著者らは、優れた技術サポートのためのイザベル・シュルツに感謝します。

全ての動物実験は、動物のケアのために応じて標準に準拠する必要があります（ 例えば 、米国国立衛生研究所、NIH公開番号85-23によって公開実験動物の管理と使用に関する指針は、1996年改訂）し、承認されなければなりません適切な状態当局による。 試薬の調製<ol><li>消化緩衝液（半球あたり1ミリリットル）：カルシウム（Ca）とマグネシウムを含むハンクス平衡塩溶液中でミリリットル2U /（HBSS）の濃度に低サーモリシン濃度（TL）と、例えば 、リベラーゼを精製した消化酵素の標準化された混合物を溶解マグネシウム（Mg） </li><li> DNアーゼでの洗浄バッファーは：HBSSで666U / mlの濃度にDNアーゼIを溶解（カルシウム/マグネシウムを含まない）ウシ胎児血清を10％含む（FCS） </li><li> DNアーゼのない洗浄緩衝液：HBSS（カルシウム/マグネシウムを含まない）10％のFCSを含みます</li><li>密度勾配媒体（半球あたり5 ml）を：準備ストック等張密度勾配0;一部1.5 M塩化ナトリウムで密度勾配媒体九部を混合し、培地（100％SIP）。 FCSの3％を含有するHBSS（カルシウム/マグネシウムを含まない）の適切な量を添加することによって25％の密度にSIPを希釈</li><li>フローサイトメトリー（FC）バッファ：FCSの3％を含有する準備リン酸緩衝生理食塩水（PBS） </li></ol> 2.一過中大脳動脈閉塞注：18の12週齢の雄のC57BL / 6マウスに、前述のように管腔内縫合技術を介して過渡中大脳動脈閉塞（MCAO）を行いました。 <ol><li>簡潔には、100％酸素中の2.0％イソフルランでマウスを麻酔。 36.5℃の体温を維持するフィードバック制御加熱装置により0.5℃、±。 </li><li>総頸動脈と外頸動脈の結紮した後、中央のCの原点に総頸動脈、事前にそれを標準化されたシリコンゴムコーティングされたモノフィラメントを紹介erebral動脈。 </li><li> 45分後の再灌流を可能にするために、フィラメントを削除します。偽手術動物では、すぐに虚血を回避するために、中大脳動脈を閉塞した後、フィラメントを撤回。 </li></ol> 3. Transcardial灌流および脳解剖<ol><li>氷冷HBSS（カルシウム/マグネシウムを含まない）にチューブの一端を浸漬することにより、蠕動灌流ポンプを準備します。灌流チューブの他端に鈍23 G針を修正し、完全にHBSS（カルシウム/マグネシウムを含まない）でチューブを埋めるためにポンプのスイッチを入れます。 </li><li>深く4％イソフルランでマウスを麻酔し、CO 2吸入によって安楽死させます。 </li><li>プラスチックトレイに埋め込まれた解剖ボード上でマウスの背側を置きます。スプレッドフォアとできるだけ広いと20 G針で解剖ボード上でそれらを修正後足。 </li><li>ストレート1×2歯鉗子でつかみ、腹部の皮膚および外皮と腹壁を通して横切開を作り、公開するためにシャープアイリスはさみを使用肝。 </li><li>胸骨を持ち上げて、シャープ/鈍いアイリスはさみの鈍い刃で振動板を切開。 caudocranial方向の両側に横方向胸郭をカットし続けます。肺、心臓および胸部動脈を傷つけないように注意してください。 </li><li>鈍鉗子で皮膚弁を持ち上げて、解剖ボードにピン。慎重に結合組織から心臓を分離するために平滑末端鉗子とハサミを使用してください。 </li><li>平滑末端鉗子で心を持ち、左心室の頂部に取り付けられた灌流チューブと鈍い23Gの針の先端を挿入します。注：心室中隔の損傷を避けるために、左心室にすぎ針を挿入しないでください。必要に応じて、ストレート鋭いピンセットで所定の位置にカニューレを固定します。 </li><li>シャープアイリスはさみで右心房を切開し、直ちにポンプ（流量：8〜10ミリリットル/分）をオンにします。 </li><li>肝臓は、光のコーヒー色（HBSSの〜30ミリリットル）を示すまで灌流を続けます。ずっと灌流は、慎重にチューブ内の任意の気泡の形成を避けます。 </li><li>ちょうど頭蓋骨の後ろにまっすぐ手術用ハサミでマウスを刎ねます。頭蓋骨を露出するように頭皮の正中切開を作るために、虹彩のはさみを使用してください。 </li><li>大後頭孔にシャープアイリスはさみ1先端を置き、頭蓋骨の中に横方向に切断しました。もう一方の側について、この手順を繰り返します。 </li><li>慎重に鼻に向かって正中線まで同キャビティからカットするシャープアイリスはさみを使用してください。脳の損傷を避けるために、可能な限り表面的なはさみの終わりを保つようにしてください。 </li><li>静かに各脳半球から頭蓋骨を剥離する微細な鉗子を使用してください。注：梗塞組織は髄膜や頭蓋骨に付着することがあります。無謀な解剖に脳組織を失わないように注意してください</li><li>へらで脳を持ち上げ、慎重に頭蓋骨にそれを修正脳神経線維を分析するためにシャープアイリスはさみを使用しています。 HBSS（+のCa / Mg）を10mlで満たされた15ミリリットルチューブに脳を置き、それがね保ちますhortly氷の上。 </li></ol>単一細胞懸濁液への脳組織の4解離<ol><li>慎重にきれいなかみそりの刃で脳幹や小脳を削除します。脳を二等分するとほぼ同じ大きさの3枚に前頭面に沿って各半球を切断するためにきれいなカミソリの刃を使用してください。 </li><li>ミンスは5ミリリットルの注射器のプランジャ端部を使用して、100μmのセルストレーナーを介して各半球の組織を解剖しました。連続して氷冷HBSS（+のCa / Mg）を持つセルストレーナーをすすぎます。氷上で均質化したサンプルを保管してください。 </li><li> 5分間286×gで4℃で遠心し、慎重に上清を捨てます。消化緩衝液1ml中にペレットを再懸濁し、2mlチューブに懸濁液を移します。 37℃で1時間ゆっくりと連続回転の下でサスペンションをインキュベートします。 </li><li> 70μmのセルストレーナーを介してふるい細胞懸濁液およびDNアーゼを含まない洗浄緩衝液15mlを、続いてのDNAseを含む洗浄緩衝液3mlでよくすすぎます。 286×gで遠心分離し、5分間18℃、上清を捨てます。注：注：DNアーゼの使用は、細胞の生存を危うくする細胞凝集につながる可能性がある細胞溶解に起因するDNAの粘液を排除します。 </li></ol>ミエリンおよび細胞破片の除去のための5密度勾配遠心<ol><li> 25％の密度勾配培地5ml中に再懸濁し、細胞ペレットを、15 mlチューブに懸濁液をピペット。バブルの形成を回避繰り返し、穏やかにピペッティングすることによって十分に混合します。注：密度勾配培地は、細胞凝集を防止するために室温で使用されるべきです。 </li><li> 521×gで遠心分離し、20分間、18°C。ロータの最低加速プロファイルを使用して、ローターがブレーキなしで停止することができます。静かに振盪せずに遠心分離機からチューブを外します。チューブの底に細胞ペレットを保存しながら注意深くミエリンコートし、上清を吸引します。注：残ったとして全体ミエリンコートを削除することを確認してくださいimpaiますRフローサイトメトリー分析。 </li><li> DNアーゼフリーの洗浄緩衝液10mlにペレットを再懸濁し、新しい15mlチューブにサスペンションをピペット。注：密度勾配媒体の十分な除去が著しく最終細胞試料の量と質に寄与するので、この洗浄工程は、重要です。 </li><li>遠心分離し、再び5分間、286×gで、10℃で、上清を捨てます。冷たい洗浄用緩衝液100μl中で細胞を再懸濁し、血球計数器で、トリパンブルー排除によって細胞数及び生存率を決定します。 4°C、さらにプロセスすぐにそれらで保存するサンプル。 </li></ol>フローサイトメトリー分析のための6抗体染色<ol><li>非特異的結合を防ぐために：抗体標識の前に、抗マウスCD16 / CD32 Fc受容体ブロッキング試薬10分（200を2.5μg/ mlの最終濃度は、希釈係数1）4℃で細胞懸濁液をインキュベートします。 </li><li> Aの蛍光団共役一次抗体を追加します。ppropriate細胞懸濁液の濃度（ 表1に示されるように）、暗所で20分間、4℃でインキュベートします。注：対照試料は、一次抗体で染色し、それ以外は同じように扱われていません。 </li><li> 350×gでFCバッファと遠心機の2mlで細胞を洗浄し、7 min.Carefullyための10°Cは、FC緩衝液200μlで上清と再懸濁細胞ペレットを吸引。フローサイトメトリー分析まで暗所で一時的に4°Cで保存するサンプル。 </li></ol>カウントビーズ7.絶対定量<ol><li>逆に蛍光ビーズの既知数を含む計数管にFC緩衝液40μl及び10μlの細胞懸濁液をピペット。注：ピペットは、白血球数のその後の計算は、このボリュームを参照するように、試料の正確に10μLを提供するように較正されていることを注意してください。 </li><li> FITC標識CD45抗体（最終濃度で細胞懸濁液をインキュベート暗所で20分間、4℃、100）：5μgの/ mlの、希釈係数1の。 </li><li>逆に任意の洗浄工程なしでFC緩衝液200μlと計数管を記入し、直接、フローサイトメーターでCD45 +細胞を記録。 </li></ol> 8.フローサイトメトリー取得注：提案された抗体のパネルを分析するために、適切なサイトメーターは、青（488 nm）を装備する必要があり、赤（635 nm）をFITC、PE、PerCPをCy5.5標識、PECy7のための紫外線（405 nm）のレーザーおよびフィルター、 APC-Cy7をとAmCyan。 <ol><li>虚血性半球から非染色細胞を用いて、前方（FSC）および側方（SSC）散乱を調整します。 FSCの面積と高さを示すドットプロットで単一細胞からのダブレットを区別する。 </li><li>使用される各蛍光チャネルのための単一パラメータヒストグラム内のすべての単一のセルを表示し、光電子増倍管（PMT）単一の細胞がはるかにヒストグラムの左側に表示されるように電圧を調整します。 </li><li> CD45-FITCシングルを使用してください各ヒストグラムや散布図でCD45 高免疫細胞をバックゲートすることにより目的の細胞のための散乱およびPMT設定を確認するためにサンプルを染色しました。注：CD45陰性、中間体（INT）ようにFITCのPMT電圧を適応し、高発現細胞を互いに区別することができます。 </li><li>マルチカラー補正を実行するために、抗体捕捉され、補償ビーズを使用してください。ミクログリアのためのゲート（CD45 int型）および白血球（ 高 CD45）を設定し、続いて、図1に表示されたゲーティング戦略に従って白血球亜集団を定義します。 </li></ol>

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著者は、彼らが競合する金融利害関係を持たないことを宣言します。

ここでは、実験的脳卒中後のマウス脳から白血球を分離するためのシンプルで効果的な方法を記述する。アプローチは、確実に一つの生物学的複製で異なるフローパネルを測定することを可能にする脳半球当たりの再現性の高い細胞数が得られます。 どうやら、免疫細胞を含む血液の不完全な除去は、虚血性脳に入った炎症性細胞の実際の量に歪んだビューになります。したがって、このプロトコルを使用する場合は、非炎症性循環白血球で浸潤免疫細胞の汚染を防止するために、徹底したtranscardial灌流に特に注意を払います。経験から、左心室穿刺のための鈍い針の使用は、全身循環の灌流をバイパスすることになる心室中隔の損傷のリスクを低減します。鼻孔からの灌流液の出現 灌流は、このように、高すぎるpressureis記号は、ありますボイド流量&gt; 10ml /分。ピンクがかった色が悪い灌流の兆候である間脳組織の白い色に淡いが良い灌流を示しています。 このプロトコルのもう一つの重要なステップは、機械的な断片化だけでなく、酵素消化を含む、脳組織の効率的な解離です。セルストレーナーを介して組織をミンチするプロテアーゼの有効性の改善を提供することが重要です。組織をホモジナイズする際、単核食細胞が自己分解22を非常に受けやすいしかし、過度の圧力を避けます。酵素消化リベラーゼTLについて中性プロテアーゼのサーモリシンの低濃度が含まれている高度に精製されたコラゲナーゼIおよびIIの混合物であることをお勧めします。リベラーゼTL処理（KM未発表データ）によって生細胞の有意に高い回復を明らかにし、以前に記載の単離プロトコル14,22,23との直接比較。頻繁に使用されるコラゲナーゼと比較すると脳からの免疫細胞の単離のためのdは、リベラーゼTLは、エンドトキシンの無視できるレベルが含まれています。エンドトキシンの高レベルは、免疫細胞24の活性化状態を変更すると深刻な細胞培養は、25を成果損なう可能性があるため、細胞を、下流解析のためにソートされている場合、これは特に重要です。従来のコラゲナーゼの別の欠点 結果の再現性を危うくし、各ロット26の作業濃度の決意を必要とする酵素活性の有意なロット間の差異です。 成体の脳では、密度勾配遠心分離によってミエリン除去は、遺伝子またはタンパク質の発現のフローサイトメトリー又はさらなる研究などの下流のアプリケーションのために不可欠なステップです。プロトコルの1つの主な利点は、勾配の時間のかかる準備を必要としない単層の密度の手順です。また、分離プロトコルは、信頼性の高い結果を生成しますむしろ不慣れな実験者によって行われる場合であってもです。それは間のインターフェイスを乱すことなく、ピペットするのが困難である互いに近接密度を有する層状のグラデーションを欠いています。 表面マーカーCD45の発現に基づいて、プロトコルは、虚血性脳内の3主要な細胞の種類をもたらします。細胞の大部分は、神経細胞、アストログリア、上衣および内皮細胞で構成されているCD45陰性集団に属しています。その豊富な存在は、主に、効率的なミエリン及び破片の除去を目的と単層の密度勾配に起因します。また、居住者ミクログリア27を表す CD45 int型の人口は、主に血行浸潤白血球含まCD45 高集団から区別することができます。しかし、活性化ミクログリアが血液生まれの骨髄細胞の表現型および機能を採用してもよいことに留意すべきです。したがって、唯一の高度化を適用しますこのような骨髄キメラは、28の並体結合29または運命マッピング分析30をd技術は炎症の間、これらの2つの集団間の明確な区別を可能にします。 フローサイトメトリーのデータの分析は、多くの場合、特定の細胞集団のパーセンテージ分布に限定されます。非梗塞脳組織への梗塞半球を比較するとき、それは、虚血性損傷によって変更され、総脳白血球数を考慮していないため、この情報は、誤解を招くことができます。このように、免疫細胞サブセットのストローク相対分布後の炎症性浸潤の大きさと表現型の完全な絵を描くためには、絶対細胞数によって補完されるべきです。このプロトコールに記載されているように、マイクロビーズを使用する場合、正確な試料容積のピペットは、信頼できる結果を得るために絶対的に必須です。また、リバースピペッ​​ティングを強く計数管中の泡の形成を避けることをお勧めします。気泡を発生しますマイクロビーズの予想量を減らし、したがって、試料中の絶対的なCD45 高白血球数の過大評価につながります。 要約すると、このプロトコルは、脳から免疫細胞を単離するための簡単​​で信頼性の高いアプローチを提供します。これは、虚血性脳卒中に対する炎症反応の複雑性を分析するための貴重なツールとして役立ち得ます。将来のアプリケーションは、伝播し、虚血性脳の炎症の解像度での単球サブセットの時間依存的役割に関する調査を含みます。同様に、脳卒中後の適応免疫系の役割はあまり理解されていません。 インサイチュでサブセット特異的転写因子またはサイトカインの発現によって同定されたT細胞亜集団のフローサイトメトリー分析は、脳卒中後の長期の回復に及ぼす影響を明らかにし、従って、新しい治療法の開発のための有望な道を開くのに役立つかもしれません。

脳卒中は、地元の血流の停止後速やかに開始し、免疫システムの事実上すべての部分を伴う持続的な炎症反応を誘発します。この炎症反応の一つの重要な特徴は、脳内皮細胞、実質的なケモカイン分泌の活性化によって駆動され、交感神経流出1-3増加する脳への免疫細胞の時限流入あります。炎症性細胞浸潤が以前の虚血性脳卒中における有害と考えられていた、しかし、無差別に脳への白血球の流出をブロックするように設計されたいくつかの治療試験は、測定可能な臨床的利益4を誘導することができませんでした 。より最近では、それは、最初の虚血性損傷5の進行に関与する単球由来の細胞は、炎症およびその後の組織修復6の解決のために極めて重要な役割を果たしている可能性があることが明らかになりました。 表現型およびfun​​ctiの識別に感謝単球およびマクロファージの間でonal不均一性は、開発および炎症の解像度での単核食細胞の役割に関する知識は大幅​​に拡大してきました。マウスでは、循環する単球、リンパ球抗原6複合体（LY-6C）7のそれらの表面発現に応じて、少なくとも2つの機能的に異なるサブセットに分類することができます。 Ly-6C 高 &#39;inflammatory monocytes&#39;が明確に細菌感染8の制御に必須であることが示されたが、無菌損傷におけるそれらの役割は、より多くの議論があります。虚血性脳卒中では、CCR2 +のLy-6C の高い単球の選択的切除は出血性梗塞変換6が得られました。しかし、同じ実験的なアプローチは、脳内出血9の後に急性障害を改善しました。同様に、T細胞の異なるサブセットは、虚血性脳損傷に有害10または保護措置11のいずれかを発揮すると考えられているが、データはcontroversiありますアル12,13及びワラントさらなる調査。この増加の複雑さを考えると、それは虚血性損傷および修復における多様な免疫細胞の役割についての深い知識が脳卒中後の炎症を標的にする治療に実験結果を翻訳するために重要であることが明らかになりました。 今日では、細胞性免疫応答を分析するための最も強力なツールは、多色フローサイトメトリーです。これは、インビボでの標識または遺伝子操作14によってシステムバイアスを必要とすることなく、炎症部位 ​​での種々の免疫細胞サブセットの同定および定量を可能にします。 15または転写が個々の、表現型が同定された細胞の機能状態に関する情報を提供し、さらに16因子の細胞内サイトカインに対する抗体と細胞表面マーカーの同時染色。一つの主要な欠点​​として、単一細胞懸濁液を、フローサイトメトリーアッセイに必要とされ、LOCのこのような情報細胞浸潤のalizationは失われます。組織学は、空間情報を得るために理想的であるがしかし、それは、特定の組織中の免疫細胞サブタイプを特徴づけるために一度に使用することができる抗体の数によって制限されます。今日では、種々の表面マーカーの有無の組合せが明白炎症17中に稀な免疫細胞サブセット、特に異なる単球由来細胞集団を同定するために必要とされます。 ここでは、単純な単層の密度勾配を用いた虚血後のマウス脳からの白血球の高い数値を単離するために効率的なプロトコルを説明します。得られた細胞懸濁液は、多次元フローサイトメトリーによって分析することができるいずれか、またはさらに高度に特異的な下流の分析を実行するためにフローサイトメトリーソーティングまたは免疫選択によって濃縮することができます。灌流、脳半球の除去、単一細胞SUSPへの脳組織の解離transcardial方法の詳細ensions、フローサイトメトリー分析のためにミエリンを除去するための密度勾配遠心分離、ならびに抗体染色。

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="745">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:264px;">Peri-Star Pro Peristaltic Pump, 4-channel</td>
			<td style="width:195px;">World precision instruments</td>
			<td style="width:119px;">PERIPRO-4LS</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Heracell 240i CO2 incubator&#160;</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">MACSmix Tube Rotator</td>
			<td>Miltenyi Biotec GmbH</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Heraeus Multifuge 3SR+</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">FACS Canto II</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Isoflurane</td>
			<td>Abbott</td>
			<td align="right">4831850</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Hank&#39;s buffered salt solution (HBSS)</td>
			<td>Gibco/Life Technologies GmbH</td>
			<td>14175-129</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">HBSS with Calcium/Magnesium</td>
			<td>Gibco/Life Technologies GmbH</td>
			<td>24020-091</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Liberase TL</td>
			<td>Roche Diagnostics GmbH</td>
			<td>5401020001</td>
			<td>use at room temperature</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Percoll Plus</td>
			<td>GE Healthcare Europe GmbH</td>
			<td>17-5445-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Fetal bovine serum&#160;</td>
			<td>PAN Biotech</td>
			<td>3302-P101003</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Trypan blue</td>
			<td>Gibco/Life Technologies GmbH</td>
			<td>15250-061</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Trucount</td>
			<td>BD Biosciences</td>
			<td>340334</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Phosphate buffered saline</td>
			<td>Biochrom AG</td>
			<td>L 182-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">DNAse I</td>
			<td>Roche Diagnostics GmbH</td>
			<td>11284932001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">CD11b Horizon V500</td>
			<td>BD Biosciences</td>
			<td>562128</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">CD16/CD32</td>
			<td>eBioscience</td>
			<td>14-0161</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">CD45.2 FITC</td>
			<td>eBioscience</td>
			<td>11-0454</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">CD3 PE</td>
			<td>Biolegend</td>
			<td>100307</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">CD19 PE-Cy7</td>
			<td>Biolegend</td>
			<td>115519</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Ly6C APC-Cy7</td>
			<td>BD Biosciences</td>
			<td>560596</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Ly6G PerCP-Cy5.5</td>
			<td>BD Biosciences</td>
			<td align="right">560602</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Silicone Tubing, 1m</td>
			<td>World precision instruments</td>
			<td align="right">503022</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Fine Iris Scissors sharp</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>14094-11</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Surgical Scissors</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>14130-17</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Fine Iris Scissors sharp/blunt</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>14028-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Straight 1x2 teeth forceps</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>11021-14</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Blunt-end Forceps</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>11008-13</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">5ml syringe plunger</td>
			<td>Carl Roth GmbH (Braun)</td>
			<td>EP96.1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Cell strainer, 100&#181;m</td>
			<td>Dr. I. Schubert, BD</td>
			<td>2360-00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Omnican Fine dosage syringe 1ML</td>
			<td>Braun</td>
			<td>TBD</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Cell strainer, 70&#181;m</td>
			<td>Greiner Bio-One GmbH</td>
			<td>542 070</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">FACS Tubes</td>
			<td>BD Bioscience GmbH</td>
			<td>352052</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">serological pipettes, 10ml</td>
			<td>Greiner Bio-One GmbH</td>
			<td>607180</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">serological pipettes, 10ml</td>
			<td>Sarstedt AG&#38;Co</td>
			<td>861,254,025</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">serological pipettes, 25ml</td>
			<td>Greiner Bio-One GmbH</td>
			<td>760180</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">serological pipettes, 5ml</td>
			<td>Greiner Bio-One GmbH</td>
			<td>606180</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">serological pipettes,25ml</td>
			<td>Sarstedt AG&#38;Co</td>
			<td>861,685,020</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">serological pipettes,5ml</td>
			<td>Sarstedt AG&#38;Co</td>
			<td>861,253,025</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Tips, 0,1-10&#181;l</td>
			<td>Corning B.V.Life Sciences</td>
			<td>4840</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Tips, 100-1000&#181;l</td>
			<td>Greiner Bio-One GmbH</td>
			<td>740290</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Tips, 10-200&#181;l</td>
			<td>Greiner Bio-One GmbH</td>
			<td>739296</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Reaction tubes 1,5ml</td>
			<td>Greiner Bio-One GmbH</td>
			<td>616201</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Reaction tubes 2ml</td>
			<td>Greiner Bio-One GmbH</td>
			<td>623201</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Bacteriological petri dish, 94x16mm</td>
			<td>Greiner Bio-One GmbH</td>
			<td>633180</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Falcon 15ml</td>
			<td>Greiner Bio-One GmbH</td>
			<td>188271</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Falcon 50ml</td>
			<td>VWR International GmbH (BD)</td>
			<td>734-0448</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Neubauer hemocytometer</td>
			<td>Biochrom AG</td>
			<td>PDHC-N01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">razor blade</td>
			<td>Carl Roth GmbH</td>
			<td>CK07.1</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

isolation and flow cytometric analysis of immune cells from the ischemic mouse brain

虚血性脳卒中は、血管内の区画に始まり、脳の常在細胞の急速な活性化を伴う強固な炎症反応を開始します。この炎症反応の主要なメカニズムは、ケモカイン放出および上昇した内皮接着分子の発現によって促進虚血脳への免疫細胞の循環移動です。脳侵入白血球は、初期段階の二次虚血性損傷に寄与するよく知られているが、炎症およびそれ以降の脳修復の終了のその重要性は、ごく最近になって注目されています。 ここでは、虚血性マウス脳から免疫細胞を効率的に単離するための単純なプロトコルが提供されます。 transcardial灌流後、脳半球を切開し、機械的に分離されています。リベラーゼによる酵素消化は、ミエリン及び細胞破片を除去するために（例えば、パーコールのような）密度勾配遠心分離が続きます。このプロトコルiの1つの主な利点勾配の時間のかかる準備を必要とせず、確実に行うことができ、単層の密度勾配手順は、S。アプローチは、脳半球当たりの再現性の高い細胞数が得られ、一つの生物学的複製で複数のフローサイトメトリーパネルを測定することができます。実験的脳卒中後の脳侵入白血球の表現型の特徴および定量化は、虚血性損傷および修復におけるそれらの多面的役割のより良い理解に寄与することができます。

脳虚血は、左中大脳動脈（MCAO）の過渡フィラメント閉塞を経由して12週齢の雄のC57BL / 6マウスに開始されました。偽手術のためにフィラメントが左中大脳動脈を閉塞するために挿入され、瞬時に再灌流を可能にするために、すぐに撤回されました。重要なのは、携帯神経炎症は、一般的に適用される脳卒中モデル19の間で実質的に異なります。これは、人間の脳卒中の異種の病態生理に動物研究からの調査結果を外挿する場合は特に念頭に置いておく必要があります。 マウスは、虚血性脳への早期の免疫細胞の浸潤を分析するためにMCAOの24時間後に屠殺しました。虚血性半球から得られた細胞数（MCAO IPSI; 0.95±0.25のx 10E6）;および同側の密度勾配遠心分離は、半球（1.09±0.30のx 10E6 MCAOコントラ）からのものに匹敵した後に偽手術マウスの半球（偽IPSI; 1.12±0.18のx 10E6、一方向ANOVA、P = 0.524）。トリパンブルー排除によって測定し、単離された細胞の生存率が高く、有意に（96.85±0.60パーセント、MCAOコントラ97.12±1.18パーセントを偽群間で差は認められなかった、MCAOは0.253 = 95.68±2.04パーセント、一方向ANOVA、pはIPSI ）。 MCAOは、フローサイトメトリー分析によって決定した後の脳の組成物は、24時間の浸潤。 図1に概略的に（A）および代表ストローク動物（B）にゲーティング戦略を示しています。脳浸潤白血球は、CD45のint型ミクログリアと区別することができるCD45 high細胞と定義しました。 Tリンパ球はCD45 高 CD3 +細胞として描写しながらCD45 高集団内で、多形核好中球（PMN）は、LY-6Gの発現により同定しました。残りのCD45 high細胞は、その後、区別しました。CD19（Bリンパ球）およびCD11bの発現により編。 CD11b +画分は、さらにLY-6C 高 `炎症monocytes`や単球、樹状細胞（DC）およびマクロファージを含むのLy-6C 低い集団へサブカテゴリました。 脳卒中の急性期では、骨髄性免疫細胞は3,20を潜入脳を支配。好中球は血管閉塞の後、急速に脳に入ると炎症性単球21の血管外漏出を促進する。 図2Aは、半球および偽手術と比較して、MCAO後の虚血性半球24時間でLY6-G +好中球の増加率を表示します。対照的に、虚血性半球におけるCD3 + T細胞の割合は、健康な脳よりも（比較的）低いです。 CD11b +集団内では、脳虚血がLY-6C 高炎症性単球の強力な優位性に向けてバランスをシフトする（ 図図2（b））。 相対的分布に加えて、計数管は、CD45陽性事象（ 図3）に基づいてサンプル中の免疫細胞サブセットの絶対数を決定しました。計数管は、蛍光ビーズの既知数を解放凍結乾燥ペレットを含んでいます。サンプル中の陽性細胞の絶対数は、イベントをビーズに細胞事象を関連付けることによって決定することができます。半球あたりのCD45 高白血球数を計算するには、以下の式を用いた：半球=あたりのCD45 high細胞のx（総サスペンション容量（100μL）/サンプル容量（10μL（CD45 高のイベントは、総カウントビーズ/サンプルビーズイベントをX） ））。 24時間MCAO後、梗塞半球の総白血球数が大幅に半球と偽手術と比較して増加した（ 図3D、一方向ANOVA、P = 0.0004）。ディのカウント<html> stinct免疫細胞サブセット（PMN、T細胞、B細胞、LY-6C 高及びLY-6C 低い単球）を容易に各試料の全CD45 高白血球数との相対頻度を掛けることによって計算することができます。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/53658/53658fig1.jpg" /> フローサイトメトリーのための図1のゲーティング戦略。（A）ゲート戦略の模式図。 （B）は、中大脳動脈閉塞後の代表的なマウス脳24時間から単離された白血球のフローサイトメトリー分析を示します。 FSC前方散乱、PMNの多形核好中球、cDCを古典的な樹状細胞。 <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/53658/53658fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> ftp_upload / 53658 / 53658fig2.jpg &quot;/&gt; 免疫細胞サブセットの図2.分化。のLy-6Gの相対的分布+ -neutrophils（A）、CD3 + T細胞（A）及び単球サブセットは、同側でのLy-6C（B）（IPSI）の発現差により同定し、対側（コントラ）半球中大脳動脈閉塞（MCAO）またはそれぞれ偽手術後24時間。各集団の割合がゲートに示されている。 <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/53658/53658fig2large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <img alt="図3" src="/files/ftp_upload/53658/53658fig3.jpg" /> ビーズを数えることにより、脳白血球の図3.定量化 。（A）は 、高度の二重陽性ビーズゲートを示しています。単一細胞集団内（B）CD45 int型ミクログリアは、CD45 高白血球（C）と区別することができます。定量のために、ゲートされたCD45 高いイベントの数をカウントビード事象に対して正規化しました。総白血球（CD45 高 ）カウントが大幅に中大脳動脈閉塞（MCAO）後の対側（コントラ）半球と偽手術24時間と比較して、同側（IPSI）半球で増加していることに注意してください。 ** P &lt;0.01、*** p &lt;0.001、一方向ANOVAおよびTukey`s事後多重比較試験による。 N = 4 - 群あたり6。 FSC前方散乱。 <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/53658/53658fig3large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <table colgroup="" fo:keep-together.within-page="1"><tbody><tr><td rowspan="2"> 蛍光色素 </td><td rowspan="2"> FITC </td><td rowspan="2"> PE </td><td> PerCPを</td><td rowspan="2"> PC7 </td><td rowスパン= &quot;2&quot;&gt; APC-Cy7を</td><td rowspan="2"> V500 </td></tr><tr><td> （Cy5.5の） </td></tr><tr><td> 抗原 </td><td> CD45.2 </td><td> CD3 </td><td> Ly-6G </td><td> CD19 </td><td> LY-6C </td><td> CD11b </td></tr><tr><td> 最終濃度[/ mlの] </td><td> 5 </td><td> 1 </td><td> 0.2 </td><td> 0.2 </td><td> 1 </td><td> 1 </td></tr><tr><td> 希釈係数 </td><td> 1/100 </td><td> 1/200 </td><td> 1 /千</td><td> 1 /千</td><td> 1/200 </td><td> 1/200 </td></tr><tr><td> クローン </td><td> 104 </td><td> 145-2C11 </td><td> 1A8 </td><td> 6D5 </td><td> AL-21 </td><td> M1 / 70 </td></tr></tbody></table> 虚血性脳における免疫細胞の同定のための 表1 の基本的な抗体カクテル。

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Isolation and Flow Cytometric Analysis of Immune Cells from the Ischemic Mouse Brain

Inflammation plays a central role in the pathogenesis of ischemic stroke. Increasing evidence suggests that it acts as a double-edged sword which exacerbates early brain injury, but also contributes to later repair. This protocol describes the isolation of immune cells from the ischemic brain and their subsequent flow cytometric phenotyping.

虚血性マウス脳からの免疫細胞の単離およびフローサイトメトリー分析

Ischemic stroke initiates a robust inflammatory response that starts in the intravascular compartment and involves rapid activation of brain resident ...

isolation-flow-cytometric-analysis-immune-cells-from-ischemic-mouse

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

34.8K ビュー.  Fraunhofer Institute for Cell Therapy and Immunology. Inflammation plays a central role in the pathogenesis of ischemic stroke. Increasing evidence suggests that it acts as a double-edged sword which exacerbates early brain injury, but also contributes to later repair. This protocol describes the isolation of immune cells from the ischemic brain and their subsequent flow cytometric phenotyping.

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Flow Cytometry Analysis of Immune Cells Within Murine Aortas

Atherosclerosis is a chronic inflammatory process of medium and large size vessels that is characterized by the formation of plaques consisting of foam cells, immune cells, vascular endothelial and smooth muscle cells, platelets, extracellular matrix, and a lipid-rich core with extensive necrosis and fibrosis of surrounding tissues.1 The innate and adaptive arms of the immune response are involved in the initiation, development and persistence of atherosclerosis.2, 3 There is a significant body of evidence that different subsets of the immune cells, such as macrophages, dendritic cells, T and B lymphocytes, are present within the aortas of healthy and atherosclerosis-prone mice4. Additionally, immune cells are found in the surrounding aortic adventitia which suggests an important role of this tissue in atherogenesis.2
For some time, the quantitative detection of different types of immune cells, their activation status, and the cellular composition within the aortic wall was limited by RT-PCR and immunohistochemical methods for the study of atherosclerosis. Few attempts were made to perform flow cytometry using human aortas, and a number of problems, such as a high autofluorescence, have been reported5,6. Human atherosclerotic plaques were digested with collagenase 1, and free cells were collected and stained for CD14+/CD11c+ to highlight macrophage-derived foam cells. In this study, a "mock" channel was used to avoid false-positive staining.6 Necrotic materials accumulating during the digestion process give rise in a large amount of debris that generates a high autofluorescence in aortic samples. To resolve this problem, a panel of negative and positive controls has been proposed, but only double staining could be applied in these samples. We have developed a new flow cytometry-based method7 to analyze the immune cell composition and characterize the activation, proliferation, differentiation of immune cells in healthy and atherosclerosis-prone aorta. This method allows the investigation of the immune cell composition of the aortic wall and opens possibilities to use a broad spectrum of immunological methods for investigations of immune aspects of this disease.

This paper presents a flow cytometry-based method to investigate the immune composition of aortas. The paper also illustrates an additional technique that allows examining surrounding adventitia and vessel wall separately. This method opens possibilities to perform phenotypical analyses of aortic leukocytes and apply several immunological assays for atherosclerosis studies.

マウス大動脈内の免疫細胞のフローサイトメトリー分析

Atherosclerosis is a chronic inflammatory process of medium and large size vessels that is characterized by the formation of plaques consisting of foam ...

免疫・感染学

Differentiating Functional Roles of Gene Expression from Immune and Non-immune Cells in Mouse Colitis by Bone Marrow Transplantation

To understand the role of a gene in the development of colitis, we compared the responses of wild-type mice and gene-of-interest deficient knockout mice to colitis. If the gene-of-interest is expressed in both bone marrow derived cells and non-bone marrow derived cells of the host; however, it is possible to differentiate the role of a gene of interest in bone marrow derived cells and non- bone marrow derived cells by bone marrow transplantation technique. To change the bone marrow derived cell genotype of mice, the original bone marrow of recipient mice were destroyed by irradiation and then replaced by new donor bone marrow of different genotype. When wild-type mice donor bone marrow was transplanted to knockout mice, we could generate knockout mice with wild-type gene expression in bone marrow derived cells. Alternatively, when knockout mice donor bone marrow was transplanted to wild-type recipient mice, wild-type mice without gene-of-interest expressing from bone marrow derived cells were produced. However, bone marrow transplantation may not be 100% complete. Therefore, we utilized cluster of differentiation (CD) molecules (CD45.1 and CD45.2) as markers of donor and recipient cells to track the proportion of donor bone marrow derived cells in recipient mice and success of bone marrow transplantation. Wild-type mice with CD45.1 genotype and knockout mice with CD45.2 genotype were used. After irradiation of recipient mice, the donor bone marrow cells of different genotypes were infused into the recipient mice. When the new bone marrow regenerated to take over its immunity, the mice were challenged by chemical agent (dextran sodium sulfate, DSS 5%) to induce colitis. Here we also showed the method to induce colitis in mice and evaluate the role of the gene of interest expressed from bone-marrow derived cells. If the gene-of-interest from the bone derived cells plays an important role in the development of the disease (such as colitis), the phenotype of the recipient mice with bone marrow transplantation can be significantly altered. At the end of colitis experiments, the bone marrow derived cells in blood and bone marrow were labeled with antibodies against CD45.1 and CD45.2 and their quantitative ratio of existence could be used to evaluate the success of bone marrow transplantation by flow cytometry. Successful bone marrow transplantation should show a vast majority of donor genotype (in term of CD molecule marker) over recipient genotype in both the bone marrow and blood of recipient mice.

Bone marrow transplantation provides a way to change the genotype of the bone marrow derived cells. If the gene of interest is expressed in both bone marrow derived cells and non-bone marrow derived cells, bone marrow transplantation can change the bone marrow derived cells to a different genotype without changing the non-bone marrow derived cell genotype.

骨髄移植によるマウス大腸炎における免疫および非免疫細胞からの遺伝子発現の機能的役割を差別化

To understand the role of a gene in the development of colitis, we compared the responses of wild-type mice and gene-of-interest deficient knockout mice ...

Flow Cytometric Isolation of Primary Murine Type II Alveolar Epithelial Cells for Functional and Molecular Studies

Throughout the last years, the contribution of alveolar type II epithelial cells (AECII) to various aspects of immune regulation in the lung has been increasingly recognized. AECII have been shown to participate in cytokine production in inflamed airways and to even act as antigen-presenting cells in both infection and T-cell mediated autoimmunity 1-8. Therefore, they are especially interesting also in clinical contexts such as airway hyper-reactivity to foreign and self-antigens as well as infections that directly or indirectly target AECII. However, our understanding of the detailed immunologic functions served by alveolar type II epithelial cells in the healthy lung as well as in inflammation remains fragmentary. Many studies regarding AECII function are performed using mouse or human alveolar epithelial cell lines 9-12. Working with cell lines certainly offers a range of benefits, such as the availability of large numbers of cells for extensive analyses. However, we believe the use of primary murine AECII allows a better understanding of the role of this cell type in complex processes like infection or autoimmune inflammation. Primary murine AECII can be isolated directly from animals suffering from such respiratory conditions, meaning they have been subject to all additional extrinsic factors playing a role in the analyzed setting. As an example, viable AECII can be isolated from mice intranasally infected with influenza A virus, which primarily targets these cells for replication 13. Importantly, through ex vivo infection of AECII isolated from healthy mice, studies of the cellular responses mounted upon infection can be further extended.
Our protocol for the isolation of primary murine AECII is based on enzymatic digestion of the mouse lung followed by labeling of the resulting cell suspension with antibodies specific for CD11c, CD11b, F4/80, CD19, CD45 and CD16/CD32. Granular AECII are then identified as the unlabeled and sideward scatter high (SSChigh) cell population and are separated by fluorescence activated cell sorting 3.
In comparison to alternative methods of isolating primary epithelial cells from mouse lungs, our protocol for flow cytometric isolation of AECII by negative selection yields untouched, highly viable and pure AECII in relatively short time. Additionally, and in contrast to conventional methods of isolation by panning and depletion of lymphocytes via binding of antibody-coupled magnetic beads 14, 15, flow cytometric cell-sorting allows discrimination by means of cell size and granularity. Given that instrumentation for flow cytometric cell sorting is available, the described procedure can be applied at relatively low costs. Next to standard antibodies and enzymes for lung disintegration, no additional reagents such as magnetic beads are required. The isolated cells are suitable for a wide range of functional and molecular studies, which include in vitro culture and T-cell stimulation assays as well as transcriptome, proteome or secretome analyses 3, 4.

We describe the rapid isolation of primary murine type II alveolar epithelial cells (AECII) by flow cytometric negative selection. These AECII show high viability and purity and are suitable for a wide range of functional and molecular studies regarding their role in respiratory conditions such as autoimmune or infectious diseases.

機能と分子生物学的研究のためのプライマリマウスII型肺胞上皮細胞のフローサイトメトリ分離

Throughout  the last years, the contribution of alveolar type II epithelial cells (AECII)  to various aspects of immune regulation in the lung has been ...

Isolation and Analysis of Brain-sequestered Leukocytes from Plasmodium berghei ANKA-infected Mice

We describe a method for isolation and characterization of adherent inflammatory cells from brain blood vessels of P. berghei ANKA-infected mice. Infection of susceptible mouse-strains with this parasite strain results in the induction of experimental cerebral malaria, a neurologic syndrome that recapitulates certain important aspects of Plasmodium falciparum-mediated severe malaria in humans 1,2 . Mature forms of blood-stage malaria express parasitic proteins on the surface of the infected erythrocyte, which allows them to bind to vascular endothelial cells. This process induces obstructions in blood flow, resulting in hypoxia and haemorrhages 3 and also stimulates the recruitment of inflammatory leukocytes to the site of parasite sequestration.
Unlike other infections, i.e neutrotopic viruses4-6, both malaria-parasitized red blood cells (pRBC) as well as associated inflammatory leukocytes remain sequestered within blood vessels rather than infiltrating the brain parenchyma. Thus to avoid contamination of sequestered leukocytes with non-inflammatory circulating cells, extensive intracardial perfusion of infected-mice prior to organ extraction and tissue processing is required in this procedure to remove the blood compartment. After perfusion, brains are harvested and dissected in small pieces. The tissue structure is further disrupted by enzymatic treatment with Collagenase D and DNAse I. The resulting brain homogenate is then centrifuged on a Percoll gradient that allows separation of brain-sequestered leukocytes (BSL) from myelin and other tissue debris. Isolated cells are then washed, counted using a hemocytometer and stained with fluorescent antibodies for subsequent analysis by flow cytometry.
This procedure allows comprehensive phenotypic characterization of inflammatory leukocytes migrating to the brain in response to various stimuli, including stroke as well as viral or parasitic infections. The method also provides a useful tool for assessment of novel anti-inflammatory treatments in pre-clinical animal models.

Isolation and Analysis of Brain-sequestered Leukocytes from Plasmodium berghei ANKA-infected Mice

A method for isolation of adherent inflammatory leukocytes from brain blood vessels of Plasmodium berghei ANKA-infected mice is described. The method allows quantification as well as phenotypic characterization of isolated leukocytes after staining with fluorescent antibodies and subsequent analysis by flow cytometry.

脳から隔離された白血球の単離と解析<em&gt;マラリアベルゲイ</em&gt; ANKA感染マウス

We describe a method for isolation and  characterization of adherent inflammatory cells from brain blood vessels of P. berghei ANKA-infected mice. ...

Isolation of Adipose Tissue Immune Cells

The discovery of increased macrophage infiltration in the adipose tissue (AT) of obese rodents and humans has led to an intensification of interest in immune cell contribution to local and systemic insulin resistance. Isolation and quantification of different immune cell populations in lean and obese AT is now a commonly utilized technique in immunometabolism laboratories; yet extreme care must be taken both in stromal vascular cell isolation and in the flow cytometry analysis so that the data obtained is reliable and interpretable. In this video we demonstrate how to mince, digest, and isolate the immune cell-enriched stromal vascular fraction. Subsequently, we show how to antibody label macrophages and T lymphocytes and how to properly gate on them in flow cytometry experiments. Representative flow cytometry plots from low fat-fed lean and high fat-fed obese mice are provided. A critical element of this analysis is the use of antibodies that do not fluoresce in channels where AT macrophages are naturally autofluorescent, as well as the use of proper compensation controls.

Adipose tissue (AT) is a site of intense immune cell activation and interaction. Almost all cells of the immune system are present in AT and their ratios are altered by obesity. Proper isolation, quantification, and characterization of AT immune cell populations are critical for understanding their role in immunometabolic disease.

脂肪組織の免疫細胞の単離

The discovery of increased macrophage infiltration in  the adipose tissue (AT) of obese rodents and humans has led to an  intensification of interest in ...

Isolation and Flow Cytometric Analysis of Glioma-infiltrating Peripheral Blood Mononuclear Cells

Our laboratory has recently demonstrated that natural killer (NK) cells are capable of eradicating orthotopically implanted mouse GL26 and rat CNS-1 malignant gliomas soon after intracranial engraftment if the cancer cells are rendered deficient in their expression of the &#946;-galactoside-binding lectin galectin-1 (gal-1). More recent work now shows that a population of Gr-1+/CD11b+ myeloid cells is critical to this effect. To better understand the mechanisms by which NK and myeloid cells cooperate to confer gal-1-deficient tumor rejection we have developed a comprehensive protocol for the isolation and analysis of glioma-infiltrating peripheral blood mononuclear cells (PBMC). The method is demonstrated here by comparing PBMC infiltration into the tumor microenvironment of gal-1-expressing GL26 gliomas with those rendered gal-1-deficient via shRNA knockdown. The protocol begins with a description of&#160;how to culture and prepare GL26 cells for inoculation into the syngeneic C57BL/6J mouse brain. It then explains the steps involved in the isolation and flow cytometric analysis of glioma-infiltrating PBMCs from the early brain tumor microenvironment. The method is adaptable to a number of in vivo experimental designs in which temporal data on immune infiltration into the brain is required. The method is sensitive and highly reproducible, as glioma-infiltrating PBMCs can be isolated from intracranial tumors as soon as 24 hr post-tumor engraftment with similar cell counts observed from time point matched tumors throughout independent experiments. A single experimentalist can perform the method from brain harvesting to flow cytometric analysis of glioma-infiltrating PBMCs in roughly 4-6 hr depending on the number of samples to be analyzed. Alternative glioma models and/or cell-specific detection antibodies may also be used at the experimentalists&#8217; discretion to assess the infiltration of several other immune cell types of interest without the need for alterations to the overall procedure.

Presented here is a straightforward method for the isolation and flow cytometric analysis of glioma-infiltrating peripheral blood mononuclear cells that yields time-dependent quantitative data on the number and activation status of immune cells entering the early brain tumor microenvironment.

神経膠腫浸潤末梢血単核細胞の単離およびフローサイトメトリー分析

Our laboratory has recently demonstrated that natural killer (NK) cells are capable of eradicating orthotopically implanted mouse GL26 and rat CNS-1 ...

Isolation and Flow Cytometric Characterization of Murine Small Intestinal Lymphocytes

The intestines &#8212; which contain the largest number of immune cells of any organ in the body &#8212; are constantly exposed to foreign antigens, both microbial and dietary. Given an increasing understanding that these luminal antigens help shape the immune response and that education of immune cells within the intestine is critical for a number of systemic diseases, there has been increased interest in characterizing the intestinal immune system. However, many published protocols are arduous and time-consuming. We present here a simplified protocol for the isolation of lymphocytes from the small-intestinal lamina propria, intraepithelial layer, and Peyer&#39;s patches that is rapid, reproducible, and does not require laborious Percoll gradients. Although the protocol focuses on the small intestine, it is also suitable for analysis of the colon. Moreover, we highlight some aspects that may need additional optimization depending on the specific scientific question. This approach results in the isolation of large numbers of viable lymphocytes that can subsequently be used for flow cytometric analysis or alternate means of characterization.

There is growing interest in the quantitative characterization of intestinal lymphocytes owing to increasing recognition that these cells play a critical role in a variety of intestinal and systemic diseases. In this protocol, we describe how to isolate single cell populations from different small-intestinal compartments for subsequent flow cytometric characterization.

マウスの小腸リンパ球の単離およびフローサイトメトリーキャラクタリゼーション

The intestines &#8212; which contain the largest number of immune cells of any organ in the body &#8212; are constantly exposed to foreign antigens, both ...

Fluorescence-activated Cell Sorting for Purification of Plasmacytoid Dendritic Cells from the Mouse Bone Marrow

Fluorescence-activated cell sorting (FACS) is a technique to purify specific cell populations based on phenotypes detected by flow cytometry. This method enables researchers to better understand the characteristics of a single cell population without the influence of other cells. Compared to other methods of cell enrichment, such as magnetic-activated cell sorting (MCS), FACS is more flexible and accurate for cell separation due to the ability of phenotype detection by flow cytometry. In addition, FACS is usually capable of separating multiple cell populations simultaneously, which improves the efficiency and diversity of experiments. Although FACS has some limitations, it has been broadly used to purify cells for functional studies in both in vitro and in vivo settings. Here we report a protocol using fluorescence-activated cell sorting to isolate a very rare population of immune cells, plasmacytoid dendritic cells (pDC), with high purity from the bone marrow of lupus-prone mice for in vitro functional studies of pDC.

We report a protocol using fluorescence-activated cell sorting to isolate plasmacytoid dendritic cells (pDC) with high purity from the bone marrow of lupus-prone mice for functional studies of pDC.

マウスの骨髄から形質細胞様樹状細胞の精製のために、蛍光活性化細胞選別

Fluorescence-activated cell sorting (FACS) is a technique to purify specific cell populations based on phenotypes detected by flow cytometry. This method ...

Flow Cytometric Analysis of Particle-bound Bet v 1 Allergen in PM10

Flow cytometry is a method widely used to quantify suspended solids such as cells or bacteria in a size range from 0.5 to several tens of micrometers in diameter. In addition to a characterization of forward and sideward scatter properties, it enables the use of fluorescent labeled markers like antibodies to detect respective structures. Using indirect antibody staining, flow cytometry is employed here to quantify birch pollen allergen (precisely Bet v 1)-loaded particles of 0.5 to 10 &#181;m in diameter in inhalable particulate matter (PM10, particle size &#8804;10 &#181;m in diameter). PM10 particles may act as carriers of adsorbed allergens possibly transporting them to the lower respiratory tract, where they could trigger allergic reactions.
So far the allergen content of PM10 has been studied by means of enzyme linked immunosorbent assays (ELISAs) and scanning electron microscopy. ELISA measures the dissolved and not the particle-bound allergen. Compared to scanning electron microscopy, which can visualize allergen-loaded particles, flow cytometry may additionally quantify them. As allergen content of ambient air can deviate from birch pollen count, allergic symptoms might perhaps correlate better with allergen exposure than with pollen count. In conjunction with clinical data, the presented method offers the opportunity to test in future experiments whether allergic reactions to birch pollen antigens are associated with the Bet v 1 allergen content of PM10 particles &#62;0.5 &#181;m.

Here, we present a protocol to quantify allergen-loaded particles by flow cytometry. Ambient particulate matter particles may act as carriers of adsorbed allergens. We show here that flow cytometry, a method widely used to characterize suspended solids &#62;0.5 &#181;m in diameter, can be used to measure these allergen-loaded particles.

PM10における粒子結合のBet V 1アレルゲンのフローサイトメトリー分析

Flow cytometry is a method widely used to quantify suspended solids such as cells or bacteria in a size range from 0.5 to several tens of micrometers in ...

Isolation and Flow Cytometric Analysis of Human Endocervical Gamma Delta T Cells

The female reproductive tract (FRT) mucosal immune system serves as the first line of defense. Better knowledge of the genital mucosa is therefore essential for understanding pathogenicity of different pathogens including HIV. Gamma delta (GD) T cells are the prototype of &#39;unconventional&#39; T cells and represent a relatively small subset of T cells defined by their expression of heterodimeric T-cell receptors (TCRs) composed of gamma and delta chains. This sets them apart from the classical and much better known CD4+ helper T cells and CD8+ cytotoxic T cells that are defined by alpha-beta TCRs. GD T cells often show tissue-specific localization and are enriched in epithelium. GD T cells orchestrate immune responses in inflammation, tumor surveillance, infectious disease, and autoimmunity.
Here, we present a method to reproducibly isolate and analyze human endocervical intraepithelial GD T lymphocytes. We have used endocervical cytobrush samples from women participating in the Women&#39;s Interagency HIV Infection Study (WIHS). Knowledge about GD T cells interactions during conditions in which there is an insult to the vaginal mucosal could be applied to any clinical study in which mucosal vulnerability is addressed, including the development of vaginal microbicides.In addition, knowledge about mucosal GD T cell responses has potential for application of GD T cell-based immune therapy in treating infectious diseases.

We describe here an isolation method to obtain human endocervical intraepithelial lymphocytes for the analysis of intraepithelial gamma delta T cells. This protocol can be extended for the purification of endocervical gamma delta T cells by magnetic beads or by cell sorting.