This work was supported by grant 1R01CA152303-01.

倫理文：患者由来の結腸直腸腺癌の腫瘍標本は、コロラド州の複数の治験審査委員会によって承認されたプロトコル（08から0439）に従ったコロラド大学病院で患者を同意から得ました。全ての動物作業はコロラド州デンバー施設内動物管理使用委員会（IACUC、プロトコル＃51412（06）1E及び96813（04）1E）の大学によって承認された動物プロトコルの下で行いました。 1.患者の血液を受信し、準備<ol><li> 1集める2 - クエン酸ナトリウムを含む血液/細胞分離管中の血液のミリリットル（血漿、リンパ球および単球バンド、密度勾配液、ゲル障壁、ならびに赤血球および好中球が含まれるチューブ相です）。注意、血液または組織と血液由来病原体のガイドラインに従ってください。 注：PBMCおよび血漿を含むことができる将来の研究のために使用することができる。circulaを単離し、腫瘍突然変異と生殖細胞系の遺伝的変化を比較することタンパク質およびマイクロRNAを調べる細胞遊離DNA（cfDNA）、 などを評価ティン腫瘍細胞、。 </li><li> RTでブレーキなしで15分間、2500×gで遠心分離血液/細胞分離管。 </li><li>末梢血単核細胞（管のリンパ球および単球帯域でのPBMC）を収集し、1.5 mlのマイクロ遠心チューブに入れ（クリアオートクレーブ可能、DNアーゼ、RNアーゼ、および発熱物質を含まない）、および滅菌リン酸緩衝と管の上部に記入生理食塩水（PBS）。 <ol><li>室温で3分間、2,300×gで遠心分離管の底部でのPBMCのペレットを形成します。次に、上清を注意深く取り除きます。 30秒間3000×gでペレットと遠心分離機を洗浄した後、上清を除去するために、滅菌PBSの1ミリリットルを追加します。 </li></ol></li><li>無菌極低温バイアル（DNアーゼおよびRNaseフリー、ノーヒトDNA、エンドトキシンを含まない）1.5ミリリットル中（チューブのプラズマ相に）血液/細胞分離管から血漿を収集するために、ピペットを使用し、中にPMBCのプラズマとペレットを入れます-80°C Fストレージ用reezer。 </li></ol> 2.患者の腫瘍サンプルを受信し、準備<ol><li>準備RPMIまたはDMEM培地1で次のいずれかのペニシリン - ストレプトマイシンおよび非必須アミノ酸の100（10％）、1：1000（1％）Plasmocin、及び10％不活性化ウシ胎児血清（完全培地）と追加20から25腫瘍標本のための滅菌コレクションカップにミリリットル。 </li><li>氷の上で完全培地を含む無菌カップに腫瘍サンプルを取得するか、4℃で維持。 注：腫瘍試料は、外科医によって除去病理学者によって処理され、完全なメディアとの無菌コレクションカップに配置され、過剰な患者の腫瘍組織の一部です。注意、血液または組織と血液由来病原体のガイドラインに従ってください。また、理想的には5匹のマウスを注入するために、腫瘍は約1cm³でなければなりません。 </li><li>免疫不全マウスに注入するための動物施設に腫瘍サンプルを持参してください。 注：これは、できるだけ早く腫瘍サンプルを処理するのが最善です。 <ol><li>層流フードでは、腫瘍カップから滅菌プラスチック切削皿に腫瘍サンプルを配置します。ゼラチン状のタンパク質の混合液300μlで満たしたオートクレーブし1.5ミリリットルマイクロ遠心チューブに約12 3×3×3ミリメートル片と場所を - 10にカットするためにオートクレーブし、小さなハサミとピンセットを使用してください。チューブを氷上に保管してください。 </li><li>優先順位としてはマウスに腫瘍を注入したが、残された腫瘍が、存在する場合、フラッシュ凍結バイアル（FF）、ホルマリン固定パラフィン包埋（FFPE）カップ、および生存腫瘍バイアルを収集します。 </li><li> FFの場合、このようなタンパク質、RNA、またはDNAの単離などのさらなる分析のための無菌極低温バイアルから腫瘍組織の小片を収集します。 -80℃の冷凍庫で長期を置きFF直ちに液体窒素デュワーへと格納します。 </li><li>十分な腫瘍がある場合、腫瘍は、少なくとも24時間ホルマリンでいったんFFPEのために、パラフィン包埋ブロックに10ミリリットル10％ホルマリンカップとプロセスに3小片を配置します。 注：24時間が基づいています私たちの組織学コア・提案11オフ。 </li><li>最後に、極低温管に残っている腫瘍を配置します。メディアを完了するために、10％ジメチルスルホキシド（DMSO）を添加することによって実行可能なメディアを作ります。次に、極低温管に1ミリリットルを追加し、氷上で保存します。注意：長時間氷上に保管しないでください。 <ol><li> 10腫瘍が将来的に5匹のマウスに注入するために理想的に十分でしょう小片に残った腫瘍をカット。それはイソプロピルアルコール冷凍コンテナ（ゆっくり時間に腫瘍1℃をフリーズ）に入れ、-80℃の冷凍庫に入れることができるようになるまで、その後、腫瘍は中に死亡しないことを確実にするために氷の上で生存腫瘍チューブを配置凍結プロセス。 注：長期保存のために腫瘍が除去される（2の後 - 3日）と大きな液体窒素デュワーに入れました。マウスに注入するために取り出されている場合を除き実行可能なチューブが解凍させてはならないことに注意してください。 </li></ol></li></ol></li></ol> 3。患者由来の腫瘍異種移植片の注射<ol><li>各個別の患者由来の腫瘍のために8週齢の雄および/または雌無胸腺ヌードマウス（欠損T細胞） - 5 6を使用してください。 10腫瘍（マウス当たり2回の注射）皮下（SQ）の合計を注入します。 注：元のヒト腫瘍は、F0として指定され、その後、いったん次の世代がF1であるマウスに注射します。また、それぞれのユニークな外植オートクレーブ鉗子、はさみ、およびトロカールを使用します。 </li><li>オートクレーブ処理12のGトロカールにゲル状のタンパク質の混合溶液からの腫瘍の負荷片とは、腫瘍が完全にトロカール内に押し込まれることを確認してください。 <ol><li>無菌層流フードでは、イソフルラン麻酔マシンに接続されている麻酔ボックスに5匹のマウスを置く（麻酔の維持のために3％イソフルラン - - 4％の酸素、および2 5％イソフルラン、3の初期速度で開始）そして、チャコールフィルター（過剰なガスを吸収します）。 注：経験豊富な技術者が上の全体の手順を実行することができるはずです約5分間の合計（マウス当たり約30秒）内の5匹のマウスのケージ。そのため、追加の熱支援や目の潤滑が一般的に使用されていません。経験の少ない個人またはトレーニング中に、非常に個人が一度に少ない動物での手順を実行し、および/または動物が5分よりも長く麻酔される場合は手順の間に温暖化パッド/アイ・潤滑を使用することを推奨します。手順は、私たちの大学のIACUC基準に基づいています。 </li></ol></li><li>マウスはもはや応答であることを確認しないために、マウスのつま先をつまんで、その後、イソフルランボックスの外にマウスを取ります。腹部はオートクレーブ処理12のGトロカールに到達するまで、中央の背側頸部とダウン皮下トロカールをスライド上の腫瘍を注入するためにクリーンなフィールドの上にマウスを置きます。 <ol><li>マウスの脇腹の各側に1つの腫瘍皮下を提供します。腫瘍が希望脇腹領域に留まることを確実にすること、トロカールを引き抜く際、腫瘍ピンチ。 GElatinousタンパク質混合物は、マウスの体温で硬化し、腫瘍の成長を助けるとSQ結合組織に固定するために約1週間腫瘍をカプセル化します。トロカールによって作られた病変は、4ミリメートルよりも大きくないとステープルで皮膚を閉鎖する必要はありません。 注意：私たちの獣医師にはクロージャが病変の非常に小さなサイズ、迅速な治癒時間（ミドル背側ネック領域は、病変の任意の皮膚の張りやグルーミングを低下させる）、何の感染は認められなかっし、この期間中に動物の綿密なモニタリングに基づいて必要とされない決定。 </li></ol></li><li>マウスは、メロキシカムを2mg / kgのSQ（鎮痛剤）離れた腫瘍注射部位から完全に目を覚まして注入される前に。次に、ケージにマウスを置き、マウスが目を覚ましと移動されるまで監視します。 注：完全に目を覚ましまで無人回復動物を放置しないでください。メロキシカムの投与量は、私たちの大学でIACUC基準に基づいています。 <ol><li>次に、4と同じ手順を繰り返しますマウスを残りと彼らの呼吸を監視します。 注：これは非常に迅速な手順であるとマウスはメロキシカム注射後すぐに目を覚ますが、必要に応じてイソフルランを調整しますのでご注意ください。マウスが取り出されるたびに、イソフルランを断ります。メロキシカムは24時間持続し、トロカールからの病変は完全に1週間で治癒します。 </li></ol></li></ol>患者由来の腫瘍異種移植片バンクの4メンテナンス<ol><li>少なくとも一週間に一度、マウスの成長と健康を監視します。腫瘍サイズ、腫瘍発生、腫瘍注射の日、マウスの健康状態を追跡するために、スプレッドシート（​​または他の追跡システム）を使用します。 注：マウスは15元の体重％、低ボディコンディションスコア（≥2）を紛失した場合、腫瘍潰瘍、腫瘍が2000ミリメートル3または総腫瘍3000ミリメートル3、または猫背（病弱であり、寒さ、無気力などに達しています。）どのような方法で、マウスは、CO₂を経由して安楽死させたりなどのように頸椎脱臼が続く麻酔しますecondary方法。腫瘍を収集し、それ以外のマウスはCO₂と頸椎脱臼を経由して安楽死させた場合、麻酔と頚椎脱臼を経由して安楽死させます。 </li><li>腫瘍は、上述した後、安楽死させるために頸椎脱臼を行うように、約1,500〜2,000 mm 3でマウスを麻酔ある場合。 <ol><li>マウスはハートビートを持っていないことを確認してください。オートクレーブ処理ハサミやピンセットでSQ腫瘍を切除。 注：腫瘍が最大1年間の成長を許可すると全く腫瘍が見られない場合には、その後、CO 2を介してマウスを安楽死させる、二の方法として、頸椎脱臼が続きます。 </li><li>パッセージ（5匹のマウスの新しいセット別名 ）次の世代に最高の増殖する腫瘍。また、上記のように残りの腫瘍を収集し、次に渡すと、12の腫瘍 - 10を収集するために、上記の手順を使用してください。 注：多数の実行可能なチューブを収集することは、早期の世代（F1 - F8）で非常に重要です。したがって、いくつかの実行可能なチューブ、FF管、およびgeneratあたり1 FFPEを収集イオン。 </li><li>マウスの新世代は、約300ミリメートル3の腫瘍増殖を有するまで残りのマウスを保管してください。残りのマウスは大きい腫瘍を有する場合、上記のように収集し続けます。 </li></ol></li><li>通路腫瘍に進み、F15まで、各段階で収集します。この時点で、液体窒素のうちできるだけ早い世代の生存可能なチューブを取り、氷上で解凍してみましょうし、上記腫瘍注入の手順に従ってください。 注：実行可能な管から成長する腫瘍は、世代から世代へ渡すと比べてマウスで成長に時間がかかるので、計画するとき心に留めておきます。特定のPDTXモデルはもはや通路で必要とされている場合は、安楽死させず、多数の実行可能なチューブは、将来の使用のために収集されることを保証するために、腫瘍を収集します。 </li></ol>患者由来の腫瘍異種移植片5.発達治療薬 F3世代のほとんどの腫瘍は良好な成長速度を持っている（より速く成長し、より多くの共同注意：nsistent）、したがって、PDTX薬効試験に進みます。 <ol><li>希望の腫瘍が非常に大きい場合（1500 - 2000ミリメートル3）、マウスの所望の量に展開するために、腫瘍を収集するために、上記の手順に従ってください。 <ol><li>仮説に応じて治療群ごとに必要な腫瘍の数を決定するテストされています。 注：ゲル状のタンパク質混合物溶液1mlをマウスに注入するための約30フィット小さな腫瘍片（腫瘍の形態に応じて）することができます。 </li></ol></li><li>腫瘍体積を決定するためにノギスで腫瘍を測定 - （300mm³約50〜）毎週、ほとんどの腫瘍が目に見えて小さい腫瘍を有するマウスを確認してください。腫瘍体積= [width²（最小測定）×長さ（最大測定値）] 0.52 xは。 注：ゲル状のタンパク質混合物溶液を、1週間の腫瘍増殖が正確になり、その後の後、一週間注射した腫瘍片を取り囲みます。 </li><li> 300mm³と - 50の間で腫瘍体積を使用しますnは左右の腫瘍を平均します。その後、お互いのいくつかの数字内のグループおよびグループあたり平均10腫瘍を治療群にランダム化します。次に、グループにマウスをソートし、所望の治療研究を開始。 </li><li>薬（薬物依存スケジュール）毎週二回、重さと対策（腫瘍）をマウスに投与量。研究の終了時に、麻酔及び頸椎脱臼を経由して、マウスを安楽死させると、ラボでの将来の薬力学的分析のために腫瘍を収集します。 注：試験車両腫瘍サイズおよびマウスの健康状態に依存して30日間続きます。 </li></ol> PDTX銀行の6機関<ol><li>研究と動物の適切な使用の繰り返し防止するために、十分に立証された形をしてください。 注：これは成功PDTXバンクへの鍵です。 <ol><li> PDTXバンクのマウス、トリートメント、データに、診療所でヒト患者から腫瘍を追跡するためにスプレッドシートを使用し、何が収集されます。注：これは冷凍庫、液体窒素デュワーを含み、およびFFPEストレージとしても。 </li></ol></li></ol>

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W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Enhanced+growth+of+human+met-expressing+xenografts+in+a+new+strain+of+immunocompromised+mice+transgenic+for+human+hepatocyte+growth+factor/scatter+factor.">Enhanced growth of human met-expressing xenografts in a new strain of immunocompromised mice transgenic for human hepatocyte growth factor/scatter factor.</a> Oncogene. 24 (1), 101-106 (2005).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

PDTX創薬プラットフォームは、新規化合物の臨床活性を予測する際の信頼性が低い他の前臨床モデルの欠点を改良モデルを提供しています。重要なことは、このモデルにおける腫瘍は転移能を保持し、生物学的に安定しており、世代から世代へ同様の薬剤応答性を示します。このモデルでは、患者由来の腫瘍を、無胸腺ヌードマウスに注射継代し、続いて治療の評価に使用されます。含ま成功PDTXバンクのためのいくつかの重要なステップがあります：1）凝集臨床チームは/同意患者を特定し、優れた研究室や技術的な動物と除去と腫瘍組織のグロスPDTXモデル用と2）強力な研究グループのためにすることPDTXバンクの腫瘍組織および保守を注入したマウスの健康状態を監視するためのスキル。私たちのPDTXモデルでの重要な利点は、トロカールの手順で腫瘍を注入されます。立方の代替方法腫瘍ポケットをめの設定し、その後縫合または皮膚クリップを使用すると、担当者のためにかかる多くの時間であり、より痛みのマウスのための薬物療法、および縫合または創傷クリップされた領域の監視を必要とします。トロカール手順は、以下の訓練を必要とする非常に迅速であり、マウスは、より少ない時間で麻酔下で、痛みが少なく薬が必要です。したがって、私たちの経験がトロカールで腫瘍を注入する代替方法に対する最良の方法です。これらの要因は、有意PDTXバンクの創薬プロセスにおける全体的な成功に影響を与えます。このin vivoモデルは、癌細胞株培養にエージェントをテストするよりもかなり高価であるが、PDTXモデルは、腫瘍学化合物を試験する際に、より臨床的に関連するアプローチを提供します。 CRC PDTXバンクでは、無胸腺ヌードマウスに注射した99腫瘍サンプルを受けています。マウスで成長し、複数世代に渡された99（68.7パーセントテイク率）腫瘍のうち68がありました。そこ我々は、受信したいくつかの腫瘍は、マウスでは増殖しなかった理由はいくつかあります。たとえば、私たちは時々私たちだけが腫瘍を確立する可能性を減少させる唯一のマウスに注入するために許可された組織のごく小さな部分を受け取りました。もう一つの問題は、時間に私たちは正常であったし、H＆Eスライド上の明らかな腫瘍細胞が含まれていなかった患者の組織を受け取ったことでした。また、いくつかの悪い組織の品質が既に治療に対する患者の応答があった壊死腫瘍を受信したことに起因し得ます。したがって、腫瘍の興行収入ときに信頼性の高い外科手術と病理学のチームを持っていることが重要です。これらの問題のいくつかを考えると、我々は究極の目標と新しい治療法の評価のためにこの貴重なモデルを作り、変異に関して、遺伝子発現、および臨床的特徴に完全に注釈付きの腫瘍の最大のCRC PDTX・バンクのうちの1つを確立することができました患者の転帰を改善します。 多くの生物学的および組み合わせ治療は、癌幹細胞集団の有効性、薬物耐性のメカニズム、ならびに治療効果を決定する目的で、このモデルで研究されてきました。当社グループは、これらの化合物のさらなる臨床開発に貴重な洞察を提供しているこの前臨床モデル12-18を使用して、多数の新たな生物学的経路の阻害剤の有効性を検討しました。これらの研究の多くは、将来の臨床試験で患者選択に役立つことがあり、予測バイオマーカー12-14,17,18を同定しました。また、他の研究ではさらに、このモデルを使用して、治療抵抗性のメカニズムを決定した合理的な組み合わせ19-24の開発につながりました。例えば、Bardelliや同僚19は、セツキシマブ治療が誘発されることMET増幅を示し、MetはCRC。別の研究では19、Bertotti らでセツキシマブに対する治療抵抗性の根底にある機構であってもよいこと。20セツキシマブに対して抵抗性であったCRC腫瘍における標的としてのHer2を同定しました。最後に、別のグループは25,26を中止したイリノテカンとの併用におけるNotch経路阻害剤による治療は、治療後のCRCの癌幹細胞集団と、腫瘍の再発を減少させることが示されています。一緒に、これらの研究は、有意に新規化合物のさらなる発展に影響を与えることができる薬剤開発プロセスにおけるPDTXモデルを利用する潜在力を実証します。 新規化合物の有効性を決定する際に、患者由来の腫瘍を用いて主要な利点にもかかわらず、このモデルにはいくつかの制限があります。本論文で実験的に示されているように、元の腫瘍（F0）からのヒト間質は、CRC PDTXモデルでF1世代でのマウスの間質に置き換えられます。特定の薬物標的に応じて、これはマウスのリガンドは、ヒト腫瘍細胞上の受容体（複数可）を活性化することができない問題があってもよいです。 instancのためeは、我々は、F1世代において、HGFは、マウス間質由来であり、研究は、マウスHGFは、機能的ヒトc-Met受容体27,28を活性化することができないと判断したことを示しています。結果としてのc-Met阻害剤は、これらのPDTXモデルにおいて抗腫瘍成長効果を発揮しない場合があります。実際には、ヒトHGF SCIDマウスは、この潜在的な問題28に対処するために開発されてきました。皮下腫瘍を使用することの別の欠点は、腫瘍の転移の可能性の治療効果を研究することができないことです。同所性モデルを使用して、より技術的に確立することが困難であり、画像の腫瘍増殖が、おそらく転移の治療効果に、より良い洞察を提供します。このモデルの最終的な限界は、腫瘍増殖および治療に対する耐性を容易にするその機能を増強における免疫系の役割を調査することができないことです。また、免疫療法の優れた活性を有する最近immunodeficieを使用して、診療所で実証ntのマウスは、免疫標的薬の調査を防ぐことができます。従って、ヒト化マウスモデルは、免疫腫瘍相互作用の基本的な役割を理解する上で価値を提供するだけでなく、他の新規で承認された化合物と組み合わせた免疫療法の研究を可能にすることができる、これらの制限に対処するために開発されてきました。 結論として、私たちは、治療の有効性を決定する上で非常に貴重であるCRC PDTXモデルを開発し、維持する上での方法は、予測バイオマーカーおよび新規抗がん剤の薬剤耐性経路を提供します。このモデルは、固有の課題がありますが、このモデルの有用性は、それが密接に前臨床評価に対する新規治療法のより正確かつ臨床的に関連する調査を提供しています元の腫瘍の腫瘍の不均一性を再現することです。この前臨床PDTXモデルの医薬品開発における臨床的影響の今後の評価は、最終的にこのパワーを決定します癌における治療法の臨床活性を予測するモデル。

大腸癌（CRC）は、米国における癌死亡に多大な貢献です。 2015年には、49700人が死亡1とCRCの推定132700新たな症例がありました。限局性疾患を有する患者における予後は良好であるが、進行した疾患を有する患者は、新しい治療法の開発に、この主要な優先順位を作り、予後不良を持っています。この疾患に対してデプロイされているケアの化学療法レジメンと新しい生物製剤の標準にもかかわらず、全体的な生存率の増分のみ増加しています。従って、この疾患における腫瘍増殖の促進に関与するドライバの経路を理解するのに多大な努力があります。 WNT、PI3キナーゼ（PI3K）、RAS、成長因子β（TGF-βの）とTP53 2を変換する：がんゲノムアトラスネットワークは最近、CRCの調節不全に関与し、含まれている多数の主な経路を特定しています。一緒に、OTを記述調査でCRCの成長を増強する彼女の経路は大きく、この患者集団3-5の生存率の改善を目的とした新しい治療法の開発に火をつけています。腫瘍学の薬剤開発における利用前臨床モデルでは、これらの新規化合物の臨床活性を予測するには、このプロセスに不可欠でした。 種々の前臨床モデルは、薬物開発プロセスで利用されてきました。前臨床のトランスジェニック動物モデルおよび細胞株は、主としてヒト腫瘍の複雑さを反映することができないことに、新規な腫瘍治療薬の臨床活性を決定するのに成功していない不死化することを考慮すると、患者由来の腫瘍異種移植片（PDTX）モデルが確立されています。このモデルの最大の利点は、腫瘍の不均一性が損なわれないままと密接に元患者の腫瘍6-9の分子特性およびクローン性を反映していることです。 PDTXモデルは、in vivoで優れを提供します新規な薬剤を研究するための前臨床プラットフォーム、薬剤耐性経路、組み合わせ戦略、がん幹細胞生物学10。 PDTXプロセスの概要を図1に示されている。これは、その過剰な腫瘍組織のいくつかは、この研究のために使用することができるように患者の同意、診療所で始まります。次に、手術で腫瘍の作品は、病理学者によって儲けされ、研究員に輸送するメディアに入れました。その直後に、腫瘍の部分を小片に切断され、免疫不全マウスの皮下に移植します。腫瘍が成長すると、それは腫瘍10を維持するために、マウスの異なる世代に継代されます。典型的には、F3世代後の腫瘍は、新規な化合物および/または組み合わせ治療が評価される処置試験に拡張することができます。利用次世代のSeq（ExomeのSeq、RNAのSeqおよびSNPアレイ）の潜在的な予測バイオマーカーが発見されています特定の治療から利益を得ることができる患者の選択を支援編。 1）単剤として、または組み合わせて新しい治療法の有効性を評価し、2）前臨床研究への感受性または耐性を予測するバイオマーカーを同定：PDTXモデルを使用しての包括的な目標はにあります。本稿では、我々は、CRC PDTXバンクの開始および維持における方法論を提供し、薬剤開発の発見で、このモデルの利点と限界を提供します。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/54393/54393fig1.jpg" /> CRC PDTXモデル議定書の 図1. 概要。患者由来の腫瘍は手術から受信し、すぐに皮下無胸腺ヌードマウスに注射されます。腫瘍が成長したら、それが次の世代へと拡大し、最終的には治療の研究のために拡張されます。治療RESPONSEが評価され、予測バイオマーカーは、患者の選択を助けることができることが確認されている。 <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/54393/54393fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a>

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="915">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">RPMI or DMEM</td>
			<td style="width:81px;">Corning</td>
			<td style="width:119px;">10-040-CV</td>
			<td style="width:499px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Penicillin-Streptomycin</td>
			<td style="width:81px;">Corning</td>
			<td style="width:119px;">30-002-CI</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Non-essential Amino Acids</td>
			<td style="width:81px;">Corning</td>
			<td style="width:119px;">25-025-CI</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Fetal Bovine Serum</td>
			<td style="width:81px;">Corning</td>
			<td style="width:119px;">35-010-CV</td>
			<td>Thaw in -4 &#176;C, then activate for 30 minutes at 60 &#176;C water bath</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">CPT blood tube</td>
			<td style="width:81px;">BD vacutainer</td>
			<td style="width:119px;">362761</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Microcentrifuge tube</td>
			<td style="width:81px;">Surelock</td>
			<td style="width:119px;">A-7002</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Phospate-Buffered Saline</td>
			<td style="width:81px;">Corning</td>
			<td style="width:119px;">21-040-CV</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Cyrogenic vials</td>
			<td style="width:81px;">Cyroking</td>
			<td style="width:119px;">C0732901</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Plastic tumor cutting dish</td>
			<td style="width:81px;">Trueline</td>
			<td style="width:119px;">TR4001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Scissors</td>
			<td style="width:81px;">Roboz</td>
			<td style="width:119px;">RS-5881</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Forceps</td>
			<td style="width:81px;">Roboz</td>
			<td style="width:119px;">RS-5135</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Matrigel (gelatinous protein mixture)</td>
			<td style="width:81px;">Corning</td>
			<td style="width:119px;">354234</td>
			<td>Store at -20 or -80 &#176;C, then thaw on ice, do not leave at room temperature</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">10% Formalin cups</td>
			<td style="width:81px;">Protocol</td>
			<td style="width:119px;">032-059</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Liquid Nitrogen Dewar Storage</td>
			<td style="width:81px;">Thermolyne</td>
			<td style="width:119px;">CY50900</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Portable liquid nitrogen dewar</td>
			<td style="width:81px;">Nalgene</td>
			<td style="width:119px;">4150-2000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Dimethyl Sulfoxide</td>
			<td style="width:81px;">Fischer</td>
			<td style="width:119px;">67-68-5</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Freezing container: Mr Frosty</td>
			<td style="width:81px;">Nalgene</td>
			<td style="width:119px;">5100-0001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Isopropyl Alcohol</td>
			<td style="width:81px;">Decon</td>
			<td style="width:119px;">64-17-5</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:216px;">Trocars</td>
			<td style="width:81px;">Innovative Research of America</td>
			<td style="width:119px;">MP-182</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Anesthesia machine</td>
			<td style="width:81px;">Patterson Veterinary</td>
			<td style="width:119px;">none</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Anesthesia box</td>
			<td style="width:81px;">Patterson Veterinary</td>
			<td style="width:119px;">none</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Isoflurane</td>
			<td style="width:81px;">Vet one</td>
			<td style="width:119px;">1038005</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">F-Air Canister</td>
			<td style="width:81px;">Bickford Omnicon</td>
			<td style="width:119px;">80120</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Meloxicam</td>
			<td style="width:81px;">Vet one</td>
			<td style="width:119px;">5182-90C</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Calipers</td>
			<td style="width:81px;">Fowler</td>
			<td style="width:119px;">54-100-167</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Weight scale</td>
			<td style="width:81px;">Ohaus</td>
			<td style="width:119px;">Scout Pro SP601</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

development and maintenance of a preclinical patient derived tumor xenograft model for the investigation of novel anti-cancer therapies

Patient derived tumor xenograft (PDTX) models provide a necessary platform in facilitating anti-cancer drug development prior to human trials. Human tumor pieces are injected subcutaneously into athymic nude mice (immunocompromised, T cell deficient) to create a bank of tumors and subsequently are passaged into different generations of mice in order to maintain these tumors from patients. Importantly, cellular heterogeneity of the original tumor is closely emulated in this model, which provides a more clinically relevant model for evaluation of drug efficacy studies (single agent and combination), biomarker analysis, resistant pathways and cancer stem cell biology. Some limitations of the PDTX model include the replacement of the human stroma with mouse stroma after the first generation in mice, inability to investigate treatment effects on metastasis due to the subcutaneous injections of the tumors, and the lack of evaluation of immunotherapies due to the use of immunocompromised mice. However, even with these limitations, the PDTX model provides a powerful preclinical platform in the drug discovery process.

CRC PDTXモデルで一般的な突然変異の類似点とTCGA 私たちは、CRC PDTXバンクにおける共通の変異（KRAS、NRAS、BRAF、PIK3CA、APC、CTNNB1およびTP53）の割合は、CRC患者集団で見られる変異頻度の代表であったかどうかを調べました。 図2A（TCGA）及びB（CRC PDTXバンク）に示すように、これらの遺伝子の変異の頻度は、TCGA（N = 276人の患者）とCRC PDTXバンク（N = 59 CRC患者）との間に非常に類似していました。 23％の差が見られたことにより観察された最大の違いは、APC遺伝子にありました。これらの結果は、CRC患者集団において観察された一般的な変異はよくCRC PDTXモデルで表現されることを示唆しています。 別の間の治療応答の安定性の評価ジェネレーションズこのCRC PDTXモデルでは、治療効果が異なる世代間で類似していたかどうかを判断するために設定してください。腫瘍は、胸腺欠損ヌードマウスに拡大した（10腫瘍/グループ）や、セツキシマブ（0.4 mgを週2回/マウスIP）およびイリノテカンなどのケア剤の標準の有効性を調べた（/ kgのIPは1週間に1回15 mg）を二つの別々の世代における4つのユニークなCRC PDTXモデル。 図3A及びBに示すように、CRC010（F6）は、治療感受性を示し、一方、CRC026（F3）は、セツキシマブ治療に対してより抵抗性でした。これらのCRCの外植片が異なる世代で処理した場合、同様の所見が認められました。 CRC026（F9）が抵抗性であったとCRC010（F7）がセツキシマブに対して感受性でした。 PDTXモデルでイリノテカンの有効性を決定するために、我々は2 CRC PDTXモデルにおける腫瘍増殖に対する治療効果を検討しました。 CRC098（F8）は、イリノテカン治療に耐性であったが、CRC036（F5）は、感度（ 図3C及びD）を示しました 。セツキシマブで観察されたように、異なる世代におけるイリノテカンによる治療は、これらの腫瘍における治療応答を変化させませんでした。 CRC098（F12）は抵抗性であったとCRC036（F10）は、イリノテカン（ 図3C及びD）に敏感でした。未処理の腫瘍の成長速度は、世代間が異なる場合があったが、イリノテカンおよびセツキシマブに対する治療応答は、抗癌治療を評価する上で、このモデルの安定性を示し、同じでした。 CRC PDTXモデルにおける間質成分の調査 次に、我々はこのCRCの外植片モデル内の間質成分は、ヒトおよび/またはマウス由来の細胞で構成されていたかどうかを判断するに興味を持っていました。我々は、マウスから構成され、デュアルカラーのCot-1 FISHアッセイを使用しましたベビー-1 DNA（緑蛍光団）とF0とF1世代25との間に10の別々のCRCの外植片にマウスとヒトの細胞を決定するために人間のCot-1 DNA（赤蛍光団）。 図4Aに示すように、ヒト腫瘍は、現在すべてのマウス間質に囲まれているため、F1世代ヒト間質は、マウス間質によって置き換えられています。これらの知見は、F0とF1世代間のCot-1 FISHを行ったすべての10のCRC植片で明らかでした。簡易ベッド-1 FISHに加えて、我々は、これらのリガンドのためのマウスおよびヒトのELISAを使用してF0及びF1世代マウスおよびヒトHGF及びVEGFリガンドのタンパク質レベルを調べました。 F0世代でHGF誘導されたすべての人間は、F1世代でのマウスHGFと交換され、一方、 図4BおよびCに表示されているように、VEGFリガンドは、F1世代におけるヒトおよびマウスの両方で構成されていました。一緒に、これらの実験は、CRC PDTXマウスモデルにおいて、マウス間質が目に人間の間質を追い越すことことを示唆していますE F1が発生し、ヒトおよび/またはマウスが誘導さに対して変動し得る分泌リガンド。 <img alt="図2" src="/files/ftp_upload/54393/54393fig2.jpg" /> CRC PDTX銀行とTCGAで一般的な変異の 図2. 比較。我々は、KRAS、NRAS、BRAF、PIK3CA、CTNNB1とTP53に関してTCGA（A）とCRC PDTXモデル（B）との間で非常に類似した突然変異頻度を観察。 <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/54393/54393fig2large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <img alt="図3" src="/files/ftp_upload/54393/54393fig3.jpg" /> 図3. 腫瘍増殖に対するセツキシマブとイリノテカン処理の影響。（A）CRC026は時evaluセツキシマブに対する耐性を表示しましたF3とF9世代atedおよび（B）は、CRC010はF6とF7世代におけるセツキシマブに対する感度を示した。（C）（D）CRC036は、F5におけるイリノテカンに敏感であったCRC098は、F8とF12の世代にイリノテカンに耐性を示しましたそして、F10世代。各データ点は、治療群当たり10の腫瘍の平均を表します。マウスは、セツキシマブ（100μlのIPを400μg/マウス）を2回、週およびイリノテカン（100μlのIPを20mg / kg）で処理し、週一回投与しました。提示されたデータは、平均±SEM。 <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/54393/54393fig3large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <img alt="図4" src="/files/ftp_upload/54393/54393fig4.jpg" /> 図4. F0とF1世代でマウスの評価と腫瘍細胞のコンポーネント。（A）デュアルColorヒトコット-1 DNA（赤色）およびマウスコット-1 DNA（緑）のためのFISHは、F0及びF1世代の腫瘍間の差を調べるために使用しました。ヒト間質（F0）は、CRC098とCR174（スケール= 20倍）で、マウス間質（F1）に置き換えられています。壊死細胞を低減又はDAPIのインターカレーション及び赤色蛍光の欠如により同定しました。 F0とF1の間にELISA（マウスおよびヒトELISA法）により、マウスおよびヒトHGFとVEGFリガンド発現の調査。（B）ヒトHGFは、F1世代及び（C）ヒトおよびマウスVEGFでマウスに置き換えられましたが、F1世代で明らかになりました（ピコグラム/ミリリットル[pg / mlで]）。提示されたデータは、平均±SEM。 <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/54393/54393fig4large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a>

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Development and Maintenance of a Preclinical Patient Derived Tumor Xenograft Model for the Investigation of Novel Anti-Cancer Therapies

皮下前臨床モデルで患者由来の腫瘍を利用する新しい治療法、予測バイオマーカーの発見、および薬剤耐性経路の有効性を研究するための優れた方法です。このモデルは、薬物開発プロセスにおいて、臨床試験の前に、多くの新規抗癌療法の運命を決定する上で不可欠です。

前臨床患者由来の腫瘍新規抗がん療法の調査のための異種移植モデルの開発とメンテナンス

Patient derived tumor xenograft (PDTX) models provide a necessary platform in facilitating anti-cancer drug development prior to human trials. Human tumor ...

development-maintenance-preclinical-patient-derived-tumor-xenograft

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Cancer Research

13.6K ビュー.  University of Colorado Denver Anschutz Medical Campus. 皮下前臨床モデルで患者由来の腫瘍を利用する新しい治療法、予測バイオマーカーの発見、および薬剤耐性経路の有効性を研究するための優れた方法です。このモデルは、薬物開発プロセスにおいて、臨床試験の前に、多くの新規抗癌療法の運命を決定する上で不可欠です。 

ビデオ: Development and Maintenance of a Preclinical Patient Derived Tumor Xenograft Model for the Investigation of Novel Anti-Cancer Therapies

Labeling of Breast Cancer Patient-derived Xenografts with Traceable Reporters for Tumor Growth and Metastasis Studies

The use of preclinical models to study tumor biology and response to treatment is central to cancer research. Long-established human cell lines, and many transgenic mouse models, often fail to recapitulate the key aspects of human malignancies. Thus, alternative models that better represent the heterogeneity of patients' tumors and their metastases are being developed. Patient-derived xenograft (PDX) models in which surgically resected tumor samples are engrafted into immunocompromised mice have become an attractive alternative as they can be transplanted through multiple generations,and more efficiently reflect tumor heterogeneity than xenografts derived from human cancer cell lines. A limitation to the use of PDXs is that they are difficult to transfect or transduce to introduce traceable reporters or to manipulate gene expression. The current protocol describes methods to transduce dissociated tumor cells from PDXs with high transduction efficiency, and the use of labeled PDXs for experimental models of breast cancer metastases. The protocol also demonstrates the use of labeled PDXs in experimental metastasis models to study the organ-colonization process of the metastatic cascade. Metastases to different organs can be easily visualized and quantified using bioluminescent imaging in live animals, or GFP expression during dissection and in excised organs. These methods provide a powerful tool to extend the use of multiple types of PDXs to metastasis research.

We describe a method for stable labeling of patient-derived xenografts (PDXs) with lentiviral particles expressing green-fluorescent protein and luciferase reporters. This method allows for tracking the growth of PDXs at the primary site, as well as detecting spontaneous and experimental metastases using in vivo imaging systems.

腫瘍の増殖と転移研究のためのトレーサブル記者との乳癌患者由来の異種移植片の標識

The use of preclinical models to study tumor biology and response to treatment is central to cancer research. Long-established human cell lines, and many ...

がん研究

A Syngeneic Mouse Model of Metastatic Renal Cell Carcinoma for Quantitative and Longitudinal Assessment of Preclinical Therapies

Renal cell carcinoma (RCC) affects &#62; 60,000 people in the United States annually, and ~ 30% of RCC patients have multiple metastases at the time of diagnosis. Metastatic RCC (mRCC) is incurable, with a median survival time of only 18 months. Immune-based interventions (e.g., interferon (IFN) and interleukin (IL)-2) induce durable responses in a fraction of mRCC patients, and multikinase inhibitors (e.g., sunitinib or sorafenib) or anti-VEGF receptor monoclonal antibodies (mAb) are largely palliative, as complete remissions are rare. Such shortcomings in current therapies for mRCC patients provide the rationale for the development of novel treatment protocols. A key component in the preclinical testing of new therapies for mRCC is a suitable animal model. Beneficial features that recapitulate the human condition include a primary renal tumor, renal tumor metastases, and an intact immune system to investigate any therapy-driven immune effector responses and the formation of tumor-induced immunosuppressive factors. This report describes an orthotopic mRCC mouse model that has all of these features. We describe an intrarenal implantation technique using the mouse renal adenocarcinoma cell line Renca, followed by the assessment of tumor growth in the kidney (primary site) and lungs (metastatic site).

Implementation of an orthotopic model of renal cell carcinoma in immunocompetent mice affords the investigator a clinically-relevant system defined by the presence of a primary renal tumor and lung metastases in the same animal. This system can be used to preclinically test a variety of treatments in vivo.

定量的および前臨床治療の縦評価のための転移性腎細胞癌の同系マウスモデル

Renal cell carcinoma (RCC) affects &#62; 60,000 people in the United States annually, and ~ 30% of RCC patients have multiple metastases at the time of ...

Establishment of a Primary Culture of Patient-derived Soft Tissue Sarcoma

Soft tissue sarcomas (STS) represent a spectrum of heterogeneous malignancies with a difficult diagnosis, classification, and management. To date, more than 50 histological subtypes of these rare solid tumors have been identified. Thus, due to their extraordinary diversity and low incidence, our understanding of the biology of these tumors is still limited. Patient-derived cultures represent the ideal platform to study STS pathophysiology and pharmacology. We thus developed a human preclinical model of STS starting from tumor specimens harvested from patients undergoing surgical resection. Patient-derived STS cell cultures were obtained from the surgical specimens by collagenase digestion and isolated by filtration. Cells were counted, seeded, and left for 14 days in standard monolayer cultures and then processed by downstream analysis. Before performing molecular or pharmaceutical analyses, the establishment of STS primary cultures was confirmed through the evaluation of cytomorphologic features and, when available, immunohistochemical markers. This method represents a useful tool 1) to study the natural history of these poorly explored malignancies and 2) to test the effects of different drugs in an effort to learn more about their mechanisms of action.

The following protocol focuses on the establishment of a primary culture of patient-derived soft tissue sarcoma (STS). This model could help us to better understand the molecular background and pharmacological profile of these rare malignancies and could represent a starting point for further research aimed at improving STS management.

患者由来の軟部肉腫の主な文化の確立

Soft tissue sarcomas (STS) represent a spectrum of heterogeneous malignancies with a difficult diagnosis, classification, and management. To date, more ...

Digital Polymerase Chain Reaction Assay for the Genetic Variation in a Sporadic Familial Adenomatous Polyposis Patient Using the Chip-in-a-tube Format

The quantitative analysis of human genetic variation is crucial for understanding the molecular characteristics of serious medical conditions, such as tumors. Because digital polymerase chain reactions (PCR) enable the precise quantification of DNA copy number variants, they are becoming an essential tool for detecting rare genetic variations, such as drug-resistant mutations. It is expected that molecular diagnoses using digital PCR (dPCR) will be available in clinical practice in the near future; thus, how to efficiently conduct dPCR with human genetic material is a hot topic. Here, we introduce a method to detect Adenomatous polyposis coli (APC) somatic mosaicism using dPCR with the chip-in-a-tube format, which allows eight dPCR reactions to be simultaneously conducted. Care should be taken when filling and sealing the reaction mixture on the chips. This article demonstrates how to avoid the over- and underestimation of positive partitions. Furthermore, we present a simple procedure for collecting the dPCR product from the partitions on the chips, which can then be used to confirm the specific amplification. We hope that this methods report will help promote the dPCR with the chip-in-a-tube method in genetic research.

Digital polymerase chain reaction (PCR) is a useful tool for the high-sensitivity detection of single nucleotide variants and DNA copy number variants. Here, we demonstrate key considerations for measuring rare variants in the human genome using digital PCR with the chip-in-a-tube format.

チップ チューブ形式を使用して散発的な家族性大腸腺腫症患者の遺伝的変異のデジタル ポリメラーゼ連鎖反応分析

The quantitative analysis of human genetic variation is crucial for understanding the molecular characteristics of serious medical conditions, such as ...

Investigation of Genetic Dependencies Using CRISPR-Cas9-based Competition Assays

Gene perturbation studies have been extensively used to investigate the role of individual genes in AML pathogenesis. For achieving complete gene disruption, many of these studies have made use of complex gene knockout models. While these studies with knockout mice offer an elegant and time-tested system for investigating genotype-to-phenotype relationships, a rapid and scalable method for assessing candidate genes that play a role in AML cell proliferation or survival in AML models will help accelerate the parallel interrogation of multiple candidate genes. Recent advances in genome-editing technologies have dramatically enhanced our ability to perform genetic perturbations at an unprecedented scale. One such system of genome editing is the CRISPR-Cas9-based method that can be used to make rapid and efficacious alterations in the target cell genome. The ease and scalability of CRISPR/Cas9-mediated gene-deletion makes it one of the most attractive techniques for the interrogation of a large number of genes in phenotypic assays. Here, we present a simple assay using CRISPR/Cas9 mediated gene-disruption combined with high-throughput flow-cytometry-based competition assays to investigate the role of genes that may play an important role in the proliferation or survival of human and murine AML cell lines.

This manuscript describes a Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats (CRISPR) CRISPR-Cas9-based method for simple and expeditious investigation of the role of multiple candidate genes in Acute Myeloid Leukemia (AML) cell proliferation in parallel. This technique is scalable and can be applied in other cancer cell lines as well.

CRISPR ベース Cas9 の競争の試金を使用して遺伝的依存関係の調査

Gene perturbation studies have been extensively used to investigate the role of individual genes in AML pathogenesis. For achieving complete gene ...

Patient-derived Orthotopic Xenograft Models for Human Urothelial Cell Carcinoma and Colorectal Cancer Tumor Growth and Spontaneous Metastasis

Cancer patients have poor prognoses when lymph node (LN) involvement is present in both high-grade urothelial cell carcinoma (HG-UCC) of the bladder and colorectal cancer (CRC). More than 50% of patients with muscle-invasive UCC, despite curative therapy for clinically-localized disease, will develop metastases and die within 5 years, and metastatic CRC is a leading cause of cancer-related deaths in the US. Xenograft models that consistently mimic UCC and CRC metastasis seen in patients are needed. This study aims to generate patient-derived orthotopic xenograft (PDOX) models of UCC and CRC for primary tumor growth and spontaneous metastases under the influence of LN stromal cells mimicking the progression of human metastatic diseases for drug screening. Fresh UCC and CRC tumors were obtained from consented patients undergoing resection for HG-UCC and colorectal adenocarcinoma, respectively. Co-inoculated with LN stromal cell (LNSC) analog HK cells, luciferase-tagged UCC cells were intra-vesically (IB) instilled into female non-obese diabetic/severe combined immunodeficiency (NOD/SCID) mice, and CRC cells were intra-rectally (IR) injected into male NOD/SCID mice. Tumor growth and metastasis were monitored weekly using bioluminescence imaging (BLI). Upon sacrifice, primary tumors and mouse organs were harvested, weighed, and formalin-fixed for Hematoxylin and Eosin and immunohistochemistry staining. In our unique PDOX models, xenograft tumors resemble patient pre-implantation tumors. In the presence of HK cells, both models have high tumor implantation rates measured by BLI and tumor weights, 83.3% for UCC and 96.9% for CRC, and high distant organ metastasis rates (33.3% detected liver or lung metastasis for UCC and 53.1% for CRC). In addition, both models have zero mortality from the procedure. We have established unique, reproducible PDOX models for human HG-UCC and CRC, which allow for tumor formation, growth, and metastasis studies. With these models, testing of novel therapeutic drugs can be performed efficiently and in a clinically-mimetic manner.

This protocol describes the generation of patient-derived orthotopic xenograft models by intra-vesically instilling high-grade urothelial cell carcinoma cells or intra-rectally injecting colorectal cancer cells into non-obese diabetic/severe combined immunodeficiency (NOD/SCID) mice for primary tumor growth and spontaneous metastases under the influence of lymph node stromal cells, which mimics the progression of human metastatic diseases.

ヒト尿路上皮細胞癌および大腸癌腫瘍増殖および自発性転移に対する患者由来の眼科医異所性Xenograft移植片モデル

Cancer patients have poor prognoses when lymph node (LN) involvement is present in both high-grade urothelial cell carcinoma (HG-UCC) of the bladder and ...

Patient-derived Heterogeneous Xenograft Model of Pancreatic Cancer Using Zebrafish Larvae as Hosts for Comparative Drug Assessment

Patient-derived tumor xenograft (PDX) and cell-derived tumor xenograft (CDX) are important techniques for preclinical assessment, medication guidance and basic cancer researches. Generations of PDX models in traditional host mice are time-consuming and only working for a small proportion of samples. Recently, zebrafish PDX (zPDX) has emerged as a unique host system, with the characteristics of small-scale and high efficiency. Here, we describe an optimized methodology for generating a dual fluorescence-labeled tumor xenograft model for comparative chemotherapy assessment in zPDX models. Tumor cells and fibroblasts were enriched from freshly-harvested or frozen pancreatic cancer tissue at different culture conditions. Both cell groups were labeled by lentivirus expressing green or red fluorescent proteins, as well as an anti-apoptosis gene BCL2L1. The transfected cells were pre-mixed and co-injected into the 2 dpf larval zebrafish that were then bred in modified E3 medium at 32 &#176;C. The xenograft models were treated by chemotherapy drugs and/or BCL2L1 inhibitor, and the viabilities of both tumor cells and fibroblasts were investigated simultaneously. In summary, this protocol allows researchers to quickly generate a large amount of zPDX models with a heterogeneous tumor microenvironment and provides a longer observation window and a more precise quantitation in assessing the efficiency of drug candidates.

This protocol describes optimization procedures in a virus-based dual fluorescence-labeled tumor xenograft model using larval zebrafish as hosts. This heterogeneous xenograft model mimics the tissue composition of pancreatic cancer microenvironment in vivo and serves as a more precise tool for assessing drug responses in personalized zPDX (zebrafish patient-derived xenograft) models.

比較薬評価の宿主としてゼブラフィッシュ幼虫を用いた膵臓癌の患者由来異種異種移植片モデル

Patient-derived tumor xenograft (PDX) and cell-derived tumor xenograft (CDX) are important techniques for preclinical assessment, medication guidance and ...

A Melanoma Patient-Derived Xenograft Model

Accumulating evidence suggests that molecular and biological properties differ in melanoma cells grown in traditional two-dimensional tissue culture vessels versus in vivo in human patients. This is due to the bottleneck selection of clonal populations of melanoma cells that can robustly grow in vitro in the absence of physiological conditions. Further, responses to therapy in two-dimensional tissue cultures overall do not faithfully reflect responses to therapy in melanoma patients, with the majority of clinical trials failing to show the efficacy of therapeutic combinations shown to be effective in vitro. Although xenografting of melanoma cells into mice provides the physiological in vivo context absent from two-dimensional tissue culture assays, the melanoma cells used for engraftment have already undergone bottleneck selection for cells that could grow under two-dimensional conditions when the cell line was established. The irreversible alterations that occur as a consequence of the bottleneck include changes in growth and invasion properties, as well as the loss of specific subpopulations. Therefore, models that better recapitulate the human condition in vivo may better predict therapeutic strategies that effectively increase the overall survival of patients with metastatic melanoma. The patient-derived xenograft (PDX) technique involves the direct implantation of tumor cells from the human patient to a mouse recipient. In this manner, tumor cells are consistently grown under physiological stresses in vivo and never undergo the two-dimensional bottleneck, which preserves the molecular and biological properties present when the tumor was in the human patient. Notable, PDX models derived from organ sites of metastases (i.e., brain) display similar metastatic capacity, while PDX models derived from therapy naive patients and patients with acquired resistance to therapy (i.e., BRAF/MEK inhibitor therapy) display similar sensitivity to therapy.

Patient-derived xenograft (PDX) models more robustly recapitulate melanoma molecular and biological features and are more predictive of therapy response compared to traditional plastic tissue culture-based assays. Here we describe our standard operating protocol for the establishment of new PDX models and the characterization/experimentation of existing PDX models.

黒色腫患者由来異種移植片モデル

Accumulating evidence suggests that molecular and biological properties differ in melanoma cells grown in traditional two-dimensional tissue culture ...

Establishment of Gastric Cancer Patient-derived Xenograft Models and Primary Cell Lines

The use of preclinical models to advance our understanding of tumor biology and investigate the efficacy of therapeutic agents is key to cancer research. Although there are many established gastric cancer cell lines and many conventional transgenic mouse models for preclinical research, the disadvantages of these in vitro and in vivo models limit their applications. Because the characteristics of these models have changed in culture, they no longer model tumor heterogeneity, and their responses have not been able to predict responses in humans. Thus, alternative models that better represent tumor heterogeneity are being developed. Patient-derived xenograft (PDX) models preserve the histologic appearance of cancer cells, retain intratumoral heterogeneity, and better reflect the relevant human components of the tumor microenvironment. However, it usually takes 4-8 months to develop a PDX model, which is longer than the expected survival of many gastric patients. For this reason, establishing primary cancer cell lines may be an effective complementary method for drug response studies. The current protocol describes methods to establish PDX models and primary cancer cell lines from surgical gastric cancer samples. These methods provide a useful tool for drug development and cancer biology research.

The current protocol describes methods to establish patient-derived xenograft (PDX) models and primary cancer cell lines from surgical gastric cancer samples. The methods provide a useful tool for drug development and cancer biology research.

胃癌患者由来異種移植片モデルおよび原発細胞株の確立

The use of preclinical models to advance our understanding of tumor biology and investigate the efficacy of therapeutic agents is key to cancer research. ...

Testing Targeted Therapies in Cancer using Structural DNA Alteration Analysis and Patient-Derived Xenografts

We present here an integrative approach for testing efficacy of targeted therapies that combines the next generation sequencing technolo-gies, therapeutic target analyses and drug response monitoring using patient derived xenografts (PDX). This strategy was validated using ovarian tumors as an example. The mate-pair next generation sequencing (MPseq) protocol was used to identify structural alterations and followed by analysis of potentially targetable alterations. Human tumors grown in immunocompromised mice were treated with drugs selected based on the genomic analyses. Results demonstrated a good correlation between the predicted and the observed responses in the PDX model. The presented approach can be used to test the efficacy of combination treatments and aid personalized treatment for patients with recurrent cancer, specifically in cases when standard therapy fails and there is a need to use drugs off label.

Here we present a protocol to test the efficacy of targeted therapies selected based on the genomic makeup of a tumor. The protocol describes identification and validation of structural DNA rearrangements, engraftment of patients&#8217; tumors into mice and testing responses to corresponding drugs.

構造DNA改変解析と患者由来異種移植片を用いたがんの標的治療の試験

We present here an integrative approach for testing efficacy of targeted therapies that combines the next generation sequencing technolo-gies, therapeutic ...