殖培地を添加することによってトリプシンを不活性化します。ピペットを使用してメディア、トリプシン、および剥離した細胞を混ぜます。 </li><li>視覚的に血球計数器を用いて細胞をカウントし、各ポリ-D-リジンコーティングされたガラスボトムディッシュに90,000細胞を追加するための正しい体積を計算します。この密度は、効率的なトランスフェクションし、単一細胞TIRFイメージングのために必要とされます。 </li><li> 90,000個の細胞を含む各ガラスボトムディッシュに2ミリリットルの増殖培地を追加します。 </li><li> 16-24時間、5％CO 2インキュベーター内で37℃で皿をインキュベートします。 </li></ol></li><li> N2aのトランスフェクション <ol><li>組み入れのSEPフルオロフォアを含むプラスミド構築物を得ます関心対象のタンパク質の細胞外領域に。このようなPCR増幅の5などの標準的なクローニング技術は、構築物を生成するために使用することができます。 注：これは小胞体またはトラフィッキング小胞の内腔の中に存在した場合に、原形質膜上の細胞外液に露出されるように、SEPが膜タンパク質の細胞外領域に組み込まれるべきです。 SEPがGFPのサイズに類似しており、類似のクローニング戦略を使用することができます。 </li><li>トランスフェクション試薬の添加前に1.5ミリリットル減少血清培地（ 例えば 、のOpti-MEM）、約30分で播種した細胞に成長培地を交換してください。 注：受容体における薬物誘発性の変化を研究するために、薬剤の適切な濃度は、トランスフェクションの時点で添加することができます。 </li><li>各所望のプラスミド500ngの追加血清培地（チューブ1）減少し250μlに構築。 </li><li>別のチューブcにトランスフェクション試薬の2μLを加えます減少血清培地250μlのをontaining。室温で5分間チューブ2をインキュベートします。プラスミドDNAのトランスフェクション試薬の比率は、目的の各タンパク質を発現するように最適化されるべきです。 </li><li>トランスフェクション試薬およびプラスミドミックスを500μlを含む溶液を作るために、チューブ1と2を組み合わせます。 25分間、室温でインキュベートします。 </li><li>皿当たり2ミリリットルの全体積を500μlのトランスフェクション混合するために事前に播種した細胞を追加します。 </li><li> 24時間、5％CO 2インキュベーター中37℃で細胞をインキュベートします。 </li><li> 24時間後、トランスフェクション混合物を除去し、増殖培地で細胞を洗浄した後、各皿に増殖培地の2ミリリットルを追加します。 注：薬物は、トランスフェクションの時点で添加した場合には、このステップで再び補充することができます。 </li><li> 24時間、5％CO 2インキュベーター中37℃で細胞をインキュベートします。 </li><li>画像セルトランスフェクション後48時間。 </li></ol></li></ol>合計で2.ライブセルイメージングternal反射蛍光顕微鏡（TIRFM） <ol><li> イメージングを設定します <ol><li>セットアップ走査ステージと、図1に示すように、倒立蛍光顕微鏡を用いて撮影を行います。これは、488 nmのDPSSレーザー光源、488 nmのビーム位置を調整するステッピングモータと、高開口数（NA 1.49）60Xまたは100X油浸対物レンズの位置合わせを必要とします。 </li><li>適切な励起フィルター（帯域10分の488 nm）を介してレーザビームを渡します。ステッピングモータに取り付けられたランチャーに接続された単一モード光ファイバを介して偏光レーザービームを合わせます。落射蛍光モードにおいて、励起ビームは、対物の背面開口部の中央にセンタリングされます。 </li><li>臨界角に達していないビームがもはやサンプルを透過し、その代わりに完全にガラスセルを反射するまでの全反射を達成するために、対物レンズの後開口を横切る集束レーザ光を変換するためにステッピングモータを使用しリットルインタフェース。 </li><li>排出経路（50分の525 nm）の中に搭載され、適切な発光フィルターを用いてイメージングソフトウェア（ 例えばをMetamorph）で制御EMCCD（512×512ピクセル）を使用して画像をキャプチャします。 </li></ol></li><li> イメージングソリューションを準備 <ol><li> 150mMのNaClを混合して200ミリリットルに細胞外溶液（ECS）を準備し、4のKCl、2のMgCl 2、2mMのCaCl 2を、10mMのHEPESおよびNaCl、KClを、のMgCl 2、ののddH 2 Oストック溶液中の10 mMグルコースそして、のCaCl 2を予め用意し、撮影日に新鮮HEPESおよびグルコースと組み合わせることができます。 </li><li> pH7.4に100ミリリットルECSを含む溶液のpHを調整します。 5.4のpHにECSの残りの100ミリリットルを調整します。 ECSの2ミリリットル（pH7.4）でトランスフェクトした細胞を洗い流します。 </li><li>撮影の前にトランスフェクションされた細胞にECS（pH7.4）中の2ミリリットルを追加します。 </li></ol></li><li> TIRFでのライブセルイメージング <ol><li> includin、システム全体の電源をオンにG 488nmレーザー、カメラ、移動ステージ、及び撮像プログラム。落射蛍光ビームをフォーカスし、60X対物レンズで約1ミリワットの電力を調整します。 </li><li>客観的にオイルを追加し、並進ステージ上にトランスフェクトされた細胞の皿を置きます。細胞が複数回撮像することができるように、それはステージに対して移動しない確実にするために、ステージマウントを使用して所定の位置に皿を固定します。 </li><li>落射蛍光モードでは、顕微鏡を集中し、蛍光、トランスフェクトされた細胞を見つけます。細胞は、いくつかの焦点面全体に焦点を当てたままになります。 TIRFを続行するために、単一、単離された細胞の位置を確認します。 </li><li>撮像プログラムにおいて、200ミリ秒の露光時間を設定し、EMゲインを設定することにより、蛍光強度を最適化します。 </li><li>ステッピングモータを使用して、段階的に客観にわたってビームを変換することによってTIRFにレーザビームを遷移。それは目で収束するまで臨界角が近づくと、ビームは目に見えて皿の縁を横切って翻訳します試料面での全内部反射のE点。 </li><li>細胞は、フォーカスノブを調整することにより、TIRFモードになっていることを確認します。 TIRFにおいて、細胞の唯一の面は、原形質膜の高分解能を有する非常に定義された画像を生成する、（ガラス界面から、すなわち約150nm）に焦点を合わせることができます。 </li></ol></li><li> 細胞内局在を決定するためのイメージング9月 <ol><li>撮像面での健康、トランスフェクションし、単一細胞の位置を確認します。 </li><li> pH7.4での細胞の焦点画像を取得します。 9月には、表示されるはずです形質膜と小胞体上の受容体を標識しました。 </li><li>すぐに退色を防止するために、試料に到達するレーザ光を遮断します。 </li><li>多数のXY位置を記録することができる顕微鏡イメージングソフトウェアを使用して、各セルに対応するステージ位置を覚えます。 </li><li>ソフトウェアを使用中に皿当たり20-30細胞のための手順を繰り返し2.4.1-2.4.4、各セルの位置を記録します。 </li><li> AfpH7.4でのすべてのセル画像が収集されているター、手動ピペットを用いてpH 7.4 ECS溶液を除去。これは記憶ステージ位置を移動できるように皿に手を触れないでください。 </li><li>慎重に皿にpHが5.4 ECSの2ミリリットルを追加し、10分を待ちます。この間、以前に取得した画像を保存します。 </li><li> 、pH7.4で画像を収集し、各保存された位置にステージを移動し、pH 5.4での同じ細胞の画像を取得するために使用される条件の同一のセットの下で。すべての検出された蛍光は、受容体を標識した9月閉じ込められた小胞体から発信されるため、細胞を以下に定義さになります。 pHが5.4細胞画像を保存します。 </li></ol></li><li> 生細胞内イメージング単一小胞の挿入イベント <ol><li> 2ミリリットルのpHが7.4 ECSと、またはライボビッツL-15培地をトランスフェクトした細胞の増殖培地を交換してください。リーボビッツのL-15培地のpHは、必要に応じて、撮像が長期間にわたって行わできるように、CO 2は独立しています。 </li><li> Plac顕微鏡のステージ上でトランスフェクトされた細胞の皿を電子。安全で上記のステップ2.3以下TIRFに単一のセルを集中。 </li><li>装備している場合、フォーカスが撮影の期間にわたってドリフトしないように、オートフォーカスを設定します。 </li><li>連続して200ミリ秒のフレームレートで画像をキャプチャ、千一連のフレームを記録します。蛍光のバーストは外pH 7.4に9月を露出させ、形質膜と融合し、低pHの人身売買の小胞に対応し、この時間の間に表示されます。 </li><li>別の1つのセルを探し、上記の手順を繰り返します。必要に応じてオートフォーカスをリセットします。 </li></ol></li></ol> 3.画像解析やデータ処理<ol><li> 細胞内局在を決定するための分析9月の蛍光 <ol><li>このようなをMetamorphまたはImageJの（http://imagej.nih.gov/ij/）などの画像解析ソフトを用いて細胞の画像を開きます。ボールの転がりの設定を使用して、両方のpH 5.4およびpH 7.4の画像からバックグラウンドを減算します。</li><li>単一の細胞からの蛍光を定量化するために、強度ベースのしきい値を使用してください。手動でpH7.4の画像にセルの周囲の関心領域を選択します。 </li><li> 、セル面積を測定し、強度を意味し、統合された密度のImageJでプラグインを使用するか、または[分析]タブの下で「測定」機能に建て使用して。 </li><li>慎重に同様の関心の強さベースのしきい値と地域を調整し、pHは5.4で同じセルのための手順を3.1.1-3.1.3繰り返します。 </li><li>集積密度の両方のpH 7.4および5.4での細胞画像について取得された後、pHを7.4の値からのpH 5.4の値を減算することにより、原形質膜の集積密度を計算します。違いは、TIRFの励起領域内のプラズマ膜上の相対的な数の受容体に相当します。 </li><li>人身売買の対策として、9月の相対的な割合を計算TIRF excitatiに見える残りの受容体と比較して、原形質膜上に位置する受容体を標識しました100を乗じたpH7.4の全積分密度によって密度を統合し、原形質膜を、分割することによってボリューム上。 </li></ol></li><li> 単一小胞の挿入イベントの分析 <ol><li>画像解析ソフトウェアを用い千TIFFイメージのシリーズを開きます。ボールの転がりの設定を使用して、すべてのフレームからのバックグラウンドを減算します。 </li><li>挿入イベントを小胞に対応する強烈な領域を最大化するために、記録のカラーバランスを調整します。手動長い3フレーム（&gt; 600ミリ秒）よりも持続する蛍光のバーストを数えます。 </li></ol></li></ol>

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	<li>Lester, H. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nicotine+is+a+selective+pharmacological+chaperone+of+acetylcholine+receptor+number+and+stoichiometry.+Implications+for+drug+discovery.">Nicotine is a selective pharmacological chaperone of acetylcholine receptor number and stoichiometry. Implications for drug discovery.</a> AAPS J. 11 (1), 167-177 (2009).</li><li>Henderson, B. J., Lester, H. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inside-out+neuropharmacology+of+nicotinic+drugs.">Inside-out neuropharmacology of nicotinic drugs.</a> Neuropharmacology. 96 (Pt B), 178-193 (2015).</li><li>Banerjee, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cellular+expression+of+alpha7+nicotinic+acetylcholine+receptor+protein+in+the+temporal+cortex+in+Alzheimer's+and+Parkinson's+disease--a+stereological+approach.">Cellular expression of alpha7 nicotinic acetylcholine receptor protein in the temporal cortex in Alzheimer's and Parkinson's disease--a stereological approach.</a> Neurobiol Dis. 7 (6 Pt B), 666-672 (2000).</li><li>Ikonomovic, M. D., Wecker, L., Abrahamson, E. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cortical+&#945;7+nicotinic+acetylcholine+receptor+and+&#946;-amyloid+levels+in+early+alzheimer+disease.">Cortical &#945;7 nicotinic acetylcholine receptor and &#946;-amyloid levels in early alzheimer disease.</a> Arch Neurol. 66 (5), 646-651 (2009).</li><li>Richards, C. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Trafficking+of+&#945;4*+Nicotinic+Receptors+Revealed+by+Superecliptic+Phluorin.">Trafficking of &#945;4* Nicotinic Receptors Revealed by Superecliptic Phluorin.</a> J Biol Chem. 286 (36), 31241-31249 (2011).</li><li>Kuryatov, A., Luo, J., Cooper, J., Lindstrom, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nicotine+acts+as+a+pharmacological+chaperone+to+up-regulate+human+a4b2+acetylcholine+receptors.">Nicotine acts as a pharmacological chaperone to up-regulate human a4b2 acetylcholine receptors.</a> Mol Pharmacol. 68 (6), 1839-1851 (2005).</li><li>Fox, A. M., Moonschi, F. H., Richards, C. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+nicotine+metabolite,+cotinine,+alters+the+assembly+and+trafficking+of+a+subset+of+nicotinic+acetylcholine+receptors.">The nicotine metabolite, cotinine, alters the assembly and trafficking of a subset of nicotinic acetylcholine receptors.</a> J Biol Chem. 290 (40), 24403-24412 (2015).</li><li>Henderson, B. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nicotine+exploits+a+COPI-mediated+process+for+chaperone-mediated+up-regulation+of+its+receptors.">Nicotine exploits a COPI-mediated process for chaperone-mediated up-regulation of its receptors.</a> J Gen Physiol. 143 (1), 51-66 (2014).</li><li>Henderson, B. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Menthol+Alone+Upregulates+Midbrain+nAChRs,+Alters+nAChR+Subtype+Stoichiometry,+Alters+Dopamine+Neuron+Firing+Frequency,+and+Prevents+Nicotine+Reward.">Menthol Alone Upregulates Midbrain nAChRs, Alters nAChR Subtype Stoichiometry, Alters Dopamine Neuron Firing Frequency, and Prevents Nicotine Reward.</a> J Neurosci. 36 (10), 2957-2974 (2016).</li><li>Ameen, N., Silvis, M., Bradbury, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Endocytic+trafficking+of+CFTR+in+health+and+disease.">Endocytic trafficking of CFTR in health and disease.</a> J. Cyst. Fibros. 6 (1), 1-14 (2007).</li><li>Pauly, J. R., Marks, M. J., Robinson, S. F., van de Kamp, J. L., Collins, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chronic+nicotine+and+mecamylamine+treatment+increase+brain+nicotinic+receptor+binding+without+changing+alpha+4+or+beta+2+mRNA+levels.">Chronic nicotine and mecamylamine treatment increase brain nicotinic receptor binding without changing alpha 4 or beta 2 mRNA levels.</a> J Pharmacol Exp Ther. 278 (1), 361-369 (1996).</li><li>Govind, A. P., Walsh, H., Green, W. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nicotine-induced+upregulation+of+native+neuronal+nicotinic+receptors+is+caused+by+multiple+mechanisms.">Nicotine-induced upregulation of native neuronal nicotinic receptors is caused by multiple mechanisms.</a> J Neurosci. 32 (6), 2227-2238 (2012).</li><li>Mazzo, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nicotine-modulated+subunit+stoichiometry+affects+stability+and+trafficking+of+alpha3beta4+nicotinic+receptor.">Nicotine-modulated subunit stoichiometry affects stability and trafficking of alpha3beta4 nicotinic receptor.</a> J Neurosci. 33 (30), 12316-12328 (2013).</li><li>Moroni, M., Zwart, R., Sher, E., Cassels, B. K., Bermudez, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=&#945;4&#946;2+nicotinic+receptors+with+high+and+low+acetylcholine+sensitivity:+pharmacology,+stoichiometry,+and+sensitivity+to+long-term+exposure+to+nicotine.">&#945;4&#946;2 nicotinic receptors with high and low acetylcholine sensitivity: pharmacology, stoichiometry, and sensitivity to long-term exposure to nicotine.</a> Mol Pharmacol. 70 (2), 755-768 (2006).</li><li>Tsien, R. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+green+fluorescent+protein.">The green fluorescent protein.</a> Annu Rev Biochem. 67, 509-544 (1998).</li><li>Miesenbock, G., De Angelis, D. A., Rothman, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Visualizing+secretion+and+synaptic+transmission+with+pH-sensitive+green+fluorescent+proteins.">Visualizing secretion and synaptic transmission with pH-sensitive green fluorescent proteins.</a> Nature. 394 (6689), 192-195 (1998).</li><li>Fox-Loe, A. M., Dwoskin, L. P., Richards, C. I., Ming, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Neuromethods: Nicotinic Acetylcholine Receptor Technologies. 117, (2016).</li><li>Khiroug, S. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dynamic+visualization+of+membrane-inserted+fraction+of+pHluorin-tagged+channels+using+repetitive+acidification+technique.">Dynamic visualization of membrane-inserted fraction of pHluorin-tagged channels using repetitive acidification technique.</a> BMC Neurosci. 10 (141), (2009).</li><li>Araki, Y., Lin, D. T., Huganir, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Plasma+membrane+insertion+of+the+AMPA+receptor+GluA2+subunit+is+regulated+by+NSF+binding+and+Q/R+editing+of+the+ion+pore.">Plasma membrane insertion of the AMPA receptor GluA2 subunit is regulated by NSF binding and Q/R editing of the ion pore.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 107 (24), 11080-11085 (2010).</li><li>Yudowski, G. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Real-time+imaging+of+discrete+exocytic+events+mediating+surface+delivery+of+AMPA+receptors.">Real-time imaging of discrete exocytic events mediating surface delivery of AMPA receptors.</a> J Neurosci. 27 (41), 11112-11121 (2007).</li><li>Mattheyses, A. L., Simon, S. M., Rappoport, J. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Imaging+with+total+internal+reflection+fluorescence+microscopy+for+the+cell+biologist.">Imaging with total internal reflection fluorescence microscopy for the cell biologist.</a> J Cell Sci. 123, 3621-3628 (2010).</li><li>Axelrod, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Total+Internal+Reflection+Fluorescence+Microscopy.">Total Internal Reflection Fluorescence Microscopy.</a> Methods Cell Biol. 89, 169-221 (2008).</li><li>Paroutis, P., Touret, N., Grinstein, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+pH+of+the+secretory+pathway:+measurement,+determinants,+and+regulation.">The pH of the secretory pathway: measurement, determinants, and regulation.</a> Physiol (Bethesda). 19, 207-215 (2004).</li></ol>

The authors have no conflicts of interest to declare.

9月のpH感受性は、細胞膜に存在する受容体は、小胞体内の細胞内受容体と区別することができ、挿入イベントを解決するために使用することができる受容体担持小胞5、7、8、9、18、19、20 。結合表面のビオチン化リガンドを含むいくつかの技術が広くタンパク質表面レベルを測定するために使用されます。いくつかのケースでは、ウェスタンブロットはまたERとPM常駐タンパク質を区別するために使用することができます。このSEP-ベースの技術は、表面発現の迅速な読み出しおよびPMにERに局在するタンパク質の変化を定量化する能力を提供し、従来の測定に相補的です。 9月以来、遺伝的に、目的のタンパク質にnonspeの問題を符号化されていますcificが排除される結合および感度が増加します。 9月には、中性pHで488 nm励起を受けるが、pHが&lt;6の酸性条件下で励起されません。細胞外pHが7.4である場合、蛍光は、小胞体および細胞膜上に存在するnAChR類について測定されるがない低いpH分泌小胞またはゴルジにおけるにとって液（pH &lt;6）23。撮影時には、pHが7.4のECSは、pH 5.4で、それ以外は同一の解決のために交換されます。これらの画像における集積密度の差は、細胞の原形質膜の集積密度です。 100を乗じたpH7.4のTIRF励起領域内の全積分密度、この数字を割ると、原形質膜5、7、8、9の割合を与えます。これらの研究はTIRFMを使用しながら、同様のアッセイは、エピ蛍光を用いて行うことができます。狭い励起体積が細胞内受容体に対する可視PM常駐受容体の割合を増加させるので受容体の大部分は、ERに存在するのnAChRのような膜受容体の場合、TIRMが理想的です。これは、細胞小器官間の受容体分布の変化に対するアッセイの感度を増加させます。 PMのより高い発現レベルを有するタンパク質を、落射蛍光ベースのSEP研究は、受容体の発現の変化を測定するのに十分です。しかし、また、pHが7.4で測定された単一の小胞の挿入イベントは、TIRFMが必要です。容易にTIRFMで見ながら、より高いpH形質膜と融合し、低pHの人身売買の小胞に対応する蛍光のバーストは、典型的には、エピ蛍光で識別可能ではありません。 TIRFイメージング条件で9月を組み込みます SEPが遺伝的に膜タンパク質の細胞外ドメインに組み込むことができます。 9月の大きさや場所に、それはVERIFに重要です<html>修飾タンパク質が大幅に野生型タンパク質から人身売買や機能に違いはありませんY。アッセイは9月を使用して行われるべき標識の取り込み活性を破壊しなかったことを確認するために、タンパク質を標識しました。他の受容体に対する蛍光リガンド結合およびウェスタンブロッティングは、輸送を検証するために使用することができるが、イオンチャネルの場合、電気及びイオン透過性の測定は、理想的です。彼らはガラスボトムディッシュに直接取り付けるため、接着細胞は、理想的には、TIRFMを有する市販のトランスフェクション試薬を用いたトランスフェクションおよびイメージングに適しています。この付着は、ガラスサンプル界面から約150nmの範囲内のエバネッセント波によってTIRF励起を確保する必要があります。高解像度TIRF画像を達成するために、サンプルは、画像21の間に平坦なままにする必要があります。ポリ-D-リジンコーティングN2a細胞を撮像するときに平坦な表面を維持するために、細胞の動きを最小限に付着マトリックスを提供するために有益です小娘= &quot;外部参照&quot;&gt; 7。プレーティング細胞密度は、細胞が全反射を達成するために、ガラス皿上で分離されるように最適化する必要があります。細胞クラスターは、単一の光学平面フラット細胞付着を防止することによって全反射を妨げます。 1面のみがTIRFに焦点を当てているので、適切な細胞形態を維持することはイメージングのために重要です。溶液09月研究で交換されているとき、これは特に重要です。形態学的変化を最小限に抑えるために、pH7.4および5.4で画像を迅速に収集する必要があります。また、ECS（pHは5.4）は、最終的に細胞小器官の構造と内部9月標識受容体の蛍光を変化させること、細胞内膜を透過します。これは、簡単に数分以内に各pH条件で画像を収集することによって回避されます。同じイメージングセッションで複数の皿からのデータは、分析した細胞の数を増加させるために組み合わせることができます。ソリューションを変更する場合は、慎重にピペットを用いてpHを7.4 ECS溶液を除去し、pHを5.4 ECSはトンに滴下を追加彼一品。取り外しまたは細胞にストレスを与えたり、保存ステージ位置に対して皿を移動することができますあまりにも急速に溶液を添加します。交換溶液の潅流システムは、溶液交換が完了するとすぐに起こる限り、利用することができます。各溶液の正確な塩濃度は、細胞の歪みを最小限にするために必要とされます。ステージトップインキュベーターは、撮像しながら、温度の変動を低減するために組み込むことができます。 TIRFイメージング TIRFイメージングは​​、単一の光学面に着目してバックグラウンド蛍光を低減します。これは、ガラスサンプルインターフェース21、22から約150nmの範囲内選択的に励起フルオロフォアによって信号対雑音比を増加させます。この領域内では、解像度が大きく、特に原形質膜で、増加されます。受容体の大部分が細胞内に位置している場合に必要です。膜受容体の高い割合である場合原形質膜上に位置し、この9月に基づくアプローチは、落射蛍光で細胞内局在を決定するために利用することができます。総受容体のわずかな割合は、nAChR類と同様に、原形質膜に輸送されている場合は、TIRFMは、原形質膜における蛍光のpH依存性の変化を定量化することが必要です。また、TIRFMは、単一の小胞輸送のイベントや分泌経路内の受容体の分布の分解能を可能にします。基本的なTIRFのセットアップは、励起光の臨界角を調整するステッピングモータに連結された9月の励起、ファイバ用の488nm DPSSレーザーを採用しています。臨界角に達するまで、TIRを達成するために、ビームは、対物の背面開口部を横切って横方向に変換されます。細胞は60Xまたは100X、1.49 NA油浸対物レンズを用いて結像されます。試料（細胞について&gt; 1.38）の屈折率よりも高い開口数はTIRFために必要な臨界角に達するために必要とされます。 1.45 NAの目的は十分ではなく、1.49になります励起の角度を操作するときにNAがより実用的です。発光は、512×512ピクセルの8ミリアレイと電子増倍電荷結合素子（EMCCD）を用いて検出されます。 60Xの対物レンズを使用して、複数の単離された細胞は、1視野内に捕捉することができます。 タンパク質発現のベースの研究を蛍光する主要な欠点の1つは15を光退色されます。この励起は、経時的な蛍光強度の不可逆的な減少フルオロフォア結果の分解を誘導しました。このため、成功したイメージングは​​EMCCD内で使用される励起およびオンチップ・ゲインのビームの強度との微妙なバランスに依存しています。励起強度は、検出のためのフルオロフォアを励起するのに十分高いが、急速に分子を光退色するほど高くないことが必要です。励起強度を増加させることとは対照的に、カメラのゲインは、検出のための信号を乗算するために使用することができ、これはまた、バックグラウンドを増加させtensity。画像の飽和を回避するために、EMゲイン設定を選択する際に加えて、注意を払わなければなりません。それは試料が光退色を最小限に到達する前の測定値との間では、励起光を遮断します。 pHを5.4に比較するためにpHが7.4のECSで細胞画像を収集する際に必要です。二つの画像間に生じる退色することは、pH変化に対する蛍光の欠如から区別できないので、この影響を最小限に抑えることが必要です。注意は、低レーザーパワーを使用することだけ必要な画像をキャプチャするために必要な期間に細胞を露出するように注意すべきです。各実験のために、細胞の集合は、対照として同一の撮像条件でpH7で測定することができます。全く間隔を使用しておらず、光退色の程度を決定するための制御を提供するアッセイを実施するために必要な露光時間と一致する期間中に露出させます。光退色は、元の強度の10％よりも大きい場合、補正曲線が観察され、光退色ラットから使用することができます蛍光強度の時間トレースを収集することによって、E。単一小胞の挿入イベントの場合、人身売買の小胞で9月標識受容体は、細胞膜との融合まで励起されない、いずれかのpHはオフ状態を指示したり、彼らが励起のTIRF領域の外側にあるため。そのため、SEPが受容体は、より高い励起パワーが単一のSEP分子を検出するために使用されることを可能にする、挿入するまで、光退色しませんタグを付けました。 結論として、この技術は、付着細胞型の様々な使用することができます。 SEPがタンパク質機能および輸送特性が維持される限り、実質的に任意の膜タンパク質に組み込むことができます。 TIRFは、原形質膜での分解能を向上させます。 9月には、末梢小胞体内のものから、原形質膜上に位置するタグタンパク質の分化を可能にします。

受容体の発現、分布、およびアセンブリにおける変化は、アルツハイマー病、パーキンソン病、嚢胞性線維症、および薬物嗜癖1、2、3、4、5を含む様々な疾患に接続されています。例えば、ニコチンおよび他のニコチン性リガンドは、輸送、発現、およびアップレギュレーション1、2、5、6、7、8、9、10の変化をもたらすニコチン性アセチルコリン受容体（nAChR類）の輸送に影響を与えます。ニコチンは、細胞内で組み立てのnAChRの数を増加させる原形質膜に向けて輸送を増加させますdは、いくつかのサブタイプの高感度版を優先するようにサブユニットのアセンブリを変更します。疾患モデルの人身売買、アセンブリ、および受容体の発現の明確な変化を解決することは薬物標的を定義することが不可欠である重要なメカニズムの詳細を提供します。理想的なアプローチは、急速に細胞内受容体および原形質膜に局在それらの区別になります。これは、特定のタンパク質の大部分は、nAChR類のように、細胞内に存在する場合に特に困難です。 nAChR類の大部分は、小胞体に局在しているので、従来の測定は、分泌経路に沿って局在と人身売買の変化を特定するために必要な時空間的分解能を欠いています。 nAChR類の受容体の輸送および発現の研究は、主に11を放射性リガンド結合を用いて行われてきた、ビオチン化アッセイ12、ウェスタンブロッティング13、または免疫沈降techniq<html> UEの12。これらの細胞のレポーター分子または固定の結合特異性に依存し、同時に細胞膜に常駐し、細胞内受容体を区別する能力を欠いています。したがって、イオンチャネルアセンブリおよび小胞ダイナミクスの研究は、主に、低スループット電気生理学的技術14に依存してきました。 優れた空間的および時間的な分解能は、蛍光顕微鏡法の進歩により可能です。例えば、緑色蛍光タンパク質（GFP）およびその変形などの遺伝的にコードされたレポーター分子は、非特異的結合の問題を排除し、感度15を増加させます。 superecliptic pHluorin（SEP）として知られているGFPのpH感受性変異体は、局在5、 図7、 図8を決定するために、細胞内区画間の固有のpH差を利用するために使用することができREF &quot;&gt; 9、16、17、18。SEPが、pHが6より高い場合に蛍光を発するが、より低いpHで、オフ状態のままであるので、それらの管腔側に9月でタグ付けされた受容体は、小胞体中に存在する場合に検出されます（人身売買の小胞に閉じ込めER）やプラズマ膜（PM）への挿入時に、ではなく。原形質膜上の受容体と接触している外pHの操作は、結果的に蛍光およびこれらの受容体の、したがって検出を変更します。同じセルの場合順次中性外pH 6より低いその後のpHの両方で撮像され、画像の差分が原形質膜上に位置する受容体に起因する。このことは、同時に、細胞内の測定（周辺ER）および原形質膜常駐受容体5を可能にします7,8 </suP&gt; 9。細胞外pHが中性である場合、単一の小胞の挿入イベントも解消することができます。低pH輸送小胞が細胞膜と融合すると、小胞体の内腔側は、蛍光7、18、19、20のバーストとして検出された遷移を引き起こし、中性の細胞外液に露出されます。 SEPが原形質膜および周辺小胞体に局在する受容体の測定を可能にし、これらの細胞内領域5、7、18間の受容体の輸送を測定するための手段を提供します。 形質膜においてより高い解像度を達成するために、遺伝的にコードされた9月との受容体は、全反射蛍光顕微鏡（TIRFM）によって撮像されます。この方法は、特にです有用TIRFMは、細胞膜の可視性を増大させるための受容体の大部分は、細胞内領域に局在している場合。 TIRFMはまた、PMへの挿入時に9月標識受容体を運ぶ単一小胞の輸送ダイナミクスの解像度を可能にします。全反射は、細胞およびガラスカバースリップ21、22間のような、異なる屈折率を有する材料の界面で起こります。ガラスセルの溶液の界面で全反射を達成するように配向された488nmの励起、照射時SEPが蛍光を発します。これは、試料中にこのボリューム内でのみエキサイティングな蛍光団を150nm程度に浸透するエバネッセント波を生成します。励起のこの範囲内の中性pH環境での受容体を含有するだけで9月には、原形質膜または末梢小胞体に存在するものに対応し、検出されます。検出は限らトンであることからOエバネッセント波によって励起は、細胞内領域からバックグラウンド蛍光が減少し、信号対雑音比は、21、22に増加されます。さらに、細胞の大部分を貫通していない放射ので、光損傷は、時間の経過にわたる生細胞イメージングを可能にする最小化されます。その結果、TIRFMはSEPが分泌経路に沿って膜受容体の細胞内局在性および輸送動力学を測定するために必要な高い分解能と感度を提供し、遺伝的にコードされて結合されます。

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="861">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:413px;">Reagent/Material</td>
			<td style="width:163px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Cell Culture Flasks with Filter Cap, Sterile, Greiner Bio One, 75 cm^2</td>
			<td>VWR</td>
			<td>82050-856</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:413px;">35 mm glass bottom petri dishes, sterile</td>
			<td style="width:163px;">Cell E&#38;G</td>
			<td style="width:119px;">GBD00002-200</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:413px;">Poly-D-lysine</td>
			<td style="width:163px;">vwr</td>
			<td align="right">215017510</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Dulbecco Modified Eagle Medium&#8206; (DMEM), High Glucose</td>
			<td style="width:163px;">Fisher Scientific</td>
			<td>11-965-084&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;">Opti-MEM I Reduced Serum Medium</td>
			<td style="width:163px;">Gibco / Fisher Scientific</td>
			<td>31-985-088</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;">Fetal Bovine Serum, Certified, US Origin, Standard (Sterile-Filtered)&#160;</td>
			<td style="width:163px;">Gibco / Fisher Scientific</td>
			<td>16-000-044</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">TrypLE Express Enzyme (1X), no phenol red</td>
			<td style="width:163px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">12604-021</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Penicillin-Streptomycin Solution</td>
			<td>VWR</td>
			<td>45000-652</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:413px;">Leibovitz&#39;s L-15 Medium, no phenol red</td>
			<td style="width:163px;">Gibco / Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">21083027</td>
			<td>Optional</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:413px;">Lipofectamine</td>
			<td style="width:163px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">11668030</td>
			<td>Gently mix; Do not vortex</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sodium chloride</td>
			<td style="width:163px;">Fisher Scientific</td>
			<td>BP358-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Potassium chloride</td>
			<td style="width:163px;">Fisher Scientific</td>
			<td>P217-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Magnesium chloride</td>
			<td style="width:163px;">Fisher Scientific</td>
			<td>BP214-500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Calcium chloride</td>
			<td style="width:163px;">Fisher Scientific</td>
			<td>C79-500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">HEPES</td>
			<td style="width:163px;">Fisher Scientific</td>
			<td>BP310-500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">D-Glucose</td>
			<td style="width:163px;">Fisher Scientific</td>
			<td>D16-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Objective immersion oil&#160;</td>
			<td style="width:163px;">Olympus</td>
			<td style="width:119px;">Type F</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:413px;">Name</td>
			<td style="width:163px;">Company</td>
			<td style="width:119px;">Catalog Number</td>
			<td>Comments</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:413px;">Equipment</td>
			<td style="width:163px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:413px;">Microscope</td>
			<td style="width:163px;">Olympus</td>
			<td style="width:119px;">IX81</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:413px;">Camera</td>
			<td style="width:163px;">Andor</td>
			<td>iXon Ultra 897</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:413px;">60x, 1.49 NA oil immersion objective</td>
			<td style="width:163px;">Olympus</td>
			<td>APON 60XOTIRF</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:413px;">Motorized stage</td>
			<td style="width:163px;">Prior</td>
			<td>IXPROXY</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:413px;">Motorized actuator (stepper motor)</td>
			<td style="width:163px;">Thorlabs</td>
			<td>ZST213</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:413px;">MetaMorph (or other imaging program)</td>
			<td style="width:163px;">Metamorph</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:413px;">488 nm laser</td>
			<td style="width:163px;">Market Tech</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:413px;">Single mode fiber</td>
			<td style="width:163px;">Thorlabs</td>
			<td style="width:119px;">SM450</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:413px;">Mirrors</td>
			<td style="width:163px;">Thorlabs</td>
			<td style="width:119px;">BB1-E01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:413px;">Dichroic 488 nm LP</td>
			<td style="width:163px;">Semrock</td>
			<td>Di02-R488-25x36</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:413px;">Bandpass filter, 488 nm</td>
			<td style="width:163px;">Semrock</td>
			<td>LL01-488-12.5</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:413px;">Bandpass filter, 525/50</td>
			<td style="width:163px;">Semrock</td>
			<td>FF03-525/50-25</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

utilizing phluorin-tagged receptors to monitor subcellular localization and trafficking

膜タンパク質輸送、組立、および表現を理解することは、細胞内小器官に存在するものと、原形質膜に局在するものを区別したアプローチが必要です。従来の蛍光ベースの測定は、異なる細胞小器官に存在する膜タンパク質を区別するための能力を欠いています。最先端の方法論は、全反射蛍光顕微鏡（TIRFM）とpH感受性蛍光色素分子を結合することにより、従来の方法を超越します。 TIRF照明は、このように、バックグラウンドを減少させる信号対雑音比を増加し、解像度を高め、ガラスサンプル界面から約150nmまでのサンプルを励起します。 TIRFMで励起体積は、原形質膜と、周辺ERなどの近くの細胞小器官を含みます。 Superecliptic pHluorin（SEP）は、GFPのpH感受性バージョンです。遺伝的に関心位置の膜タンパク質上の蛍光体の細胞外ドメインに9月をコードしますERの、細胞の細胞外領域内腔側。 SEPが、pHが6よりも大きい場合に蛍光性であるが、より低いpH値ではオフ状態のままです。したがって、（PM）原形質膜に小胞体（ER）または挿入時に常駐している場合には人身売買の小胞または、ゴルジ体などの他の細胞小器官に限定されないときに9月の蛍光を発するのタグが付け受容体。細胞外pHが細胞膜上の受容体の蛍光を決定するように調整することができます。同じセルのための中性および酸性の細胞外pHでのTIRF画像との間の蛍光の差異は、細胞膜上の受容体の相対的な数に対応します。これは、細胞内および細胞膜常駐受容体の同時測定を可能にします。細胞外pHが中性である場合、単一の小胞の挿入イベントはまた、原形質膜と融合し、蛍光状態に移行低pH輸送小胞に相当する、測定することができます。このversatil電子技術は、膜タンパク質の局在化、発現、および輸送を研究するために利用することができます。

受容体への9月の取り込みは、生細胞におけるその受容体の直接検出を可能にします。 TIRFMと相まって、これは、原形質膜とTIRF励起の領域における細胞内位置内の受容体の分布に相対的な発現レベルを評価することができます。単一の小胞輸送のイベントも解決することができます。 細胞膜上の9月で標識された受容体の相対的な発現レベル励起時のSEP蛍光は周囲の溶液のpHによって決定されます。 9月は、原形質膜常駐受容体と融合される場合、細胞外pHが上または5、7、8、9、17からその蛍光を有効に操作することができます。とき番目細胞外溶液のE pHは原形質膜とTIRF励起蛍光を発する領域内の小胞体の両方からの生理7.4、受容体です。細胞外溶液は、その後、pHを5.4のそれ以外は同一の溶液と交換することができます。これは、原形質膜常駐9月には、すべての観測された蛍光は、小胞体から今ある意味、オフ状態に遷移します。 図2は、pHが7.4（A）およびpH 5.4（B）の両方で撮像された細胞の一例を示しています。 TIRF励起領域内の末梢小胞体に比べて、原形質膜上の受容体の相対数は、その後、 図2Cに示されるpHは7.4、時よりもpHは5.4で蛍光の統合密度を減算することにより、数学的に計算されます。この計算された原形質膜の集積密度は、原形質膜上に位置するSEP-標識受容体の相対数及びTIRF励起内の対応しますボリューム。原形質膜と近く周辺小胞体はTIRFと優先的に励起されるので、この細胞内分布の比較は、細胞の全体細胞内領域、これらの領域に局在する受容体との間で、かつありません。 9月標識受容体の細胞内分布受容体のトラフィッキングは、小胞体に比べて細胞膜上に位置する受容体との間の比を比較することによって測定することができます。 100を乗じたpH7.4の全積分密度によって密度を統合し、原形質膜を、分割し、原形質膜5、7上に位置する9月標識受容体の相対的な割合を示します。対照として、細胞内のタンパク質輸送を破壊する細胞に添加することができるブレフェルジン。ブレフェルジンときAは、事実上、検出されたRECEのすべての存在でありますTIRF励起の領域内ptorsは低い％のPMで、その結果、小胞体に限定されます。さらに、変異した（Δ508-I539T）、嚢胞性線維症膜貫通調節因子（Δ508-I539T-CFTR）を陽性対照として使用することができます。 2〜3倍に細胞表面で増加した市販のVX-809、Δ508-I539T-CFTR発現の存在で。 単一小胞挿入イベント 9月には、蛍光を発するまたは輸送小胞の低pHでの光退色が、原形質膜7、16、18で7.4の細胞外pHに曝露されると蛍光を回復しません。挿入イベントは、原形質膜への輸送小胞の完全な融合物に相当する、少なくとも3つのフレーム（600ミリ秒）の持続形質膜における蛍光のバーストとして視覚化されます<html> 図3に示すように。挿入（ 図3B）の前に、識別可能なバーストが存在しません。細胞（ - 3I 図3H）のバルク蛍光に組み込むまで、 - （3G 図3D）輸送小胞は、膜を横切って拡散し、（ 図3C）到着する蛍光強度の増加が見られます。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/55466/55466fig1.jpg" /> 図1：TIRF顕微鏡の概略。このTIRFのセットアップは、対物レンズの背面開口部を横切ってビームを平行移動させることにより、励起光の臨界角を調整するステッピングモータに連結された9月の励起、ファイバ用の488nm DPSSレーザーを利用しています。細胞は60X、1.49 NA油浸対物レンズを用いて結像されます。発光デバイスに結合電子増倍電荷を使用して検出されます。ファイル/ ftp_upload / 55466 / 55466fig1large.jpg &quot;ターゲット=&quot; _空白 &quot;&gt;この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。 <img alt="図2" src="/files/ftp_upload/55466/55466fig2.jpg" /> 図2：原形質膜上に発現し、人身売買。 pHが7.4（A）でα3日- 9月/β4-WTのnAChRを発現するN2aの細胞は、原形質膜および小胞体に位置する受容体を示します。 pHが5.4（B）では、原形質膜上の受容体は、これだけ小胞体常駐受容体が表示され、蛍光を発しありません。 pHを7.4およびpH 5.4（C）に統合された濃度の差は、原形質膜に局在する受容体に相当します。 <a href="https://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/55466/55466fig2large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> 図3：シングル小胞挿入イベント。細胞外pH7.4でα3日- 9月/β4-WTのnAChRを発現するN2aの細胞は（A）に示されています。すぐに挿入（B）の前に、蛍光のないバーストは表示されません。 9月を運ぶ人身売買の小胞は、（C）に到着し、9月標識受容体は、形質膜を横切って拡散（D - G）以前に挿入された受容体から区別できないまで、（H - I）。 <a href="https://ecsource-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/55466/55466fig3large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a>

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Utilizing pHluorin-tagged Receptors to Monitor Subcellular Localization and Trafficking

pH感受性蛍光体で膜タンパク質の細胞外ドメインをラベリング、superecliptic pHluorin（SEP）は、細胞内局在、発現、および人身売買を決定することができます。全反射蛍光顕微鏡（TIRFM）の撮像SEP-標識されたタンパク質は、末梢ERおよび原形質膜中のタンパク質レベルの定量化を可能にします。

細胞内局在や人身売買を監視するpHluorinタグ付き受容体を利用します

Understanding membrane protein trafficking, assembly, and expression requires an approach that differentiates between those residing in intracellular ...

utilizing-phluorin-tagged-receptors-to-monitor-subcellular

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Biology

8.7K ビュー.  University of Kentucky.  pH感受性蛍光体で膜タンパク質の細胞外ドメインをラベリング、superecliptic pHluorin（SEP）は、細胞内局在、発現、および人身売買を決定することができます。全反射蛍光顕微鏡（TIRFM）の撮像SEP-標識されたタンパク質は、末梢ERおよび原形質膜中のタンパク質レベルの定量化を可能にします。 

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A Cell-to-cell Macromolecular Transport Assay in Planta Utilizing Biolistic Bombardment

Here, we present a simple and rapid protocol to detect and assess the extent of cell-to-cell macromolecular transport in planta. In this protocol, a fluorescently tagged-protein of interest is transiently expressed in plant tissue following biolistic delivery of its encoding DNA construct. The intra- and intercellular distribution of the tagged protein is then analyzed by confocal microscopy. We describe this technology in detail, providing step-by-step protocols to assay and evaluate the extent of symplastic protein transport in three plant species, Arabidopsis thaliana, Nicotiana benthamiana and N. tabacum (tobacco).

A Cell-to-cell Macromolecular Transport Assay in Planta Utilizing Biolistic Bombardment

Macromolecular trafficking between plant cells can be assessed by transiently expressing a fluorescently-tagged protein of interest and analyzing its intra- and intercellular distribution by confocal microscopy.

細胞間の高分子輸送アッセイプランタで微粒子銃砲撃を活用

Here, we present a simple and rapid protocol to detect and assess the extent of cell-to-cell macromolecular transport in planta. In this protocol, a ...

生物学

Gastrointestinal Motility Monitor (GIMM)

The Gastrointestinal Motility Monitor (GIMM; Catamount Research and Development; St. Albans, VT) is an in vitro system that monitors propulsive motility in isolated segments of guinea pig distal colon. The complete system consists of a computer, video camera, illuminated organ bath, peristaltic and heated water bath circulating pumps, and custom GIMM software to record and analyze data. Compared with traditional methods of monitoring colonic peristalsis, the GIMM system allows for continuous, quantitative evaluation of motility. The guinea pig distal colon is bathed in warmed, oxygenated Krebs solution, and fecal pellets inserted in the oral end are propelled along the segment of colon at a rate of about 2 mm/sec. Movies of the fecal pellet proceeding along the segment are captured, and the GIMM software can be used track the progress of the fecal pellet. Rates of propulsive motility can be obtained for the entire segment or for any particular region of interest. In addition to analysis of bolus-induced motility patterns, spatiotemporal maps can be constructed from captured video segments to assess spontaneous motor activity patterns. Applications of this system include pharmacological evaluation of the effects of receptor agonists and antagonists on propulsive motility, as well as assessment of changes that result from pathophysiological conditions, such as inflammation or stress. The guinea pig distal colon propulsive motility assay, using the GIMM system, is straightforward and simple to learn, and it provides a reliable and reproducible method of assessing propulsive motility.

Gastrointestinal Motility Monitor GIMM

Evaluation of colonic motility in the guinea pig distal colon with the Gastrointestinal Motility Monitor (GIMM) is a straightforward and simple to learn approach to quantitatively evaluate propulsive motility in the gastrointestinal tract.

消化管運動のモニター（GIMM）

The Gastrointestinal Motility Monitor (GIMM; Catamount Research and Development; St. Albans, VT) is an in vitro system that monitors propulsive motility ...

Nano-fEM: Protein Localization Using Photo-activated Localization Microscopy and Electron Microscopy

Mapping the distribution of proteins is essential for understanding the function of proteins in a cell. Fluorescence microscopy is extensively used for protein localization, but subcellular context is often absent in fluorescence images. Immuno-electron microscopy, on the other hand, can localize proteins, but the technique is limited by a lack of compatible antibodies, poor preservation of morphology and because most antigens are not exposed to the specimen surface. Correlative approaches can acquire the fluorescence image from a whole cell first, either from immuno-fluorescence or genetically tagged proteins. The sample is then fixed and embedded for electron microscopy, and the images are correlated 1-3. However, the low-resolution fluorescence image and the lack of fiducial markers preclude the precise localization of proteins. 
Alternatively, fluorescence imaging can be done after preserving the specimen in plastic. In this approach, the block is sectioned, and fluorescence images and electron micrographs of the same section are correlated 4-7. However, the diffraction limit of light in the correlated image obscures the locations of individual molecules, and the fluorescence often extends beyond the boundary of the cell. 
Nano-resolution fluorescence electron microscopy (nano-fEM) is designed to localize proteins at nano-scale by imaging the same sections using photo-activated localization microscopy (PALM) and electron microscopy. PALM overcomes the diffraction limit by imaging individual fluorescent proteins and subsequently mapping the centroid of each fluorescent spot 8-10. 
We outline the nano-fEM technique in five steps. First, the sample is fixed and embedded using conditions that preserve the fluorescence of tagged proteins. Second, the resin blocks are sectioned into ultrathin segments (70-80 nm) that are mounted on a cover glass. Third, fluorescence is imaged in these sections using the Zeiss PALM microscope. Fourth, electron dense structures are imaged in these same sections using a scanning electron microscope. Fifth, the fluorescence and electron micrographs are aligned using gold particles as fiducial markers. In summary, the subcellular localization of fluorescently tagged proteins can be determined at nanometer resolution in approximately one week.

We describe a method to localize fluorescently tagged proteins in electron micrographs. Fluorescence is first localized using photo-activated localization microscopy on ultrathin sections. These images are then aligned to electron micrographs of the same section.

ナノFEM：写真活性化ローカライゼーション顕微鏡と電子顕微鏡を用いてタンパク質の局在

Mapping the distribution of proteins is essential for understanding the function of proteins in a cell. Fluorescence microscopy is extensively used for ...

Intravital Microscopy for Imaging Subcellular Structures in Live Mice Expressing Fluorescent Proteins

Here we describe a procedure to image subcellular structures in live rodents that is based on the use of confocal intravital microscopy. As a model organ, we use the salivary glands of live mice since they provide several advantages. First, they can be easily exposed to enable access to the optics, and stabilized to facilitate the reduction of the motion artifacts due to heartbeat and respiration. This significantly facilitates imaging and tracking small subcellular structures. Second, most of the cell populations of the salivary glands are accessible from the surface of the organ. This permits the use of confocal microscopy that has a higher spatial resolution than other techniques that have been used for in vivo imaging, such as two-photon microscopy. Finally, salivary glands can be easily manipulated pharmacologically and genetically, thus providing a robust system to investigate biological processes at a molecular level.
In this study we focus on a protocol designed to follow the kinetics of the exocytosis of secretory granules in acinar cells and the dynamics of the apical plasma membrane where the secretory granules fuse upon stimulation of the beta-adrenergic receptors. Specifically, we used a transgenic mouse that co-expresses cytosolic GFP and a membrane-targeted peptide fused with the fluorescent protein tandem-Tomato. However, the procedures that we used to stabilize and image the salivary glands can be extended to other mouse models and coupled to other approaches to label in vivo cellular components, enabling the visualization of various subcellular structures, such as endosomes, lysosomes, mitochondria, and the actin cytoskeleton.

Intravital microscopy is a powerful tool that enables imaging various biological processes in live animals. In this article, we present a detailed method for imaging the dynamics of subcellular structures, such as the secretory granules, in the salivary glands of live mice.

蛍光タンパク質を発現する生きたマウスでのイメージング細胞内の構造物の生体顕微鏡

Here we describe a procedure to image subcellular structures in live rodents that is based on the use of confocal intravital microscopy. As a model organ, ...

Genetically-encoded Molecular Probes to Study G Protein-coupled Receptors

To facilitate structural and dynamic studies of G protein-coupled receptor (GPCR) signaling complexes, new approaches are required to introduce informative probes or labels into expressed receptors that do not perturb receptor function. We used amber codon suppression technology to genetically-encode the unnatural amino acid, p-azido-L-phenylalanine (azF) at various targeted positions in GPCRs heterologously expressed in mammalian cells. The versatility of the azido group is illustrated here in different applications to study GPCRs in their native cellular environment or under detergent solubilized conditions. First, we demonstrate a cell-based targeted photocrosslinking technology to identify the residues in the ligand-binding pocket of GPCR where a tritium-labeled small-molecule ligand is crosslinked to a genetically-encoded azido amino acid. We then demonstrate site-specific modification of GPCRs by the bioorthogonal Staudinger-Bertozzi ligation reaction that targets the azido group using phosphine derivatives. We discuss a general strategy for targeted peptide-epitope tagging of expressed membrane proteins in-culture and its detection using a whole-cell-based ELISA approach. Finally, we show that azF-GPCRs can be selectively tagged with fluorescent probes. The methodologies discussed are general, in that they can in principle be applied to any amino acid position in any expressed GPCR to interrogate active signaling complexes.

We genetically-encode the unnatural amino acid, p-azido-L-phenylalanine at various targeted positions in GPCRs and show the versatility of the azido group in different applications. These include a targeted photocrosslinking technology to identify residues in the ligand-binding pocket of a GPCR, and site-specific bioorthogonal modification of GPCRs with a peptide-epitope tag or fluorescent probe.

遺伝的にコードされた分子プローブは、Gタンパク質共役受容体を研究する

To facilitate structural and dynamic studies of G protein-coupled receptor (GPCR) signaling complexes, new approaches are required to introduce ...

Analysis of SCAP N-glycosylation and Trafficking in Human Cells

Elevated lipogenesis is a common characteristic of cancer and metabolic diseases. Sterol regulatory element-binding proteins (SREBPs), a family of membrane-bound transcription factors controlling the expression of genes important for the synthesis of cholesterol, fatty acids and phospholipids, are frequently upregulated in these diseases. In the process of SREBP nuclear translocation, SREBP-cleavage activating protein (SCAP) plays a central role in the trafficking of SREBP from the endoplasmic reticulum (ER) to the Golgi and in subsequent proteolysis activation. Recently, we uncovered that glucose-mediated N-glycosylation of SCAP is a prerequisite condition for the exit of SCAP/SREBP from the ER and movement to the Golgi. N-glycosylation stabilizes SCAP and directs SCAP/SREBP trafficking. Here, we describe a protocol for the isolation of membrane fractions in human cells and for the preparation of the samples for the detection of SCAP N-glycosylation and total protein by using western blot. We further provide a method to monitor SCAP trafficking by using confocal microscopy. This protocol is appropriate for the investigation of SCAP N-glycosylation and trafficking in mammalian cells.

Analysis of SCAP N-glycosylation and Trafficking in Human Cells

We describe a modified method for membrane fraction isolation from human cells and sample preparation for the detection of SCAP N-glycosylation and total protein by using western blot. We further introduce a GFP-labeling method to monitor SCAP trafficking using confocal microscopy. This protocol can be used in regular biology laboratories.

SCAPの分析<em&gt; N</em&gt;ヒト細胞における-glycosylationと人身売買

Elevated lipogenesis is a common characteristic of cancer and metabolic diseases. Sterol regulatory element-binding proteins (SREBPs), a family of ...

Live-cell Imaging of Fungal Cells to Investigate Modes of Entry and Subcellular Localization of Antifungal Plant Defensins

Small cysteine-rich defensins are one of the largest groups of host defense peptides present in all plants. Many plant defensins exhibit potent in vitro antifungal activity against a broad-spectrum of fungal pathogens and therefore have the potential to be used as antifungal agents in transgenic crops. In order to harness the full potential of plant defensins for diseases control, it is crucial to elucidate their mechanisms of action (MOA). With the advent of advanced microscopy techniques, live-cell imaging has become a powerful tool for understanding the dynamics of the antifungal MOA of plant defensins. Here, a confocal microscopy based live-cell imaging method is described using two fluorescently labeled plant defensins (MtDef4 and MtDef5) in combination with vital fluorescent dyes. This technique enables real-time visualization and analysis of the dynamic events of MtDef4 and MtDef5 internalization into fungal cells. Importantly, this assay generates a wealth of information including internalization kinetics, mode of entry and subcellular localization of these peptides. Along with other cell biological tools, these methods have provided critical insights into the dynamics and complexity of the MOA of these peptides. These tools can also be used to compare the MOA of these peptides against different fungi.

Plant defensins play an important role in plant defense against pathogens. For effective use of these antifungal peptides as antifungal agents, understanding their modes of action (MOA) is critical. Here, a live-cell imaging method is described to study critical aspects of the MOA of these peptides.

エントリのモードと抗真菌植物のディフェンシンの細胞内局在を検討する真菌細胞の生細胞イメージング

Small cysteine-rich defensins are one of the largest groups of host defense peptides present in all plants. Many plant defensins exhibit potent in vitro ...

Production and Visualization of Bacterial Spheroplasts and Protoplasts to Characterize Antimicrobial Peptide Localization

The use of confocal microscopy as a method to assess peptide localization patterns within bacteria is commonly inhibited by the resolution limits of conventional light microscopes. As the resolution for a given microscope cannot be easily enhanced, we present protocols to transform the small rod-shaped gram-negative Escherichia coli (E. coli) and gram-positive Bacillus megaterium (B. megaterium) into larger, easily imaged spherical forms called spheroplasts or protoplasts. This transformation allows observers to rapidly and clearly determine whether peptides lodge themselves into the bacterial membrane (i.e., membrane localizing) or cross the membrane to enter the cell (i.e., translocating). With this approach, we also present a systematic method to characterize peptides as membrane localizing or translocating. While this method can be used for a variety of membrane-active peptides and bacterial strains, we demonstrate the utility of this protocol by observing the interaction of Buforin II P11A (BF2 P11A), an antimicrobial peptide (AMP), with E. coli spheroplasts and B. megaterium protoplasts.

Here we present a protocol to produce gram-negative Escherichia coli (E. coli) spheroplasts and gram-positive Bacillus megaterium (B. megaterium) protoplasts to clearly visualize and rapidly characterize peptide-bacteria interactions. This provides a systematic method to define membrane localizing and translocating peptides.

生産と細菌のスフェロプ ラストとプロトプ ラスト抗菌ペプチドの局在を特徴付けるための可視化

The use of confocal microscopy as a method to assess peptide localization patterns within bacteria is commonly inhibited by the resolution limits of ...

Detecting Protein Subcellular Localization by Green Fluorescence Protein Tagging and 4',6-Diamidino-2-phenylindole Staining in Caenorhabditis elegans

In this protocol, a green fluorescence protein (GFP) fusion protein and 4',6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) staining are used to track protein subcellular localization changes; in particular, a nuclear translocation under a heat stress condition. Proteins react correspondingly to external and internal signals. A common mechanism is to change its subcellular localization. This article describes a protocol to track protein localization that does not require an antibody, radioactive labeling, or a confocal microscope. In this article, GFP is used to tag the target protein EXL-1 in C. elegans, a member of the chloride intracellular channel proteins (CLICs) family, including mammalian CLIC4. An integrated translational exl-1::gfp transgenic line (with a promoter and a full gene sequence) was created by transformation and &#947;-radiation, and stably expresses the gene and gfp. Recent research showed that upon heat stress, not oxidative stress, EXL-1::GFP accumulates in the nucleus. Overlapping the GFP signal with both the nuclei structure and the DAPI signals confirms the EXL-1 subcellular localization changes under stress. This protocol presents two different fixation methods for DAPI staining: ethanol fixation and acetone fixation. The DAPI staining protocol presented in this article is fast and efficient and preserves both the GFP signal and the protein subcellular localization changes. This method only requires a fluorescence microscope with Nomarski, a FITC filter, and a DAPI filter. It is suitable for a small laboratory setting, undergraduate student research, high school student research, and biotechnology classrooms.

Detecting Protein Subcellular Localization by Green Fluorescence Protein Tagging and 4',6-Diamidino-2-phenylindole Staining in Caenorhabditis elegans

This protocol demonstrates how to track a protein nuclear translocation under heat stress by using a green fluorescence protein (GFP) fusion protein as a marker and 4',6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) staining. The DAPI staining protocol is fast and preserves the GFP and protein subcellular localization signals.

緑色蛍光タンパク質タグと 4', 6-Diamidino-2-phenylindole線虫の染色によるタンパク質細胞内局在を検出

In this protocol, a green fluorescence protein (GFP) fusion protein and 4',6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) staining are used to track protein ...

Probing Structural and Dynamic Properties of Trafficking Subcellular Nanostructures by Spatiotemporal Fluctuation Spectroscopy

Imaging-derived mean square displacement (iMSD) is used to address the structural and dynamic properties of subcellular nanostructures, such as vesicles involved in the endo/exocytotic trafficking of solutes and biomolecules. iMSD relies on standard time-lapse imaging, is compatible with any optical setup, and does not need to dwell on single objects to extract trajectories. From each iMSD trace, a unique triplet of average structural and dynamic parameters (i.e., size, local diffusivity, anomalous coefficient) is calculated and combined to build the "iMSD signature" of the nanostructure under study. 
The potency of this approach is proved here with the exemplary case of macropinosomes. These vesicles evolve in time, changing their average size, number, and dynamic properties passing from early to late stages of intracellular trafficking. As a control, insulin secretory granules (ISGs) are used as a reference for subcellular structures that live in a stationary state in which the average structural and dynamic properties of the whole population of objects are invariant in time. The iMSD analysis highlights these peculiar features quantitatively and paves the way to similar applications at the sub-cellular level, both in the physiological and pathological states.

Imaging-derived mean square displacement (iMSD) analysis is applied to macropinosomes to highlight their intrinsic time-evolving nature in terms of structural and dynamic properties. Macropinosomes are then compared to insulin secretory granules (ISGs) as a reference for subcellular structures with time-invariant average structural/dynamic properties.

時空間変動分光法による細胞内ナノ構造のトラッキングの構造と動特性のプロービング

Imaging-derived mean square displacement (iMSD) is used to address the structural and dynamic properties of subcellular nanostructures, such as vesicles ...