This project was funded by a grant from the Multiple Sclerosis Society of Canada and the Alberta Innovates - Health Solutions CRIO Team program. MBK is a recipient of studentships from Alberta Innovates - Health Solutions and the Multiple Sclerosis Society of Canada. SKJ is funded by a graduate student support grant from the Alberta endMS Regional Research and Training Center of the Multiple Sclerosis Society of Canada. The authors wish to acknowledge Dr. Jan van Minnen and the Regeneration Unit in Neurobiology core facility for training and use of equipment.

注：この手順で使用する動物は動物管理上のカナダ人評議会（CCAC）のガイドラインに従って世話た。倫理はカルガリー大学の動物ケア委員会によって承認された。 1.注射用シリンジを準備<ol><li>少量のアリコート（75μL）で-20℃で、店舗; 1％のリン酸緩衝生理食塩水で液（pH7.4 PBS）にリゾレシチン溶かす。 RTにバイアルを解凍する。 NOTE：リゾレシチンが未溶解であれば、均一な溶液を形成し、約30分間超音波洗浄機（40 kHz）のチューブを超音波処理する。 </li><li>繊細な先端部を損傷しないように細心の注意を払って、事前に引っ張らガラスキャピラリーを処理します。 10μlの注入シリンジのナットを緩めてフェルールの嵌合端が整列し、毛細血管が円錐形のフェルール（ 図1）でジャストサイズであることを確認、2フェルールに続く毛細血管の平坦な端にそれを通します。 isopropで注射器をすすぐイルアルコール及びプランジャーを取り外します。乾燥したら、注入注射器の上にタイトな針アセンブリの手をねじ込みます。 </li><li>プライミングシリンジに金属ハブ針を取り付けます。ピアース針でゴムディスクとベースにそれを下にスライドさせます。リゾレシチンでプライミング注射器を埋める。液体は、針の先端に表示されるまで、静かにプライミング注射器を押し下げる。これは気泡が注入注射器に導入されることはありませんが保証されます。 </li><li>注入シリンジにプライミング注射器の金属ハブ針を挿入します。毛細血管が液で先端にいっぱいになるまでゴムディスクとしっかりシールを作り、ゆっくりプライミングシリンジを押し下げる。同時に気泡を導入することなく、注入シリンジのバレルを埋めるために押しながら慎重にプライミング注射器を取り外します。注入シリンジにプランジャーを挿入し、プランジャが優しく押されたようなソリューションは、キャピラリの先端から流れを確認してください。 注意：気泡がキャップに表示された場合illaryまたは注射器を注入し、注射器の準備を最初から繰り返す必要があります。注入装置内の連続流体は、正確な注入量を確保することが重要です。 </li><li>定位マイクロマニピュレータのアームに完成した注入シリンジを取り付けます。この完成した装置が再充填される必要の前に15〜20の動物を注入することができます。 </li><li>プライミングシリンジから残りのリゾレシチンを捨てる。撤回し、イソプロピルアルコールを数回押すと、金属ハブ針を取り外す。再び充填する前に蒸発させるためにプライミング注射器の残りのイソプロピルアルコールのために数時間待ちます。 </li></ol> 2.手術手順のために動物を準備注：この手順は、雌のC57BL / 6マウスについて記載した8〜10週齢ている。 <ol><li>ケタミン（200ミリグラム/ kg）およびキシラジン（10mg / kg）のまたは施設動物ケア規制あたり腹腔内注射で動物を麻酔する。計画する注射用麻酔を使用している場合で約1時間、麻酔下にある動物。 </li><li>動物が深くしっかりと足をつまんで麻酔をしていることをテストします。適切に麻酔した動物は、ピンチに応答しません。 </li><li>バリカンを使用して、耳に近い動物の背側2-3 cm 2の面積を、剃る。耳を傷つけないように注意してください。 </li><li>ガーゼパッドに適用される70％のエタノールできれいな部分を拭いてください。すべてのクリップされた髪はエリアから削除されていることを確認してください。ヨウ素とエリアを消毒する。 </li><li>作業中は乾燥を防ぐために、目にワセリンを適用します。 </li><li>手順を開始する準備ができるまで加熱された回収室で動物を保​​管してください。 </li></ol> 3.手術手順を実行します注：手順のすべてのステップのための適切な無菌操作を確認してください。これは手袋、hairnets、マスク、ドレープの適切な使用が含まれています。すべてのツールはコンタックに来る前に滅菌する必要があります動物とトン。 <ol><li>定位フレーム、背側までに動物を移動し、背骨の湾曲を誇張するために折り畳まれた紙タオルによって中間部分に上昇。外科テープで腕や尾を固定し、歯クランプで頭部を固定します。安定耳のバーは、この手順のために必要ではない。 </li><li>ちょうど耳の下に開始し、尾側方向に切断、3cmの正中切開を作るためにメスを使用してください。 </li><li> 2つの大きな脂肪構造間の格差を見つけて、これらを引き離すために、それぞれの手で細かい鉗子を使用しています。手術野を開くには、リトラクターを広げた。 </li><li>手術用顕微鏡下では、T2の椎骨の顕著な成長過程を見つけ（注：この機能は、C57BL / 6マウス系統の特徴である）。よりよいT2を可視化するためにオーバーレイ筋肉組織を通じて、閉じた春のハサミで鈍的切開を行います。鉗子を使用して、適切な解剖学的位置を確認するために、T3、T4の硬い表面のために感じる。 </li><li>春のはさみを使用して、T3とT4の間の結合組織の（2〜3ミリメートルの深さ）浅い横カットを行う。によるマウス脊柱の上部胸部椎骨間の自然の間隔に、椎弓切除術は、脊髄を明らかにする必要はない。深すぎるカットはコードを貫通し、損傷していることに留意してください。 注：出血の小さな程度は、このステップの間が一般的です。この問題が発生した場合、出血治まっ（30〜60秒）までの領域にスポンジ槍を開催しています。 </li><li>脊髄を視覚化。コー​​ドを露出させ、この髄膜層がまだカットされなかった場合、それは目に見える硬膜の厚い層で覆われます。著名な血管が脊髄のおおよその正中線を通して尾/吻側を実行します。 注：この血管系は、正中線のためのランドマークとして使用すべきではありません。代わりに、適切な照明が脊柱に隣接するグレー白質の境界を明らかにする必要があり、これらは正中線を推定するために使用されるべきである。 </li><li>硬膜の場合それがクリアされるまでそのまま残り、32のG金属針で穏やかな横方向の擦り傷を作る。目標は、厚いと見ることが困難ではない残りの根本的な髄膜をカットしないが、硬膜を除去することである。 注：脳脊髄液の放出は、くも膜の違反を示し、これは、組織への機械的な損傷を与えることなく発生する可能性がありながら、蓄積された脳脊髄液は、より良いコードの表面を可視化するためにスポンジ槍で削除する必要があります。 </li><li>所定の位置に注入する注射器を移動し、キャピラリの先端がかろうじて正中線の両側の直ぐ横の脊髄に触れるまでゆっくりとそれを下げる。所定の位置に腕をロックします。 </li><li>ベースライン位置測定を行うために、Z方向定位アームの段階的な測定値を使用してください。この読みから、1.3ミリメートルを引く。組織を貫通するの迅速かつ浅い下向きの運動を使用し、新しい測定に到達するまで、慎重にキャピラリーを下げる。オプション：必要に応じて、背側の列の病変は正中線で同じ突き刺し運動と0.3ミリメートル（詳細については、議論を参照）の深さで製造することができる。 注：これらの値は、T3とT4の間で注入するための固有のものです。脊髄内の他の場所で噴射を行うことを選択した場合、これらの値は、任意の利用可能なマウス脳アトラスから導出されなければならない。 </li><li>腹側脊髄白質にリゾレシチン押し下げマイクロマニピュレーターを使用してください。 0.5μlの最終容量で、その結果、2分間マイクロマニピュレータの1回転ごとに5秒を行います。ソリューションの逆流を防止するために、2つの追加分の場所に毛細血管のままにしてから、慎重に毛細血管を削除します。 </li><li>脊柱を重ね筋肉/脂肪組織内の単一の縫合糸を結ぶ。皮膚を閉じるには、非中断された縫合糸を使用してください。切開部位へのより多くのヨウ素を適用します。 </li><li>それが回復するまで、そのケージに戻した後、加熱された回収室で動物を置きます。鎮痛薬の適用後動作的制度的動物管理規則に従って。動物が完全に歩行可能と自己摂食とすぐ麻酔からの彼らの回復として飲むことのできるように追加の術後ケアは通常は必要ありません。 </li><li>残りの動物のための手順を繰り返します。 注：習熟すると、操作は特に縫合糸を結ぶ第二の人の助けを借りて、動物あたり10〜15分で完了することができます。先端が鈍いとなり、交換しなければならない前に、同一のガラスキャピラリーは、約15-20手術のために使用することができる。代わりに、リゾレシチンの脊髄にPBSを注射して、説明したように制御手術は同一に行うことができる。私たちは、将来の使用のために毛細血管のクリーニングはお勧めしません。 </li></ol> 4.組織の処理と解析<ol><li>所望の時点で、ケタミン（500 mg / kgを）およびキシラジン（25mg / kgの）の腹腔内過剰摂取で動物を生け贄に捧げる。病変は通常、follで進化による方法：1-3日、アクティブな脱髄。 3-7日、OPCの募集。 7-10日、オリゴデンドロサイト分化。 10-21日、アクティブな再ミエリン2,10,11。 </li><li>最初のPBS中の20 mlの氷冷4％パラホルムアルデヒド、続いて20ミリリットルRT PBSを経心灌流12を実行し、組織学のために組織を調製した。半または超薄切片用樹脂包埋組織の調製のために、ステップ4.9を参照してください。 </li><li>各脊椎、脊柱の頸部の終わりで始まり、下位胸椎レベルまで作業を切断するように湾曲した骨のはさみを使用して脊髄を削除します。 4℃でPBS中の4％パラホルムアルデヒド中で脊髄O / Nを修正。少なくとも72時間、4℃でPBS中30％のショ糖にコードを切り替えます。 </li><li>脊髄の背側表面上の異常として注射部位を同定する。 （中央の注射部位との）組織の3ミリメートルピースをカットし、最適な切削温度（OCT）Coを含むcryomoldsにピースを揃えるmpound。 10月には完全に凍結するまで2-メチルブタンとドライアイスの冷蔵混合物中のcryomoldsの下側を一時停止します。セクションの準備ができるまで-80℃で保管してください。 </li><li>顕微鏡スライド上に20μmの幅でセクションクライオスタット上で脊髄を、空気乾燥Oに許可/ N、-20℃でスライドを格納する前に。 </li><li>ミエリン13のエリオクロムシアニン組織学的染色を用いて病変の位置およびサイズを検出する。 RTですべての手順を実行します。 30分間空気乾燥スライド。 1分間ずつ段階的エタノール溶液中で再水和に続いて1分（100％、95％、90％、70％、50％、水）のためのクリアリング剤の代わりにスライドする。 <ol><li>水で1分間洗浄した15分間のエリオクロムシアニン溶液中でスライド、。水で1分間洗浄し、続いて10秒間、0.5％水酸化アンモニウム中で分化する。明視野マイルで1分間取り付けメディアそれぞれ、カバースリップ、および画像のため（上記のように順序を逆に）段階的なエタノール溶液中で脱水するcroscope。 </li></ol></li><li>軸索とミエリンを可視化するために免疫組織化学を使用してください。 30分間空気乾燥スライド。 RTで2分間ごとに、段階的なエタノール（水中、50％、70％、90％、95％、100％）で脱水し、再び水に順序を逆にする。このステップでは、個々のミエリンリング14のより高い解像度になる。 <ol><li> RTで60分間、PBS中10％ヤギ血清と0.25％のトリトンX-100を使用して、非特異的抗体相互作用をブロックする。一次抗体（：2000、ウサギ抗MBP 1：マウス抗SMI312 1千）で希釈し、PBS中にし、O / N 4℃でスライド上でインキュベートする。 </li><li>室温でPBSで5分間5回洗浄する。 PBS中、室温で60分間スライド上でインキュベートした二次抗体（500：500、アレクサ546抗マウス1のAlexa 488抗ウサギ1）で希釈する。室温でPBSで5分間5回洗浄する。マウントは、蛍光顕微鏡でgelvatolとイメージを使用して、カバーガラスと摺動する。 </li></ol></li><li>オリゴデンドロサイト系統の細胞を可視化するために免疫組織化学を使用してください。 STの手順に従ってくださいディスコグラフィ4.7、脱水/再水和工程を省略し、10％ウマ血清の代わりにヤギ血清を用いて。ヤギ抗PDGFRα1：100、マウス抗CC1 1：200、ウサギ抗OLIG2 1：200以下の一次抗体希釈液を使用してください。アレクサ488抗ヤギ1：500、アレクサ594抗マウス1：500、アレクサ647抗ウサギ1：500以下の二次抗体の希釈液を使用してください。 </li><li>半または超薄切片用組織を調製するために、第腔的潅流を行い、12mlの 20 RT PBSをPBS中の20 mlの氷冷4％パラホルムアルデヒド/ 1％グルタルアルデヒドが続く。ステップ4.3で説明したように、脊髄を除去します。 4℃でPBS中の4％パラホルムアルデヒド/ 1％グルタルアルデヒドでO / Nを修正。 </li><li>ステップ4.4で説明したように注射部位を特定します。注射部位を含む組織の1ミリメートルの部分をカット。必要に応じて病変のいずれかの側に追加の1mmのブロックは、同様に調製することができる。 </li><li>ドラフト内で、氷上で各ブロックに10倍量の1％四酸化オスミウム/ 1.5％フェロシアン化カリウムを加える60分間。 注：四酸化オスミウムは、毒性の高い物質であり、細心の注意を払って取り扱ってください。四酸化オスミウムと接触する全ての材料は、中和のためにコーン油（四酸化オスミウム溶液の倍容量）中に配置されるべきである。 </li><li>コー​​ン油に廃棄、室温で10分間、0.2Mカコジルでコードを3回洗浄する。段階的エタノール溶液（水中、50％、70％、90％、95％で2回、100％で2回、プロピレンオキシドと2回）、室温で10分間で脱水する。 </li><li>製造元の指示に従って樹脂に埋め込むコード。 </li><li>ウルトラ上のブロックをカットし、顕微鏡スライド上の水滴の上のセクションをマウントします。乾燥するまでホットプレート（約50℃）の上に置いてスライドする。 </li><li> 50℃で10〜15秒間、スライド上の1％トルイジンブルー/ 2％のホウ砂溶液を数滴添加することにより、ミエリンを可視化する。マウントメディアと水、ドライ、そしてカバースリップですすいでください。明視野顕微鏡での画像セクション。 </li></ol>

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The authors have nothing to disclose.

多くの動物モデルは、実験的自己免疫性脳脊髄炎（EAE）モデルは、最も認識可能、MSを研究するために開発されてきた。 EAEは、げっ歯類は、ミエリンペプチドの断片に対して免疫と麻痺を昇順で顕在炎症性病変の発達を受けている。半または極薄のために組織を処理する際に第一に、炎症​​性病変の位置が多少ランダムであり、病変を見つける：このモデルは免疫MS薬の前臨床試験のために有用であったが、それは3つの主な理由で再ミエリン化を研究するための理想的ではないのセクションでは、挑戦することができます。第二は、再ミエリン化は、特定の時間にわたって発生し、単一EAE病変の正確な年齢は継続的な非侵襲的磁気共鳴画像なしで知ることができないということである。第三は、再ミエリン化は、齧歯動物における天然に存在する現象であり、EAEにおける薬物処置後の再ミエリン化の証拠は、薬物の主要な結果であるが、でないことである炎症を低減する二次的な現象をステッド。 脱髄を製造する別の一般的な方法は、食事中の銅キレート剤のクプリゾンを導入することによって達成される。これは以下のような脳梁に、広範な脱髄をもたらす。まず、軸索の直径（したがって、ミエリン厚さ）他のCNS領域よりも小さくしているため、薄く髄鞘再形成シースは脱髄ことはありませんでしたものと区別がつかないことができます：次の理由から、再ミエリン化のサイトとして脳梁を研究する上での制限があります。マウスの脳梁が&gt; 70％の無髄軸索16が含まれているため第二に、それは再ミエリン化セグメントは17が正常に発生し、成人、中に損傷したミエリンまたはデノボミエリン合成の真の修理があるかどうかは不明であることができます。 それは、再ミエリン化を研究するための最良のモデルは、毒素の直接注入は、どちらリゾレシチン、ethidであることを私たちの信念である尾側脳花梗18または脊髄白質にイウム、または他のもの、。前者の位置は、正確な3次元定位注射によって達成され、そしてによる小脳果柄のサイズが小さいため、より大きなげっ歯類（ラット）に限定される。これは脱と再ミエリン化を研究するトランスジェニックマウスの豊富なリソースを除外します。脊髄は、しかし、簡単にアクセス外科的な多くの大きな白い質路が含まれています。吻側胸椎セグメントにおける椎骨の間のスペースは尾側胸部の外科的処置に必要なステップである椎弓切除術を必要とせずに、脊髄の露出が可能になります。特に腹側白質を標的とする利点は、軸索は再ミエリン化の定量化を行うこと、背側の白質より均一に大きいということで少ない曖昧なタスク類似した脳梁に関連する課題に。さらに、腹側白質がはるかに大きいTを構成する注入するARGETエリア。同じ偏差は腹側にまだ目立つ脱髄病変を生み出すだろうが横方向に背側領域に数百ミクロンのは、列外に毛細血管を置くだろう。いくつかのプロトコルは、同じ動物19の背側と腹側列の両方にリゾレシチン注入する。これにより、適切な毛管配置の可能性とより少ない動物において定量可能な病変の数の両方を増加させることができる。提示され、現在のデータは、動作時に8〜10週齢の動物からのものであるが、我々はまた、再ミエリン化が4著しく遅いと記載されている8~10月齢マウス、同じ手順を使用して成功を収めている。 再ミエリン化の定量化は、些細な仕事ではありません。セントラルドグマは、再ミエリン化セグメントは、それらの健全な対応物よりも平均して長さが短く、薄く、かつ断面半Oをこのようにして得比計算（軸索直径軸索+ミエリンの直径で割った）ことを断定Rの超薄切片は、標準的な手順となっている。しかし、再ミエリン化セグメントは、時間2にわたって増粘及び再ミエリンオリゴデンドロサイトのトランスジェニックレポーターを用いた最近の研究は、多くの節は、最終的に制御装置20と区別できないとなることを示唆していることが知られている。病変内の成熟したオリゴデンドロサイトの数を定量することはオリゴデンドロサイトは、節間の広い数を作ることができるように、修理を測定するための間接的な方法であり、再ミエリン-応じてモデルにかなりの割合のシュワン細胞3から発生する使用は、することができます。再ミエリン化が跳躍伝導21の復元にリンクされているようにもちろん、修理の究極の測定基準は、神経学的欠損の機能回復となる。再ミエリン化は、いくつかの種22,23における機能の回復に関連しているが、これはネズミリゾレシチン研究において標準的な手順になっていない。これは明白なobservの欠如に起因する可能性が高いそのようなEAEとさえクプリゾンなどのより強固な脱髄のモデルに比べて背側または腹側の病変のいずれかからでき赤字、。私たちは、再ミエリン化を注射し、その後の回復をリゾレシチンに起因する機能的な赤字は、唯一の細かい感覚機能するの敏感なテストを使用して観測可能であると考えています。 ぶっきらぼう方法論的アプローチとはいえ、上記の動物モデルのいずれかと一緒に「再ミエリン」のPubMedの検索は、EAE（188）とクプリゾン（197）に比べて（109）リゾレシチンためのより少ない検索ヒットを示しています。脱髄をリゾレシチン私たちの引数が再ミエリン化を研究するための優れたアプローチであれば、なぜそれが少なくとも議論されている？おそらく、この方法を使用するための不安は、手術を行う際の技術的困難の信念に由来する。実際には、この手順は、すべてのコマーある材料を必要とし、高速で費用対効果がなく、全くルーチン組織切開よりも困難でcially利用できる。それは、このプロトコルはミエリン修復の刺激的拡大分野を研究するための彼らのレパートリーにこの強力なモデルを追加したいもののために役立ちことを願っています。

多発性硬化症（MS）は、免疫細胞の浸潤及び失わミエリン、オリゴデンドロサイト、軸索およびニューロンを含むプラークを特徴とする中枢神経系（CNS）の慢性脱髄疾患である。ほとんどの患者は寛解期間に続く神経症状の広い範囲を伴う炎症の再発、からなる疾患の経過を持っている。これらの患者の半数以上が、最終的には明らかな再発はなく、継続的な神経学的な低下と二次進行段階に移行する。これは、この進行性の悪化が軸索損傷および喪失に起因すると考えられる、慢性の脱髄によって部分的に寄与した。失われたミエリンを復元するための戦略は、このように、疾患の進行を遅らせ、おそらく神経症状を逆転するための有望な治療アプローチと考えられている。 新しい髄鞘が募集さオリゴデンドロサイト前駆細胞から生成されたことにより、再ミエリンは、CNSにおける内因性修復応答であるミエリン形成オリゴデンドロサイトに分化する（OPCは）。再ミエリン化は、1-3かなり堅牢であるために、動物モデルにおいて示されているが、その効率は、年齢4に低下する。それはMS患者5の大部分で不完全であるが、実際のところ、再ミエリン化は、ヒトにおいて起こる。 MSのためのすべての現在利用​​可能な薬物は主に病気の異常な免疫成分を標的とし、再発の低減に有効であるが、著しく疾患の進行を遅らせることはありません。 MSの管理のための治療戦略次世代の再発および進行6の両方を防止するために、内因性再ミエリン化の増強を伴う免疫調節の進歩を統合する。 CNSで脱と再ミエリン化を研究する一つの方法は、脊髄の白質1,3,7に洗剤リゾホスファチジルコリン（リゾレシチン）の直接注射することを含む。この手順は、十分に特徴づけdemyelinatを生産けが主にマクロファージ/ミクログリアの浸潤および活性化8,9、反応性アストログリオーシス、軸索の恒常性/軸索損傷、およびOPCの増殖と遊走10の摂動からなるがる。病変は、予想通り、数週間の期間にわたって進化し、完全に再ミエリン化が最終的に可能である。この方法は、脱と再ミエリン化に関与するイベントの振り付けを研究する上で特に有用であった。また、脱髄傷害後の修復を促進する候補治療法の前臨床試験のためのツールと​​して採用されている。

<table><tbody><tr><td>spring scissors</td><td>Fine Science Tools</td><td>15004-08</td><td></td></tr><tr><td>forceps</td><td>Fine Science Tools</td><td>11254-20</td><td></td></tr><tr><td>retractor</td><td>Fine Science Tools</td><td>17003-03</td><td></td></tr><tr><td>clippers</td><td>Philips</td><td>QG3330</td><td></td></tr><tr><td>heating recovery chamber</td><td>Peco Services</td><td>V1200</td><td></td></tr><tr><td>surgical tape</td><td>3M</td><td>1527-1</td><td></td></tr><tr><td>scalpel handle</td><td>Fine Science Tools</td><td>10003-12</td><td></td></tr><tr><td>scalpel blade</td><td>Feather</td><td>No. 15</td><td></td></tr><tr><td>sponge spear</td><td>Beaver Visitec</td><td>581089</td><td></td></tr><tr><td>5-0 Vicryl sutures</td><td>Ethicon</td><td>J511G</td><td></td></tr><tr><td>curved ToughCut spring scissors</td><td>Fine Science Tools</td><td>15123-12</td><td></td></tr><tr><td>32 G metal needle</td><td>BD</td><td>305106</td><td></td></tr><tr><td>needle holders</td><td>Fine Science Tools</td><td>12002-14</td><td></td></tr><tr><td>angled forceps</td><td>Fine Science Tools</td><td>11251-35</td><td></td></tr><tr><td>cotton tipped applicator</td><td>Puritan</td><td>806-WC</td><td></td></tr><tr><td>gauze pads</td><td>Safe Cross First Aid</td><td>3763</td><td></td></tr><tr><td>10 &amp;mu;l syringe</td><td>Hamilton</td><td>7635-01</td><td>make sure to purchase the microliter, not gastight syringe</td></tr><tr><td>compression fitting</td><td>Hamilton</td><td>55750-01</td><td>contains the 2 ferrules and removable nut, but the nut that comes with the 10 &amp;mu;l syringe is a tighter fit</td></tr><tr><td>priming kit</td><td>Hamilton</td><td>PRMKIT</td><td>contains the priming syringe, removable hub needle and the rubber discs</td></tr><tr><td>pre-pulled glass capillaries</td><td>WPI</td><td>TIP10TW1 (pack of 10)</td><td>contains capillaries with 10 &amp;mu;m inner diameter. 30 &amp;mu;m inner diameter also work (TIP30TW1)</td></tr><tr><td>stereotactic frame</td><td>David Kopf instruments</td><td>Model 900</td><td></td></tr><tr><td>Ultrasonic cleaner</td><td>Fisher Scientific</td><td>FS-20</td><td></td></tr><tr><td>Tissue-Tek optimal cutting temperature (OCT) compound</td><td>VWR</td><td>25608-930</td><td></td></tr><tr><td>Tissue-Tek intermediate cryomold</td><td>VWR</td><td>25608-924</td><td></td></tr><tr><td>cryostat</td><td>Leica</td><td>CM1900</td><td></td></tr><tr><td>microscope slides</td><td>VWR</td><td>48311-703</td><td></td></tr><tr><td>bright field microscope</td><td>Olympus&amp;nbsp;</td><td>BX51</td><td></td></tr><tr><td>ultramicrotome</td><td>Leica EM UC7</td><td>EM UC7</td><td></td></tr><tr><td>Lysophosphatidylchoine</td><td>Sigma</td><td>L1381</td><td></td></tr><tr><td>2-methylbutane</td><td>Sigma</td><td>M32631</td><td></td></tr><tr><td>Triton x-100</td><td>Sigma</td><td>X-100</td><td></td></tr><tr><td>goat serum</td><td>Sigma</td><td>G9023</td><td></td></tr><tr><td>Mouse anti-SMI312 antibody</td><td>Covance</td><td>SMI-312R</td><td>1:2,000 dilution</td></tr><tr><td>Rabbit anti-MBP antibody</td><td>Abcam</td><td>AB40390</td><td>1:1000 dilution</td></tr><tr><td>Goat anti-PDGFR&amp;alpha; antibody</td><td>R&amp;amp;D Systems</td><td>AF1062</td><td>1:100 dilution</td></tr><tr><td>Rabbit anti-Olig2 antibody</td><td>Millipore</td><td>AB9610</td><td>1:200 dilution</td></tr><tr><td>Mouse anti-CC1 antibody</td><td>Calbiochem</td><td>OP80</td><td>1:200 dilution</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 goat anti-rabbit IgG</td><td>Life technologies</td><td>A-11008</td><td>1:500 dilution</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 546 goat anti-mouse IgG</td><td>Life technologies</td><td>A-11003</td><td>1:500 dilution</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 donkey anti-goat IgG</td><td>Jackson Immuno</td><td>705-546-147</td><td>1:500 dilution</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 594 donkey anti-mouse IgG</td><td>Jackson Immuno</td><td>715-586-151</td><td>1:500 dilution</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 647 donkey anti-rabbit IgG</td><td>Jackson Immuno</td><td>711-606-152</td><td>1:500 dilution</td></tr><tr><td>PBS</td><td>Oxoid</td><td>BR0014</td><td></td></tr><tr><td>isopropyl alcohol</td><td>Sigma</td><td>109827</td><td></td></tr><tr><td>ketamine</td><td>CDMV</td><td></td><td></td></tr><tr><td>xylazine</td><td>CDMV</td><td></td><td></td></tr><tr><td>iodine</td><td>West Penetone</td><td>2021</td><td></td></tr><tr><td>Vaseline petroleum jelly</td><td>VWR</td><td>CA05971</td><td></td></tr><tr><td>paraformaldehyde</td><td>Sigma</td><td>P6148</td><td></td></tr><tr><td>sucrose</td><td>Sigma</td><td>S5016</td><td></td></tr><tr><td>Eriochrome Cyanine R</td><td>Sigma</td><td>32752</td><td></td></tr><tr><td>sulfuric acid</td><td>Sigma</td><td>320501</td><td></td></tr><tr><td>iron(III) chloride</td><td>Sigma</td><td>157740</td><td></td></tr><tr><td>ammonium hydroxide</td><td>Sigma</td><td>320145</td><td></td></tr><tr><td>Acrytol</td><td>Leica Biosystems</td><td>3801700</td><td></td></tr><tr><td>Citrisolv</td><td>Fisher Scientific</td><td>22-143-975</td><td></td></tr><tr><td>horse serum</td><td>Sigma</td><td>H0146</td><td></td></tr><tr><td>glutaraldehyde</td><td>Electron Micrscopy Sciences</td><td>16220</td><td></td></tr><tr><td>osmum tetroxide</td><td>Electron Micrscopy Sciences</td><td>19150</td><td>highly toxic</td></tr><tr><td>potassium hexacyanoferrate (II) trihydrate</td><td>Sigma</td><td>P3289</td><td></td></tr><tr><td>corn oil</td><td>Sigma</td><td>C8267</td><td></td></tr><tr><td>polyvinyl alcohol</td><td>Sigma</td><td>P8136</td><td></td></tr><tr><td>glycerol</td><td>Sigma</td><td>G9012</td><td></td></tr><tr><td>cacodylic acid</td><td>Electron Micrscopy Sciences</td><td>12300</td><td></td></tr><tr><td>propylene oxide</td><td>Electron Micrscopy Sciences</td><td>20401</td><td></td></tr><tr><td>EMBED kit</td><td>Electron Micrscopy Sciences</td><td>14120</td><td></td></tr><tr><td>Toluidine Blue O</td><td>Sigma</td><td>T3260</td><td></td></tr><tr><td>Sodium tetraborate decahydrate</td><td>Sigma</td><td>S9640</td><td></td></tr><tr><td>Recipes</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Eriochrome cyanine solution</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ingredient</td><td></td><td></td><td>Amount to add</td></tr><tr><td>Eriochrome Cyanine R</td><td></td><td></td><td>0.8 g</td></tr><tr><td>sulfuric acid</td><td></td><td></td><td>400 ml 0.5%</td></tr><tr><td>iron(III)chloride</td><td></td><td></td><td>20 ml 10%</td></tr><tr><td>water</td><td></td><td></td><td>80 ml</td></tr><tr><td>*add eriochrome cyanine to sulfuric acid, followed by iron(III) chloride and water. Solution can be kept after use. Make fresh once per year.</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Gelvatol</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ingredient</td><td></td><td></td><td>Amount to add</td></tr><tr><td>PBS</td><td></td><td></td><td>140 mL</td></tr><tr><td>polyvinyl alcohol</td><td></td><td></td><td>20 g</td></tr><tr><td>glycerol</td><td></td><td></td><td>40 g</td></tr><tr><td>*mix well, place at&amp;nbsp; 37 &amp;deg;C O/N, centrifuge at 1,960 x g 30 min, aliquot into 40 tubes</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

experimental demyelination and remyelination of murine spinal cord by focal injection of lysolecithin

多発性硬化症は、失われたオリゴデンドロサイトミエリン、軸索およびニューロンを含むプラーク形成を特徴とする中枢神経系の炎症性脱髄疾患である。再ミエリン化は、新たなミエリンは、ミエリン形成乏突起膠細胞に増殖、動員、およびオリゴデンドロサイト前駆細胞の分化の後に産生される内因性修復機構であり、更なる損傷から軸索を保護する必要がある。現在、多発性硬化症の治療のためのすべての治療薬は、炎症の再発を減少させるが、不可逆的な神経学的な衰退への進行を妨げない疾患の異常な免疫成分を、ターゲットにしています。これは、疾患の進行を遅らせ、おそらく神経学的症状を逆転させる可能性が再ミエリン化を促進する戦略が開発されることが不可欠である。脱髄のいくつかの動物モデルは、実験的自己免疫性脳脊髄炎およびcurprizone含め、存在する。ただし、対応時間がある再ミエリン化を研究するためのそれらの使用でtations。より堅牢なアプローチは、げっ歯類の脊髄白質中に洗剤リゾレシチンなどの中枢神経系への毒素の局所注射、である。このプロトコルでは、マウスの腹側白質にリゾレシチン注入に関与する外科的処置は、高速で費用効果的であり、市販されているものよりも追加の材料を必要としないことを示している。この手順は、再ミエリン化プロセスに関与する正常な事象を研究するためだけでなく、候補再ミエリン化を促進する治療薬をスクリーニングするための前臨床ツールとしてだけでなく、重要である。

腹側白質へリゾレシチンの焦点注入は約3ミリメートル（ 図2）の距離にわたって検出可能である離散脱髄病変を生成します。病変ミエリンのためのコア（MBP）と軸索（SMI312）の免疫組織化学染色は7日間（ 図3）でミエリンを剥奪された軸索を示しています。 14日目までに、多くの軸索は、再ミエリン化の発生を示唆して、MBP陽性リングに囲まれている。オリゴデンドロサイト系譜（PDGFRα、OLIG2、CC1）の細胞の染色、7日、並びにするOPCと比較して、成熟稀突起神経膠細胞の分布と比較して14日後の総細胞数の両方の有意な増加があった（ 図4） 。この知見と一致して、トルイジンブルーで染色した半薄のセクションでは、これらは私が再ミエリン化されていることを示す、まれに7日間（ 図5）で検出されない14日目で、薄いミエリン鞘の存在を明らかにnternodes。 手順は、動物間で再現性が高い。重い呼吸が毛細血管-これは通常、十分な鎮静の問題ではないの静止位置を変更したときにばらつきが発生します。軸索の損傷は、モデル1の最古の使用以来、記載されている病変の中心部、を除いて、最小限であるように思われる。それはまた、PBSを注射コントロールで観察可能であるように私たちは、これはガラスキャピラリーから機械的損傷であると信じる。それにもかかわらず、ばらつきが小さくなる傾向があり、我々と同様の手順を使用して他のグループ15ごとに、わずか4の動物を用いた実験条件の違いを検出した。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/52679/52679fig1.jpg" /> 注入注射器の図1のアセンブリ。（A）注入シリンジのナットは、T上にねじ込まれている<html>彼らの交配は、インターロックを終了するような2フェルールが続くガラスキャピラリーの彼フラット終わり、。毛細管がしっかり円錐フェルールにぴったりされると、アセンブリがタイト注入注射器の端部に手がねじ込まれている。（B）プライミング注射器に取り付けた金属ハブ針をゴムディスクの中心を片とそれを滑り降りる塩基（C）プライミングシリンジに溶液をリゾレシチン撤回。（D）リゾレシチンの最初の一滴が針の先端に表示されるまで、ゆっくりプライミングシリンジを押す。（E）は、注入のバレル内にプライミング注射器を挿入ゴム製のディスクとしっかりシールを作る注射器、。それは毛細血管の最後に実行されるまでゆっくりとソリューションを押し下げる。注入シリンジに気泡を導入することなく、金属ハブ針を除去するために、プランジャーに圧力を維持しながら慎重にプライミング注射器を引き抜く。/ 52679 / 52679fig1large.jpg「ターゲット= &quot;_空白」をアップロードする&gt;この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。 <img alt="図2" src="/files/ftp_upload/52679/52679fig2.jpg" /> エリオクロムシアニンで染色病変リゾレシチン図2.代表。連続切片エリオクロムシアニンで染色し、14日に特徴リゾレシチン病変の（400μmの間隔を空け）はミエリン（青）を可視化する。その脱髄が腹側白質に制限され、病変が吻側/尾側方向に約3ミリメートルにまたがることに注意してください。スケールバー= 1ミリメートル。 <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/52679/52679fig2large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <img alt="図3" src="/files/ftp_upload/52679/52679fig3.jpg" /> 図3.軸索およびミエリンリゾレシチンモデル。 （A）偽（PBS）は、ミエリンリングによって囲まれている健康な軸索 ​​を示した。7日後の病変リゾレシチン（B）Aが裸出軸索ならびに劣化したミエリンを示す7日後に脊髄を注入した。（C）14日目であり、a軸索（白矢印で示す例）の割合は、ミエリンリングの再出現と関連している。スケールバー=10μmである。 <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/52679/52679fig3large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <img alt="図4" src="/files/ftp_upload/52679/52679fig4.jpg" /> 図リゾレシチンモデル4.オリゴデンドロサイト系譜細胞。 （A、C）7日目には、CC1の+オリゴデンドロサイト（マゼンタバー）に対するより大きなPDGFRα+ OPCの表現（白バー）の相対性がある。バー内の数字は割合を表す。 OLIG2はにプローブしたオリゴデンドロサイト系譜細胞の染色を確認する。（B、C）を 14日目に、そこに7日に（p &lt;0.05、両側t検定に比べてオリゴデンドロサイト系譜細胞の合計数の有意な増加は、群あたりn = 4 ）。 7日後に（p &lt;0.0001、フィッシャーの直接確率検定）と比較して14日目でのOPCの乏突起膠細胞の分布に有意な増加がある。 =10μmのスケールバー。各フィールドは、60Xの元の倍率で撮影している。値は、平均±SDである。 * P &lt;0.05を意味します。 <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/52679/52679fig4large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <img alt="図5" src="/files/ftp_upload/52679/52679fig5.jpg" /> リゾレシチンモデル図5.再ミエリン化。 （A）HEAに腹側白質の部分を半薄染色断面トルイジンブルーlthyマウス（B）7日目。各ミエリン厚の口径の広い範囲にわたって軸索を示し、ミエリン鞘の欠如は、（右下）を受けない領域に隣接して観察された。14日目（C）、薄く有髄シース（赤い矢印で示す例は）再ミエリン化のセグメントを示す、病変全体に表示されます。スケールバー=10μmである。 <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/52679/52679fig5large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a>

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Experimental Demyelination and Remyelination of Murine Spinal Cord by Focal Injection of Lysolecithin

Demyelinating diseases can be modeled in animals by focal application of lysolecithin into the CNS. A single injection of lysolecithin into mouse spinal cord produces a lesion that spontaneously repairs over time. The goal is to study factors involved in de- and remyelination, and to test agents for enhancing repair.

リゾレシチンの焦点注入による実験的脱髄およびマウス脊髄の再ミエリン化

Multiple sclerosis is an inflammatory demyelinating disease of the central nervous system characterized by plaque formation containing lost ...

experimental-demyelination-remyelination-murine-spinal-cord-focal

Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Neuroscience

26.9K ビュー.  Hotchkiss Brain Institute at University of Calgary. Demyelinating diseases can be modeled in animals by focal application of lysolecithin into the CNS. A single injection of lysolecithin into mouse spinal cord produces a lesion that spontaneously repairs over time. The goal is to study factors involved in de- and remyelination, and to test agents for enhancing repair.

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Determining Immune System Suppression versus CNS Protection for Pharmacological Interventions in Autoimmune Demyelination

A major hallmark of the autoimmune demyelinating disease multiple sclerosis (MS) is immune cell infiltration into the brain and spinal cord resulting in myelin destruction, which not only slows conduction of nerve impulses, but causes axonal injury resulting in motor and cognitive decline. Current treatments for MS focus on attenuating immune cell infiltration into the central nervous system (CNS). These treatments decrease the number of relapses, improving quality of life, but do not completely eliminate relapses so long-term disability is not improved. Therefore, therapeutic agents that protect the CNS are warranted. In both animal models as well as human patients with MS, T cell entry into the CNS is generally considered the initiating inflammatory event. In order to assess if a drug protects the CNS, any potential effects on immune cell infiltration or proliferation in the periphery must be ruled out. This protocol describes how to determine whether CNS protection observed after drug intervention is a consequence of attenuating CNS-infiltrating immune cells or blocking death of CNS cells during inflammatory insults. The ability to examine MS treatments that are protective to the CNS during inflammatory insults is highly critical for the advancement of therapeutic strategies since current treatments reduce, but do not completely eliminate, relapses (i.e., immune cell infiltration), leaving the CNS vulnerable to degeneration.

This protocol describes how to determine whether pharmacological treatments for experimental autoimmune encephalomyelitis show CNS protection as a consequence of suppressing immune cell infiltration or are neuroprotective during the onslaught of immune cell infiltration.

自己免疫性脱髄に薬理学的介入のためのCNS保護に対する免疫系の抑制を決定します

A major hallmark of the autoimmune demyelinating disease multiple sclerosis (MS) is immune cell infiltration into the brain and spinal cord resulting in ...

免疫・感染学

Two-photon Imaging of Cellular Dynamics in the Mouse Spinal Cord

Two-photon (2P) microscopy is utilized to reveal cellular dynamics and interactions deep within living, intact tissues. Here, we present a method for live-cell imaging in the murine spinal cord. This technique is uniquely suited to analyze neural precursor cell (NPC) dynamics following transplantation into spinal cords undergoing neuroinflammatory demyelinating disorders. NPCs migrate to sites of axonal damage, proliferate, differentiate into oligodendrocytes, and participate in direct remyelination. NPCs are thereby a promising therapeutic treatment to ameliorate chronic demyelinating diseases. Because transplanted NPCs migrate to the damaged areas on the ventral side of the spinal cord, traditional intravital 2P imaging is impossible, and only information on static interactions was previously available using histochemical staining approaches. Although this method was generated to image transplanted NPCs in the ventral spinal cord, it can be applied to numerous studies of transplanted and endogenous cells throughout the entire spinal cord. In this article, we demonstrate the preparation and imaging of a spinal cord with enhanced yellow fluorescent protein-expressing axons and enhanced green fluorescent protein-expressing transplanted NPCs.

A new ex vivo preparation for imaging the mouse spinal cord. This protocol allows for two-photon imaging of live cellular interactions throughout the spinal cord.

マウス脊髄における細胞ダイナミクスの二光子イメージング

Two-photon (2P) microscopy is utilized to reveal cellular dynamics and interactions deep within living, intact tissues. Here, we present a method for ...

神経科学

Rat Model of Widespread Cerebral Cortical Demyelination Induced by an Intracerebral Injection of Pro-Inflammatory Cytokines

Multiple sclerosis (MS) is the most common immune-mediated disease of the central nervous system (CNS) and progressively leads to physical disability and death, caused by white matter lesions in the spinal cord and cerebellum, as well as by demyelination in grey matter. Whilst conventional models of experimental allergic encephalomyelitis are suitable for the investigation of the cell-mediated inflammation in the spinal and cerebellar white matter, they fail to address grey matter pathologies. Here, we present the experimental protocol for a novel rat model of cortical demyelination allowing the investigation of the pathological and molecular mechanisms leading to cortical lesions. The demyelination is induced by an immunization with low-dose myelin oligodendrocyte glycoprotein (MOG) in an incomplete Freund&#39;s adjuvant followed by a catheter-mediated intracerebral delivery of pro-inflammatory cytokines. The catheter, moreover, enables multiple rounds of demyelination without causing injection-induced trauma, as well as the intracerebral delivery of potential therapeutic drugs undergoing a preclinical investigation. The method is also ethically favorable as animal pain and distress or disability are controlled and relatively minimal. The expected timeframe for the implementation of the entire protocol is around 8 - 10 weeks.

The protocol presented here allows the reproduction of a widespread grey matter demyelination of both cortical hemispheres in adult male Dark Agouti rats. The method comprises of intracerebral implantation of a catheter, subclinical immunization against myelin oligodendrocyte glycoprotein, and intracerebral injection of a pro-inflammatory cytokine mixture through the implanted catheter.

炎症性サイトカインの脳内注射による広範囲にわたる大脳皮質脱髄のラットモデル

Multiple sclerosis (MS) is the most common immune-mediated disease of the central nervous system (CNS) and progressively leads to physical disability and ...

Ex Vivo Myelination and Remyelination in Cerebellar Slice Cultures as a Quantitative Model for Developmental and Disease-Relevant Manipulations

Studying myelination&#160;in vitro&#160;and&#160;in vivo poses numerous challenges. The differentiation of oligodendrocyte precursor cells (OPCs)&#160;in vitro, although scalable,&#160;does not recapitulate axonal myelination. OPC-neuron cocultures and OPC-fiber cultures allow for the examination of in vitro myelination, but they lack additional cell types that are present in vivo, such as astrocytes and microglia. In vivo&#160;mouse models, however, are less amenable to chemical, environmental, and genetic manipulation and are much more labor intensive. Here, we describe&#160;an&#160;ex vivo mouse cerebellar slice culture (CSC) quantitative system that is useful for: 1) studying developmental myelination, 2) modeling demyelination and remyelination, and 3) conducting translational research. Sagittal sections of the cerebellum and hindbrain are isolated from postnatal day (P) 0&#8211;2 mice, after which they myelinate&#160;ex vivo&#160;for 12 days. During this period, slices can be manipulated in various ways, including the addition of compounds to test for an effect on developmental myelination. In addition, tissue can be fixed for electron microscopy to assess myelin ultrastructure and compaction. To model disease, CSC can be subjected to acute hypoxia to induce hypomyelination. Demyelination in these explants can also be induced by lysolecithin, which allows for the identification of factors that promote remyelination. Aside from chemical and environmental modifications, CSC can be isolated from transgenic mice and are responsive to genetic manipulation induced with Ad-Cre adenoviruses and tamoxifen. Thus, cerebellar slice cultures are a fast, reproducible, and quantifiable model for recapitulating myelination.

Presented is a protocol for an ex vivo quantitative model of demyelination and remyelination using mouse cerebellar slice cultures. This method closely recapitulates an in vivo model with its full complement of CNS cell types in intact tissue, while maintaining the chemical, genetic, and environmental amenability of an in vitro system.

Studying myelination&#160;in vitro&#160;and&#160;in vivo poses numerous challenges. The differentiation of oligodendrocyte precursor cells (OPCs)&#160;in ...

Osmotic Pump-based Drug-delivery for In Vivo Remyelination Research on the Central Nervous System

Demyelination has been identified in not only multiple sclerosis (MS), but also other central nervous system diseases such as Alzheimer's disease and autism. As evidence suggests that remyelination can effectively ameliorate the disease symptoms, there is an increasing focus on drug development to promote the myelin regeneration process. Thus, a region-selectable and result-reliable drug delivery technique is required to test the efficiency and specificity of these drugs in vivo. This protocol introduces the osmotic pump implant as a new drug delivery approach in the lysolecithin-induced demyelination mouse model. The osmotic pump is a small implantable device that can bypass the blood-brain barrier (BBB) and deliver drugs steadily and directly to specific areas of the mouse brain. It can also effectively improve the bioavailability of drugs such as peptides and proteins with a short half-life. Therefore, this method is of great value to the field of central nervous system myelin regeneration research.

Osmotic Pump-based Drug-delivery for In Vivo Remyelination Research on the Central Nervous System

Demyelination takes place in multiple central nervous system diseases. A reliable in vivo drug delivery technique is necessary for remyelinating drug testing. This protocol describes an osmotic pump-based method that allows long-term drug delivery directly into the brain parenchyma and improves the drug bioavailability, with broad application in remyelination research.

中枢神経系の In Vivo 髄鞘再形成研究のための浸透圧ポンプベースの薬物送達

Demyelination has been identified in not only multiple sclerosis (MS), but also other central nervous system diseases such as Alzheimer's disease and ...

A Stably Established Two-Point Injection of Lysophosphatidylcholine-Induced Focal Demyelination Model in Mice

Receptor-mediated lysophospholipid signaling contributes to the pathophysiology of diverse neurological diseases, especially multiple sclerosis (MS). Lysophosphatidylcholine (LPC) is an endogenous lysophospholipid associated with inflammation, and it could induce rapid damage with toxicity to myelin lipids, leading to focal demyelination. Here, a detailed protocol is presented for stereotactic two-point LPC injection that could directly cause severe demyelination and replicate the experimental demyelination injury quickly and stably in mice by surgical procedure. Thus, this model is highly relevant to demyelination diseases, especially MS, and it can contribute to the related advancing clinically-relevant research. Also, immunofluorescence and Luxol fast blue staining methods were used to depict the time course of demyelination in the corpus callosum of mice injected with LPC. In addition, the behavioral method was used to evaluate the cognitive function of mice after modeling. Overall, the two-point injection of lysophosphatidylcholine via a stereotaxic frame is a stable and reproducible method to generate a demyelination model in mice for further study.

The present protocol describes a two-point injection of lysophosphatidylcholine via a stereotaxic frame to generate a stable and reproducible demyelination model in mice.

マウスにおけるリゾホスファチジルコリン誘発局所脱髄モデルの安定的に確立された2点注射

Receptor-mediated lysophospholipid signaling contributes to the pathophysiology of diverse neurological diseases, especially multiple sclerosis (MS). ...

Induction and Diverse Assessment Indicators of Experimental Autoimmune Encephalomyelitis

Multiple sclerosis (MS) is a typical autoimmune disease of the central nervous system (CNS) characterized by inflammatory infiltration, demyelination, and axonal damage. Currently, there are no measures to cure MS completely, but multiple disease-modifying therapies (DMT) are available to control and mitigate disease progression. There are significant similarities between the CNS pathological features of experimental autoimmune encephalomyelitis (EAE) and MS patients. EAE has been widely used as a representative model to determine MS drugs' efficacy and explore the development of new therapies for MS disease. Active induction of EAE in mice has a stable and reproducible effect and is particularly suitable for studying the effects of drugs or genes on autoimmune neuroinflammation. The method of immunizing C57BL/6J mice with myelin oligodendrocyte glycoprotein (MOG35-55) and the daily assessment of disease symptoms using a clinical scoring system is mainly shared. Given the complex etiology of MS with diverse clinical manifestations, the existing clinical scoring system can't satisfy the assessment of disease treatment. To avoid the shortcomings of a single intervention, new indicators to assess EAE based on clinical manifestations of anxiety-like moods and osteoporosis in MS patients are created to provide a more comprehensive assessment of MS treatment.

The present protocol describes the induction of experimental autoimmune encephalomyelitis in a mouse model using myelin oligodendrocyte glycoprotein and monitoring the disease process using a clinical scoring system. Experimental autoimmune encephalomyelitis-related symptoms are analyzed using mouse femur micro-computed tomography analysis and open field test to assess the disease process comprehensively.

実験的自己免疫性脳脊髄炎の誘導と多様な評価指標

Multiple sclerosis (MS) is a typical autoimmune disease of the central nervous system (CNS) characterized by inflammatory infiltration, demyelination, and ...

生物学

Inducing Local Demyelination in the Optic Nerve Using Lysolecithin

Source: You, Y. et al., <a href="https://app-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/v/52934">Visual Evoked Potential Recording in a Rat Model of Experimental Optic Nerve Demyelination.</a> J. Vis. Exp. (2015)
This video demonstrates the procedure of surgically accessing the optic nerve in an anesthetized animal and precisely delivering lysolecithin to induce focal demyelination, creating neuropathological conditions for further study.

リゾレシチンを用いた視神経の局所脱髄誘導

All procedures involving animal models have been reviewed by the local institutional animal care committee and the JoVE veterinary review board. ...

JoVE Encyclopedia of Experiments

Neuropathology

Epilepsy and Seizure Disorders

Ultrastructural Analysis of Demyelination in Mouse Spinal Cord Cross-Sections

Obtain chemically-fixed spinal cord tissue from mice induced with autoimmune demyelination at defined time points during disease progression.
The disease triggers autoreactive immune cells to attack myelin proteins, degrading the myelin sheath surrounding neuronal axons.
Oligodendrocyte precursor cells are recruited to the affected site, mature into oligodendrocytes, and reform the myelin sheath.
Rinse the tissue with a buffer to remove excess fixative, then treat it with osmium, which binds to myelin lipids and enhances contrast for imaging.
Apply heavy metal stains that bind to macromolecules and enhance contrast.
Dehydrate the tissue using increasing alcohol concentrations. Take the tissue embedded in resin and obtain ultrathin sections.
Using electron microscopy, measure the myelin sheath thickness to classify axons as demyelinating with a swollen, thicker sheath, demyelinated with no sheath, or remyelinating with a thin sheath.
Identify axonal damage characterized by reduced spacing between neurofilaments and swollen mitochondria or complete degeneration.
Analyze the progression of axonal damage and repair over time to assess disease progression.

マウス脊髄断面における脱髄の超微細構造解析

Neuromuscular Disorders

Establishing a Focal Demyelination Mouse Model via a Two-Point Injection of Lysophosphatidylcholine

Source: Pang, X., et al. <a href="https://app-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/v/64059">A Stably Established Two-Point Injection of Lysophosphatidylcholine-Induced Focal Demyelination Model in Mice.</a> J. Vis. Exp. (2022)
This video demonstrates the generation of a focal demyelination mouse model using a two-point Lysophosphatidylcholine (LPC) injection. The skull of an anesthetized mouse is exposed. The injection coordinates are determined, and a hole is drilled to enable LPC injections at targeted sites. LPC induces focal demyelination of neurons via inflammation, while a two-point injection ensures its sustainability.

Source: Pang, X., et al. A Stably Established Two-Point Injection of Lysophosphatidylcholine-Induced Focal Demyelination Model in Mice. J. Vis. Exp. ...