Vorremmo ringraziare Julie Jarnigan, Meredith Owens, Rachel Hill, Brandon Moye, Laura Mafla, Olivia Fish e il resto del laboratorio Reed per il loro aiuto con allevamento di volare ed elaborazione di immagini. Sean Mendez costruito il TreadWheel originale con l'assistenza di officina meccanica UAB. Finanziamenti per questo studio è stato fornito da NIH-R01 GM 098856 LKR Undergraduate creatività e Accademia di ricerca presso l'Università di Alabama a KEL e BJW.

1. TreadWheel configurazione e funzionamento
Nota: Vedere Supplemental figura 1 per schemi su TW esercitare la costruzione di macchine. Le parti necessarie sono elencate nella Tabella materiali. Le frasi "TW", "TreadWheel", "macchina di esercitazione" e "macchina" è utilizzata in modo intercambiabile in tutto il protocollo.
<ol><li>
Calibrare motore mediante interruttore di alimentazione, tale che un periodo di rotazione completa è 15 s (4 giri). Calibrare la velocità di rotazione della macchina prima di collocarli fiale di volare nei morsetti protetti collegati a bracci rotanti.
	<ol>
<li>Regolare la velocità utilizzando un cronometro standard e un oggetto immobile temporaneamente collegato alla macchina, ad esempio un piccolo pennello nastrata per la copertura del motore con il pennello semplicemente toccando una delle staffe rotanti. Tempo il numero di rotazioni al minuto utilizzando l'oggetto immobile come un punto di riferimento e regolare la velocità per ottenere un periodo di rotazione s 15 (4 giri).</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. volare insieme e manutenzione
Nota: Tutte le mosche sono mantenute in un incubatore a 25 ° C con 50% di umidità e un ciclo di luce/buio di 12 h tra benchtop manipolazioni descritte di seguito. Mosche sono alimentati una dieta di laboratorio di farina di mais-melassa standard se non specificato diversamente.
<ol><li>
Preparare la posa alloggiamenti per ciascun genotipo di interesse utilizzando piastre di agar di succo di mela, una goccia di lievito pasta per piastra e 6 once bottiglie di plastica per raccogliere le uova che si schiudono in larve.
	<ol>
<li>Per preparare il succo di mela piastre di agar, riempire capsule di Petri 35 x 10 mm ¾-pieno con 3% agar sciolto in succo di mela comprato al supermercato. Conservare le piastre solidificate in frigorifero fino all'utilizzo.</li>
		<li>In una provetta conica per centrifuga 50ml, unire lievito secco attivo comprato al supermercato con acqua distillata ad un rapporto di 2 mL di acqua per ogni grammo di lievito. Mix di lievito con acqua per creare una pasta della consistenza di ketchup utilizzando un bacchetta di vetro. Regolare le proporzioni di acqua e lievito come necessario per ottenere la consistenza desiderata.</li>
		<li>Conservare la pasta di lievito in frigorifero tra usi. Tenere il cappuccio del tubo allentato per permettere la de-gassificazione.</li>
		<li>Utilizzare un ago appuntito o coltello per piccoli fori di perforazione in 6 once bottiglie di Piazza-basso (polipropilene) come fori di ventilazione per camere di posa.</li>
		<li>Tamponare un piccolo punto di pasta di lievito (~ 3 mm di diametro) su ogni piastra di agar di succo di mela.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Posizionare le mosche adulte del genotipo desiderato in 6 once bottiglia e bottiglia del cappuccio con la piastra di agar di succo di mela. Fissare la piastra alla bottiglia con elastici. E posizionarlo in un incubatore per consentire gli adulti a deporre le uova.</li>
	<li>Cambiare piastre di agar di succo di mela su una camera di covata due volte al giorno (mattina e sera). Piastre di congedo utilizzato nell'incubatrice per altri 12 – 24 h consentire il primo instar larve alla schiusa.</li>
	<li>In primo luogo raccogliere instar larve utilizzando un sottile pennello o raccolta pick (flessibile sottile ago attaccato ad un manico). Mettere 50 primo instar larve di un genotipo specifico su una fiala di cibo del tipo di alimento sperimentale voluto sviluppare e metamorfosi completa mentre alloggiati nell'incubatrice (Figura 2A).</li>
	<li>
Raccogliere gli adulti per il trattamento di esercizio (Figura 2A).
	<ol>
<li>All'impupamento, raccogliere le pupe con un pennello piccolo, umido e posto in flaconcini vuoti prima eclosion per impedire che venga esposto alla dieta larvale mosche adulte.</li>
		<li>Trasferimento mosche adulte a fiale di cibo della dieta lab standard come essi eclose. Uno a cinque giorni dopo eclosion, separare mosche basate sul sesso.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Designato metà degli adulti raccolti ogni sperimentali e gruppi di controllo. Mantenere le mosche in fiale della dieta lab standard ad una concentrazione di 50 mosche per flaconcino.</li>
	<li>Trasferire gli adulti a fiale di cibo fresco ogni due giorni per impedire loro di rimanere bloccati durante l'esercizio. Aggiungere parecchi grani di lieviti vivi supplementari per il nuovo cibo immediatamente prima di introdurre le mosche. Nota: Mentre è possibile mantenere le mosche senza un supplemento di lievito vivo, abbiamo trovato che le mosche adulte comporta meglio con il completamento. Il completamento di lieviti vivi è una variabile che potrebbe essere modificata per soddisfare obiettivi sperimentali del ricercatore.</li>
</ol>3. protocollo di allenamento
<ol><li>Il primo giorno dell'esercizio (giorno 1), flaconcino push spine per lasciare 1 cm di spazio in controllo fiale e 6 cm di spazio tra il cibo e la spina in esercizio fiale (Figura 1). Nota: Le fiale di controllo avrà limitato spazio per mosche spostare mentre sulla macchina esercizio e così mosche si impegneranno in gran parte meno movimento rispetto a fiale di esercizio.</li>
	<li>Mettere le fiale nei morsetti e poi dare le mosche 10min di acclimatare sulla macchina (Figura 1B). Nota: Un controllo alternativo è quello di mantenere le mosche non esercitate sul banco adiacente alla macchina esercizio con 6 cm di spazio (in flaconcino) per muoversi normalmente. Risultati simili di esercizio riguardante sia la "1 cm il TreadWheel" e i controlli di "6 cm il benchtop" sono stati trovati11.</li>
	<li>
Trattare sia il controllo ed esercizio Vola a rotazione sulla macchina a temperatura costante per 5 giorni consecutivi a settimana con periodi alternanti di rotazione e resto (Figura 1D). Nota: Una temperatura costante è necessaria per evitare gli effetti confondenti della temperatura sui livelli di attività. Per gli studi di manipolazione di temperatura, posizionare la TW all'interno di un'incubatrice per modificare trattamenti di temperatura durante il training.<ol>
<li>Eseguire la macchina per quattro periodi di 15 minuti di esercizio al giorno 1. Si alternano questi attacchi con periodi di riposo di 5 minuti.</li>
		<li>Ciascuno dei giorni seguenti, aggiungere 5 minuti di esercizio a uno dei periodi di esercizio preesistente. Ad esempio, il giorno 2, rendono il primo periodo di esercizio 20 min a lungo, ma mantenere il resto dei periodi a 15 min a lungo.</li>
		<li>Il giorno 3, esercizio Vola per 20 min durante i primi due periodi e 15 min per i seguenti due periodi.</li>
		<li>Il giorno 4, è possibile utilizzare periodi di esercizio di 20 min per tutti tranne l'incontro finale, che dovrebbe essere solo 15 min a lungo.</li>
		<li>Il giorno 5, mantenere tutti i periodi di esercizio 20 min a lungo. Nota: Durante i periodi di riposo, i flaconcini contenenti le mosche devono rimanere saldamente fissati su TW. L'orientamento delle fiale durante questi periodi non è rilevante perché la forza gravitazionale avvertita da tutte le mosche sarà venuta dalla stessa direzione.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Dopo aver completato il trattamento di esercizio per un determinato giorno, tornano le spine del flaconcino di cibo alla posizione normale e tornare loro incubatrici mosche fino al giorno successivo.</li>
	<li>Dopo completamento del regime di pieno esercizio, anestetizzare utilizzando standard di mosche volano CO2 metodi di anestesia. Quindi trasferire mosche al nuovo cibo fiale o provette per microcentrifuga per la valutazione delle caratteristiche fenotipiche di interesse. Nota: Fenotipi di esempio includono arrampicata capacità (flaconcino di cibo), accumulo dei trigliceridi (tubo del microcentrifuge) o espressione genica (tubo del microcentrifuge). Il protocollo può essere messo in pausa qui con i campioni conservati in modo appropriato a seconda delle valutazioni deve essere eseguita. Saggi che coinvolgono vivente mosche dovrà essere prontamente condotto in conformità con gli obiettivi specifici dell'analisi fenotipica.</li>
</ol>4. valutazione di arrampicata
<ol><li>
Dopo un giorno di riposo dopo il completamento del protocollo esercizio, generale volo arrampicata prestazioni utilizzando una rapida geotassi negativa iterativo (anello) di prova-come arrampicata geotassi negativa dosaggio22.
	<ol>
<li>Collocare i gruppi di 10 mosche in flaconcini vuoti usando CO2 anestesia (o toccando direttamente dal cibo fiale se già ordinati) e sigillare con la pellicola di paraffina per impedire la fuga di mosche. Dare le mosche almeno 10 min ad ambientarsi nel nuovo flacone. Per impedire il ribaltamento di fiale, un cerchio di cartoncino ~ 5 cm di diametro sul fondo del flaconcino per fornire extra superficie del nastro. Nota: Spine flaconcino non devono essere utilizzate perché esse ostacolino parte del flaconcino utilizzato per determinare l'altezza è salito.</li>
		<li>Posizionare le fiale 20 cm davanti a una griglia di 1 x 1 cm in piena vista di una telecamera montata, stazionaria con un timer incorporato (un telefono intelligente con un timer della fotocamera applicazione funziona bene).</li>
		<li>Toccare fiale delicatamente il contatore tre volte a bussare tutte le mosche verso il fondo del flaconcino. Dopo aver toccato il flaconcino giù la terza volta, immediatamente avviare il timer della fotocamera s 4 per catturare un'immagine per determinare l'altezza è salito da ogni fly. Nota: Toccando dovrebbe essere fatto a intensità costante e dal ricercatore stesso in ogni contrasto esercizio-controllo per minimizzare la variazione nelle risposte dei mosche a causa di intercettazioni.</li>
		<li>Ripetere il passaggio 4.1.3 due volte, con almeno 1 min di pausa tra le prove, per produrre un totale di tre prove per flaconcino.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Per conservare le mosche per altre analisi, immediatamente dopo il dosaggio di arrampicata è stato completato, flash congelare le mosche per immersione in azoto liquido.
	<ol>
<li>Utilizzare un pallone dewar superficiale, aperta riempita di azoto liquido ad una profondità di circa 5 cm.</li>
		<li>Trasferire le mosche per microcentrifuga piccolo usando CO2 anestesia e quindi posizionare tubi nel pallone dewar riempito con azoto liquido. In alternativa, se future analisi richiedono l'evitare di CO2, snap congelare le mosche direttamente nel loro fiale arrampicate toccando delicatamente mosche al fondo del loro flaconcino mentre la parte inferiore è sommerso in azoto liquido e quindi trasferire le mosche congelate a microcentrifuga usando il forcipe. Nota: Azoto liquido è criogenico e deve essere utilizzato solo con adeguata ventilazione protettiva, attrezzatura e sala.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Elabora le immagini utilizzando lo strumento di selezione del multi-punto23 ImageJ.
	<ol>
<li>Aprite un'immagine per l'elaborazione all'interno di ImageJ.</li>
		<li>Impostare una scala di 1 cm sulla base del libro di griglia di sfondo per calcolare la distanza percorsa in salita da ogni singolo volo. Utilizzare lo "strumento di linea" dalla barra degli strumenti da parte di un quadrato di 1 cm2 traccia dalla carta di griglia di sfondo. Fare clic sulla scheda "Analizza" e selezionare "Imposta scala". Impostare la "distanza noto" come "Unità di lunghezza" come 'cm' e '1.00' assicurarsi che "Globale" non è selezionata e fare clic su "OK".</li>
		<li>Selezionare l'icona "Multi-point selezione" dalla barra degli strumenti e zoomare sul fondo del flaconcino nell'immagine. Impostare il primo punto come il fondo del flaconcino facendo clic sulla parte più bassa del flaconcino.</li>
		<li>Clicca sul centro di ogni fly nel flaconcino per contrassegnarlo come un punto dati. Prendete nota che ci sono un totale di 11 punti per flaconcino, una marcatura il fondo del flaconcino e uno per ogni volo.</li>
		<li>Fare clic sulla scheda "Analizza" e selezionare "Misura" per generare una tabella dei valori misurati. Salva la tabella in un file csv.</li>
		<li>Aprire il file csv in un foglio di calcolo e calcolare la distanza esatta è salita da ogni fly sottraendo i valori y dei punti 2-11 dal punto 1 nella tabella dei valori misurati.</li>
		<li>Ripetere i passaggi da 4.3.1 attraverso 4.3.6 per ogni immagine.</li>
	</ol>
</li>
</ol>5. trigliceride deposito Assay
Nota: I campioni, standard, soluzione standard di glicerolo e triglycerol soluzione di lavoro utilizzato durante tutto il test dovrebbe essere tenute su ghiaccio per tutta la durata del protocollo e devono essere conservati in frigorifero quando non in uso.
<ol><li>
Preparare gli standard utilizzando la soluzione Standard di glicerolo.
	<ol>
<li>Rendere il bianco (B) aggiungendo 1.000 µ l di tampone di omogeneizzazione a un tubo del microcentrifuge b.</li>
		<li>Rendere Standard 1 (S1), 2,5 mg/mL per pozzetto, aggiungendo 1.000 µ l della soluzione standard di glicerolo a un tubo del microcentrifuge etichettato S1.</li>
		<li>Rendere Standard 2 (S2), 1,25 mg/mL per pozzetto, aggiungendo 500 µ l di soluzione standard di glicerolo a 500 µ l di diH2O in un tubo del microcentrifuge etichettato S2.</li>
		<li>Rendere Standard 3 (S3), 0,625 mg/mL per pozzetto, aggiungendo 250 µ l della soluzione standard di glicerolo a 750 µ l di diH2O in un tubo del microcentrifuge etichettato S3.</li>
		<li>Rendere Standard 4 (S4), 0,3125 mg/mL per pozzetto, aggiungendo 125 µ l della soluzione standard di glicerolo a 875 µ l di diH20 in un tubo del microcentrifuge etichettato S4.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Preparare soluzione di lavoro triglycerol dal Kit determinazione del trigliceride di siero.
	<ol>
<li>Aggiungere 40 mL di diH2O il reagente di glicerolo libero dal kit e miscelare capovolgendo la bottiglia.</li>
		<li>Aggiungere 10 mL di diH2O alla soluzione di trigliceride da kit e miscelare capovolgendo la bottiglia.</li>
		<li>Combinare la soluzione di reagente e del trigliceride di glicerolo e miscelare capovolgendo per preparare la soluzione di lavoro triglycerol. Nota: La soluzione di lavoro triglycerol è valida per 60 giorni e può completare quattro saggi di piastra a 96 pozzetti per kit utilizzando il protocollo sottostante. I volumi utilizzati sono proporzionalmente ridotto dal kit determinazione del trigliceride del siero ufficiale per l'uso nel formato piastra a 96 pozzetti.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Verificare Blank e norme pipettando attentamente 5 µ l di ogni standard in un appartamento di 96 pozzetti a fondo, chiara micropiastra in triplice copia (o quadruplice copia per il bianco).
	<ol>
<li>Aggiungere esattamente 125 µ l di soluzione di lavoro di Triglycerol per ogni bene che contiene standard. Consentono soluzioni di reagire per 30 min.</li>
		<li>Posizionare una piastra a 96 pozzetti con uno spettrofotometro e leggere l'assorbanza a 540 nm. Utilizzare le misure di assorbanza per creare una curva standard e verificare l'esattezza degli standard di valutazione del valore di2 R. Se R2 per gli standard è minore di 0,98, ripreparare più attentamente gli standard.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Iniziare 1 giorno del dosaggio per trigliceride deposito14 utilizzando provette microcentrifuga contenenti 10 congelati Vola ciascuno. Nota: Una pipetta multicanale o a ripetizione non dovrebbe mai essere utilizzata in questo passaggio perché gli importi di ciascun reagente usato per il test devono essere molto accurata e coerente per ottenere risultati riproducibili. Nella nostra esperienza, pipette multicanale e ripetere non hanno questo grado di precisione e coerenza. Ogni aliquota da una pipetta monocanale può essere visivamente confermata dallo sperimentatore per controllo di qualità e qualsiasi pregiudizi specifici per pipetta monocanale saranno sperimentati da tutti i campioni allo stesso grado.<ol>
<li>Preparare un brodo di 200 mL di tampone di omogeneizzazione combinando 0,272 g di KH2PO4, 400 µ l di EDTA 0.5 M e 199,6 mL di diH2O in una bottiglia di vetro.</li>
		<li>Aggiungere esattamente 100 µ l di tampone di omogeneizzazione per ciascuna delle 40 provette microcentrifuga contenente 10 adulti congelati dopo l'analisi di arrampicata. Poi, centrifugare i campioni per 30 s a 18.000 g.</li>
		<li>Macinare Vola utilizzando una smerigliatrice motorizzata e pestello (o un'altra forma di omogeneizzazione del tessuto) per preparare una soluzione lattiginosa. Assicurarsi che un pestello fresco viene utilizzato per ogni campione. Poi, centrifugare i campioni per 2 min a 18.000 g.</li>
		<li>Pipettare solo il top 75 µ l di liquido supernatante da ciascuna provetta in nuove provette per microcentrifuga. Assicurare che nessun bit volo dal pellet è trasferito. Posto nuovi tubi in frigorifero durante la notte.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Iniziate la giornata 2 del protocollo del trigliceride rimuovendo 1 giorno campioni dal frigorifero. Nota: Passaggio 5.5 può essere eseguita lo stesso giorno come 5.4 ma abbiamo trovato il segnale per la concentrazione di trigliceridi essere più robusto dopo una notte in frigorifero. Tuttavia, il tempo tra passaggi 5.4 e 5.5 non deve superare 36 h.<ol>
<li>(Opzionale) Vortice nella prima provetta con liquido surnatante per 10 s e pipetta 5 µ l in una microcentrifuga pulito. Aggiungere 95 µ l di 0,15 M di NaCl nel nuovo tubo del microcentrifuge. Memorizzare questi sottocampioni nel congelatore da-20 ° C per una successiva analisi della proteina, se lo si desidera. Nota: Questi campioni del surnatante con la soluzione di NaCl aggiunta possono essere utilizzati per determinare il contenuto di proteine usando analisi preferito del ricercatore. Utilizziamo il metodo di Bradford24. Il contenuto proteico è un modo per standardizzare la misura del contenuto di trigliceridi, ma il ricercatore dovrebbe anche essere cauto nell'interpretare questi rapporti dal esercizio e dieta può anche interessare il deposito di proteine.</li>
		<li>Per le fiale di surnatante originale, vortice nella prima provetta con liquido surnatante per 10 s, quindi dispensare 5 µ l in due pozzetti separati di una micropiastra a 96 pozzetti per produrre tecniche replica. Essere sicuri di nota quali pozzi sono utilizzati per ciascun campione. Ripetere questo passaggio per gli altri 39 tubi.</li>
		<li>Dispensare esattamente 5 µ l di bianco nei quattro pozzetti della micropiastra, e per i restanti pozzetti, pipettare esattamente 5 µ l di ogni standard in triplice copia.</li>
		<li>Aggiungere la soluzione di lavoro triglycerol esattamente 125 µ l a ciascun pozzetto e consentire la soluzione di reagire per 30 min.</li>
		<li>Posizionare la piastra a 96 pozzetti con uno spettrofotometro e leggere l'assorbanza a 540 nm.</li>
		<li>Convertire i valori di assorbanza in concentrazione (mg/mL) utilizzando la curva standard calcolata dagli standard.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>Yanovski, J. A. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25836737">Pediatric obesity. An introduction.</a> Appetite. 93, 3-12 (2015).</li>
<li>Alberti, K. G. M. M., Zimmet, P., Shaw, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metabolic+syndrome-a+new+world-wide+definition.+A+Consensus+Statement+from+the+International+Diabetes+Federation%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetic+Medicine%22%5BJournal%5D)">Metabolic syndrome-a new world-wide definition. A Consensus Statement from the International Diabetes Federation.</a> Diabetic Medicine. 23, 469-480 (2006).</li>
<li>American Diabetes Association. <a target="_blank" href="http://care.diabetesjournals.org/content/39/Supplement_1/S47">6. Obesity Management for the Treatment of Type 2 Diabetes.</a> Diabetes Care. 39, Suppl 1 47-51 (2016).</li>
<li>Bliddal, H., Leeds, A. R., Christensen, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Osteoarthritis%2C+obesity+and+weight+loss%3A+evidence%2C+hypotheses+and+horizons+-+a+scoping+review%5BTitle%5D)+AND+%22Obesity+Reviews%22%5BJournal%5D)">Osteoarthritis, obesity and weight loss: evidence, hypotheses and horizons - a scoping review.</a> Obesity Reviews. 15, 578-586 (2014).</li>
<li>Bray, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+epidemic+of+obesity+and+changes+in+food+intake%3A+the+Fluoride+Hypothesis%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Behav%22%5BJournal%5D)">The epidemic of obesity and changes in food intake: the Fluoride Hypothesis.</a> Physiol. Behav. 82, 115-121 (2004).</li>
<li>O'Rahilly, S., Farooqi, I. S. <a target="_blank" href="http://rstb.royalsocietypublishing.org/content/361/1471/1095.short">Genetics of obesity.</a> Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences. 361, 1095-1105 (2006).</li>
<li>Kenkre, J., Tan, T., Bloom, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Treating+the+obese+diabetic%5BTitle%5D)+AND+%22Expert+Rev+Clin+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Treating the obese diabetic.</a> Expert Rev Clin Pharmacol. 6, 171-183 (2013).</li>
<li>Fiuza-Luces, C., Garatachea, N., Berger, N. A., Lucia, A. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/23997192">Exercise is the Real Polypill.</a> Physiology. 28, 330-358 (2013).</li>
<li>Matos, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+exercise+reverses+TRB3+expression+in+the+skeletal+muscle+and+ameliorates+whole+body+insulin+sensitivity+in+diabetic+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Physiologica%22%5BJournal%5D)">Acute exercise reverses TRB3 expression in the skeletal muscle and ameliorates whole body insulin sensitivity in diabetic mice.</a> Acta Physiologica. 198, 61-69 (2010).</li>
<li>Mercken, E. M., Carboneau, B. A., Krzysik-Walker, S. M., de Cabo, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Of+mice+and+men%3A+The+benefits+of+caloric+restriction%2C+exercise%2C+and+mimetics%5BTitle%5D)+AND+%22Ageing+Research+Reviews%22%5BJournal%5D)">Of mice and men: The benefits of caloric restriction, exercise, and mimetics.</a> Ageing Research Reviews. 11, 390-398 (2012).</li>
<li>Mendez, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+TreadWheel%3A+A+Novel+Apparatus+to+Measure+Genetic+Variation+in+Response+to+Gently+Induced+Exercise+for+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">The TreadWheel: A Novel Apparatus to Measure Genetic Variation in Response to Gently Induced Exercise for Drosophila.</a> PLoS ONE. 11, 0164706(2016).</li>
<li>Piazza, N., Gosangi, B., Devilla, S., Arking, R., Wessells, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exercise-Training+in+Young+Drosophila+melanogaster+Reduces+Age-Related+Decline+in+Mobility+and+Cardiac+Performance%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Exercise-Training in Young Drosophila melanogaster Reduces Age-Related Decline in Mobility and Cardiac Performance.</a> PLoS ONE. 4, 5886-5911 (2009).</li>
<li>Graham, P., Pick, L. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC5444297/">Drosophila as a Model for Diabetes and Diseases of Insulin Resistance.</a> Fly Models of Human Diseases. 121, 397-419 (2017).</li>
<li>Reed, L. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genotype-by-Diet+Interactions+Drive+Metabolic+Phenotype+Variation+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">Genotype-by-Diet Interactions Drive Metabolic Phenotype Variation in Drosophila melanogaster.</a> Genetics. 185, 1009-1019 (2010).</li>
<li>Watanabe, L. P., Riddle, N. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+the+Rotating+Exercise+Quantification+System+%28REQS%29%2C+a+novel+Drosophila+exercise+quantification+apparatus%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Characterization of the Rotating Exercise Quantification System (REQS), a novel Drosophila exercise quantification apparatus.</a> PLoS ONE. 12, 0185090(2017).</li>
<li>Tinkerhess, M. J., Ginzberg, S., Piazza, N., Wessells, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endurance+training+protocol+and+longitudinal+performance+assays+for+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Endurance training protocol and longitudinal performance assays for Drosophila melanogaster.</a> J Vis Exp. , (2012).</li>
<li>Tinkerhess, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Drosophila+PGC-1%CE%B1+Homolog+spargel+Modulates+the+Physiological+Effects+of+Endurance+Exercise%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">The Drosophila PGC-1α Homolog spargel Modulates the Physiological Effects of Endurance Exercise.</a> PLoS ONE. 7, 31633(2012).</li>
<li>Sujkowski, A., Bazzell, B., Carpenter, K., Arking, R., Wessells, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endurance+exercise+and+selective+breeding+for+longevity+extend+Drosophila+healthspan+by+overlapping+mechanisms%5BTitle%5D)+AND+%22Aging%22%5BJournal%5D)">Endurance exercise and selective breeding for longevity extend Drosophila healthspan by overlapping mechanisms.</a> Aging. 7, 535-552 (2015).</li>
<li>Tjønna, A. E., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/18606913">Aerobic Interval Training Versus Continuous Moderate Exercise as a Treatment for the Metabolic Syndrome: A Pilot Study.</a> Circulation. 118, 346-354 (2008).</li>
<li>Ciolac, E. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+high-intensity+aerobic+interval+training+vs.+moderate+exercise+on+hemodynamic%2C+metabolic+and+neuro-humoral+abnormalities+of+young+normotensive+women+at+high+familial+risk+for+hypertension%5BTitle%5D)+AND+%22Hypertension+Research+2010+33%3A8%22%5BJournal%5D)">Effects of high-intensity aerobic interval training vs. moderate exercise on hemodynamic, metabolic and neuro-humoral abnormalities of young normotensive women at high familial risk for hypertension.</a> Hypertension Research 2010 33:8. 33, 836-843 (2010).</li>
<li>Watanabe, L. P., Riddle, N. C. <a target="_blank" href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/video/57751/measuring-exercise-levels-drosophila-melanogaster-using-rotating">Measuring exercise levels in Drosophila melanogaster using the Rotating Exercise Quantification System (REQS).</a> J Vis Exp. , (2018).</li>
<li>Gargano, J., Martin, I., Bhandari, P., Grotewiel, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+iterative+negative+geotaxis+%28RING%29%3A+a+new+method+for+assessing+age-related+locomotor+decline+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Gerontology%22%5BJournal%5D)">Rapid iterative negative geotaxis (RING): a new method for assessing age-related locomotor decline in Drosophila.</a> Experimental Gerontology. 40, 386-395 (2005).</li>
<li>Schneider, C. A., Rasband, W. S., Eliceiri, K. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NIH+Image+to+ImageJ%3A+25+years+of+image+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods+2012+9%3A7%22%5BJournal%5D)">NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis.</a> Nature Methods 2012 9:7. 9, 671-675 (2012).</li>
<li>Hammond, J. B. W., Kruger, N. J. <a target="_blank" href="http://www.springer.com/us/book/9780896031265">New Protein Techniques</a>. 3, 25-32 (1988).</li>
<li>Mackay, T. F. C., et al. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22318601">The Drosophila melanogaster Genetic Reference Panel.</a> Nature. 482, 173-178 (2012).</li>
<li>Miquel, J., Lundgren, P. R., Bensch, K. G., Atlan, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+temperature+on+the+life+span%2C+vitality+and+fine+structure+of+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Mechanisms+of+Ageing+and+Development%22%5BJournal%5D)">Effects of temperature on the life span, vitality and fine structure of Drosophila melanogaster.</a> Mechanisms of Ageing and Development. 5, 347-370 (1975).</li>
<li>Berlandi, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Swing+Boat%3A+Inducing+and+Recording+Locomotor+Activity+in+a+Drosophila+melanogaster+Model+of+Alzheimer%27s+Disease%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Behav+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Swing Boat: Inducing and Recording Locomotor Activity in a Drosophila melanogaster Model of Alzheimer's Disease.</a> Front Behav Neurosci. 11, 159(2017).</li>
<li>Leng, S. X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ELISA+and+Multiplex+Technologies+for+Cytokine+Measurement+in+Inflammation+and+Aging+Research%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journals+of+Gerontology+Series+A%3A+Biological+Sciences+and+Medical+Sciences%22%5BJournal%5D)">ELISA and Multiplex Technologies for Cytokine Measurement in Inflammation and Aging Research.</a> The Journals of Gerontology Series A: Biological Sciences and Medical Sciences. 63, 879-884 (2008).</li>
<li>Ja, W. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prandiology+of+Drosophila+and+the+CAFE+assay%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">Prandiology of Drosophila and the CAFE assay.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 104, 8253-8256 (2007).</li>
<li>Chiu, J. C., Low, K. H., Pike, D. H., Yildirim, E., Edery, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assaying+locomotor+activity+to+study+circadian+rhythms+and+sleep+parameters+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Assaying locomotor activity to study circadian rhythms and sleep parameters in Drosophila.</a> J Vis Exp. , (2010).</li>
<li>MÖlich, A. B., FÖrster, T. D., Lighton, J. R. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hyperthermic+Overdrive%3A+Oxygen+Delivery+does+Not+Limit+Thermal+Tolerance+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Insect+Science%22%5BJournal%5D)">Hyperthermic Overdrive: Oxygen Delivery does Not Limit Thermal Tolerance in Drosophila melanogaster.</a> Journal of Insect Science. 12, 1-7 (2012).</li>
<li>Long, A. D., Macdonald, S. J., King, E. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissecting+complex+traits+using+the+Drosophila+Synthetic+Population+Resource%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Genetics%22%5BJournal%5D)">Dissecting complex traits using the Drosophila Synthetic Population Resource.</a> Trends in Genetics. 30, 488-495 (2014).</li>
</ol>

Gli autori non hanno nulla a rivelare.

Il protocollo di allenamento dettagliato qui ha dimostrato di stimolare correttamente la ginnastica dolce in Drosophila e può essere utilizzato per simulare l'esercizio di resistenza in un laboratorio controllate l'impostazione11. Va notato che quando inizialmente sviluppando il concetto di TreadWheel, abbiamo considerato prodotti commerciali che possono essere modificati per eseguire allo stesso modo (per esempio, una rosticceria di laboratorio). Tuttavia, abbiamo in definitiva respinto questo approccio, scegliendo un design su misura perché l'apparecchiatura commerciale non ha avuto una velocità sufficientemente bassa (4 giri) e mancava di capacità sufficiente flaconcino per la generazione di alto-rendimento del campione.
Il protocollo TW stesso può essere regolato fino a comprendere una vasta gamma di argomenti di ricerca. Per esempio, regolando la frequenza e la durata dei regimi di esercizio dei mosche può alterare le intensità di outs del lavoro che ricevono. Estendendo il protocollo più lungo di una settimana o ad altri gruppi di età, sarebbe possibile studiare gli effetti dell'esercizio su invecchiamento e varie malattie età-correlate. Si consiglia che se un approccio esteso esercizio viene implementato, quindi almeno un giorno di riposo alla settimana deve essere aggiunto per consentire il recupero. Performance e miglioramento è stato indicato per essere maggiore nei regimi che comprendeva una giornata di recupero rispetto a quei regimi che usato consecutivi quotidiano esercizio12. Abbiamo anche, vorrei mettere in guardia contro la proroga esercizio bout lunghezze ultimi 30 min dal momento che l'assuefazione al movimento rotazionale può verificarsi dopo lunghi periodi di continuo esercitano11. Abbiamo anche osservato variazioni genetiche nella motivazione dei mosche per mantenere i loro livelli di attività su TW11. Quindi, se più lunghi periodi sono desiderati, considerare monitoraggio livelli di attività dei mosche, così come presentato da Watanabe e Riddle15,21 descrivendo loro modificazione del concetto TW. Altri fattori che potrebbero essere variati comprendono temperatura e modelli, che sono indicati per interessare anche fly movimenti26,27di sonno-risveglio.
C'è una pletora di analisi disponibili durante e dopo il completamento del protocollo per affrontare gli effetti dell'esercizio a livello fisiologico, comportamentale e molecolare, nonché il potenziale per svelare effetti epigenetici di esercizio. Ulteriori saggi metabolici (per esempio, glucosio, glicogeno e proteine), le prestazioni cardiache e risposta infiammatoria misure possono essere utilizzati per esplorare ulteriormente l'esercizio di effetto ha su volare fisiologia e corpo composizione12,14 ,24,28. Vari cambiamenti comportamentali associati ad induzione di esercizio, quali i cambiamenti nel comportamento, attività locomotrice e sonno, di alimentazione possono anche essere misurati utilizzando strumenti come il CAFE dosaggio29 o l'attività di monitoraggio dispositivi12,15 ,30. Cambiamenti nell'espressione genica e respirazione cellulare attribuito per esercitare possono essere quantificate anche utilizzando metodi come qRT-PCR11 e respirometry31. Infine, Drosophila hanno preziose risorse genetiche disponibili, come il pannello di riferimento di genetica della drosofila 2 e la risorsa di popolazione sintetica di Drosophila che forniscono ai ricercatori la piattaforma per eseguire studi di genetica quantitativa25,32. Questi strumenti consentono a esperimenti di mappatura, come mappatura del Genome-Wide Association Studies e Quantitative Trait Loci, per identificare loci candidati associati di dieta ed esercizio fisico.
Studi completati utilizzando il TreadWheel ha dimostrato che, in media, esercizio diminuisce il peso corporeo, accumulo totale dei trigliceridi e glicogeno, mentre aumentando il contenuto di proteine e arrampicata prestazioni11. Ulteriormente, ci erano risposte variabile all'esercizio fisico tra i sessi e genotipi per peso corporeo, così come i trigliceridi, proteina, glicogeno, glucosio e attività livelli11,15. Mentre la variabilità della risposta all'esercizio fisico e dieta tra genotipi e sesso può essere difficile da interpretare e, a volte, controintuitivo, essa riflette le fonti di variazione reale biologica osservata nelle popolazioni naturali. Come ci sforziamo di capire la diversità dei fattori sottostanti che contribuiscono ai tassi alti di MetS, strumenti che facilitano la districante il ruolo relativo dei vari fattori che contribuiscono testando questi fattori in organismi modello sarà fondamentali per la nostra capacità per sviluppare interventi di prevenzione e trattamento personalizzati. Per valutare appieno l'efficacia dell'esercizio, ciascuno di questi fattori e come interagiscono fra loro deve essere considerato quando lo svolgimento di esperimenti e la formulazione di conclusioni.
La TW, come maggior parte delle altre macchine esercizio volare, è limitata nella sua capacità di quantificare volare. Recentemente, Watanabe e Riddle ha sviluppato il rotante esercizio quantificazione sistema (Rich), un backbone TW modificato con un'attività di monitoraggio unità (LAM25H) dal sistema di monitoraggio della drosofila serie15,21. Come la TW, questo sistema utilizza il moto rotatorio per indurre delicatamente esercizio mentre usando il braccio LAM25H per monitorare e quantificare le attività di volare, ma contiene un minor numero di flaconcini (32 fiale) rispetto al TW15. Per gli studi di esercizio ad alta velocità, se la quantificazione di attività non è necessaria o desiderata, la TW consente un maggior numero di campione. Il design TW potrebbe essere modificato anche dalla sua attuale forma per ospitare un maggior numero di flaconcini. Questo sistema, insieme ad altri metodi di esercizio esistenti, ha contribuito a stabilire che l'esercizio non solo è realizzabile in Drosophila ma possa anche essere studiata per determinare l'effetto di attività fisica su una varietà di risposte fisiologiche e molecolari 11,12,15. Così, la TW, come un metodo provato di indurre la ginnastica dolce in mosche, utilizzabile per una grande varietà di domande biologiche della sonda.

Infanzia e adulti obesità stanno crescendo le epidemie nelle culture che consumano diete ad alto apporto caloriche e rimangano inattivo per lunghi periodi di tempo, che può portare a gravi conseguenze a lungo termine, tra cui l'insulino-resistenza, infiammazione cronica e artrosi 1 , 2 , 3 , 4. la prevalenza di questi disordini continua ad aumentare a causa dello squilibrio crescente apporto calorico e della spesa attribuita a elevato consumo di grassi e zuccheri e una vita prevalentemente sedentaria5. Corrispondentemente, questo squilibrio di energia ha portato ad un aumento dei casi di diabete mellito di tipo 2 (T2DM) e malattia cardiovascolare (CVD)5. Gli individui sono ad un elevato rischio di sviluppare entrambi i disordini se essi sono stati diagnosticati con disordine di sindrome metabolica (MetS), i cui sintomi includono l'obesità addominale e dislipidemia2. MetS è modellato da complesse interazioni tra genotipo e vari fattori ambientali, come la dieta ed esercizio6. Così, per ottenere una piena comprensione dei meccanismi di fondo di questa complessa malattia, tutti questi fattori devono essere considerati.
Quando si tratta di contrastare MetS, i medici raccomandano prima che subiscono cambiamenti di stile di vita che includono il consumo di una dieta sana, equilibrata e attività fisica2,7,8. Poiché i farmaci efficaci sono limitati e chirurgia di bypass gastrico è costosa e richiede un monitoraggio permanente del medico, intervento farmacologico e chirurgico è consigliato solo per i casi gravi e solo in combinazione con questi cambiamenti di stile di vita3 ,7,8. Mentre gli interventi di stile di vita, come esercizio fisico e dieta, è in grado di produrre e mantenere a lungo termine obiettivi di perdita di peso, o meno queste misure correttive completamente possono migliorare gli effetti negativi associati con MetS ha bisogno di ulteriore studio7, 8.
Modelli di mouse sono stati usati per esaminare gli effetti dell'esercizio su malattie metaboliche per anni; Tuttavia, l'introduzione di esercizio per volare ricerca il MetS è un relativamente recente endeavor9,10,11,12. Mosche forniscono il veicolo perfetto per studiare esercizio in un ambiente di laboratorio controllato, poiché essi sono facilmente manipolabili, hanno una durata breve, sono poco costoso da mantenere e vie metaboliche legate all'energia sono altamente conservati tra della drosofila e gli esseri umani13. D. melanogaster genomi sono ben caratterizzati, e c'è una ricchezza di strumenti di genetica disponibile per l'utilizzo in Drosophila che può fornire la comprensione in diversi genotipi e interazioni genotipo-di-ambiente che potrebbero modulare la effetto dell'esercizio sulla salute organismal14.
Attuali metodi di esercizio Drosophila richiamano tendenza della Mosca geotassi innata, negativo, l'istinto comportamentale a salire verso l'alto, per stimolare la scalata in adulti nell'ambito della loro recinzioni11,12,15 . La Power Tower, un metodo per stimolare esercizio in mosche, sistematicamente genera i recinti volare in verticale e poi cade loro indietro la superficie del banco, bussare efficacemente le mosche sul fondo del flaconcino, inducendo così loro istintuale geotassi negativa 12 , 16. esperimenti condotti utilizzando questa macchina ha mostrato che l'esercizio è un potente fattore protettivo contro molte malattie relative all'età, compreso CVD e T2DM e promuove l'invecchiamento sano12,17,18 . In particolare, hanno dimostrato che esercizio può ridurre l'insorgenza di declino senile mobilità in mosche e migliorare più sintomi relativi all'età, come prestazione cardiaca e lo stress risposta17,18. Tuttavia, controllo vola mai posizionato sulla Torre ha mostrata punteggi più elevati arrampicate rispetto quelli che avvertono la macchina, suggerendo che la forza delle gocce ripetitive può essere ferendo le mosche e che interessano la mobilità12. Questo suggerisce che un metodo alternativo di indurre esercizio che è meno forte ed evita che causa trauma fisico sarebbe un utile metodo complementare per la Power Tower protocollo16.
Per indurre delicatamente esercizio in Drosophila, abbiamo sviluppato una macchina di esercizio chiamata il TreadWheel (Figura 1). Il TreadWheel di (d'ora in poi abbreviato come TW) movimento rotatorio innesca la tendenza innata, negativo geotassi dei mosche ridefinendo costantemente alto gravitazionale delle fiale, che, a sua volta, stimola arrampicata nelle mosche. A differenza di altri metodi, il movimento di rotazione dei TW è intrinsecamente dolce, che riduce al minimo il numero di ulteriori fattori di stress che possono sorgere e influenzare i risultati. Così, la macchina fornisce i mezzi per indurre esercizio in gran numero di mosche senza indurre lo stress, che permetterà ai ricercatori di studiare gli effetti dell'esercizio su salute metabolica (Figura 2), invecchiamento, sonno e molti altri argomenti11.
Il nostro metodo segue un piramidale inverso, protocollo di allenamento intervallo, che in gran parte incorpora aspetti dell'intervallo aerobico (AIT) di formazione con qualche resistenza di addestramento di esercizio. Il regime standard di AIT è alterato in questo protocollo per aumentare gradualmente la durata di ciascun intervallo su un periodo di cinque giorni per promuovere la resistenza. AIT è stato particolarmente utile nel prevenire MetS rispetto a altri metodi di intervento ed era più efficace nell'inversione comuni fattori di rischio di sindrome metabolica rispetto continuo esercizio moderato19,20. Tuttavia, uno svantaggio di TW rispetto la Power Tower è che mosche habituate più rapidamente per il movimento di rotazione, così variazione nella tendenza innata a habituate tra le mosche può complicare l'interpretazione dei vantaggi di esercizio. 11 una soluzione elegante per questa limitazione è descritta da Watanabe e Riddle15 e loro complementari articolo21.

<table><tbody><tr><td>&lt;strong&gt;Materials for TreadWheel Construction:&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Heavy Duty Vibration-Damping leveling Mount</td><td>McMaster-Carr</td><td>60855K71</td><td>Quantity: 4</td></tr><tr><td>Stainless Steel Ball Bearing</td><td>McMaster-Carr</td><td>57155K306</td><td>Quantity: 8</td></tr><tr><td>Plug-in Voltage Transformer (500MA, 120VAC input, 24 VAC output)</td><td>McMaster-Carr</td><td>70235K16</td><td>Quantity: 1</td></tr><tr><td>Compact Square-Face DC Gear motor</td><td>McMaster-Carr</td><td>6409K23</td><td>Quantity: 1</td></tr><tr><td>Tool Holder (clamps)</td><td>McMaster-Carr</td><td>1723A22</td><td>Quantity: 5 (10x)</td></tr><tr><td>12L14 Carbon Steel Tight-Tolerance Rod</td><td>McMaster-Carr</td><td>5227T24</td><td>Quantity: 1</td></tr><tr><td>Set Screw Shaft Collar</td><td>McMaster-Carr</td><td>6432K13</td><td>Quantity: 8</td></tr><tr><td>Round-Belt Pulley</td><td>McMaster-Carr</td><td>6284K51</td><td>Quantity: 5</td></tr><tr><td>Dart Controls &amp;ndash; 25 Max RPM, Electric AC DC Motor</td><td>McMaster-Carr</td><td>13DV 1A</td><td>Quantity: 1</td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Materials for Fly Maintenace and Husbandry&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>6 oz Square Bottom Bottles (polypropylene)</td><td>Genesee Scientific</td><td>32-130</td><td>Quantity: 1</td></tr><tr><td>35x10mm Petri Dishes</td><td>VWR</td><td>82050-536</td><td>Quantity: 1</td></tr><tr><td>Narrow Drosophila vials</td><td>Genesee Scientific</td><td>32-116</td><td>Quantity: 1</td></tr><tr><td>Flystuff Flypad</td><td>Genesee Scientific</td><td>59-114</td><td>Quantity: 1</td></tr><tr><td>Blowgun, Mini</td><td>Genesee Scientific</td><td>54-104</td><td>Quantity: 1</td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Materials for RING-like Assay:&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ImageJ software</td><td>NIH</td><td>https://imagej.nih.gov/ij/</td><td>Quantity: 1</td></tr><tr><td>1 cM graph paper or drawn grid (at least 20 cM by 30 cM)</td><td>various</td><td></td><td>Quantity: 1</td></tr><tr><td>digital camera with timer or smart phone with camera timer app</td><td>various</td><td></td><td>Quantity: 1</td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Materials for Triglyceride Assay:&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dewar Flask</td><td>VWR</td><td>14200-960</td><td>Quantity: 1</td></tr><tr><td>Serum Triglyceride Determination Kit</td><td>Sigma Aldrich</td><td>TRO100</td><td>Quantity: 1</td></tr><tr><td>Cordless Pestle Motor</td><td>VWR</td><td>47747-370</td><td>Quantity: 1</td></tr><tr><td>Pestles</td><td>VWR</td><td>47747-358</td><td>Quantity: 1</td></tr></tbody></table>

the treadwheel: interval training protocol for gently induced exercise in drosophila melanogaster

L'incidenza di malattie metaboliche complesse è aumentato a seguito di una diffusa transizione verso stili di vita di apporto calorico aumentato e livelli di attività abbassata. Queste malattie multifattoriali derivano da una combinazione di fattori genetici, ambientali e comportamentali. Una tale malattia complessa è la sindrome metabolica (MetS), che è un gruppo di disordini metabolici, tra cui l'ipertensione, l'iperglicemia e l'obesità addominale. Esercizio e intervento dietetico sono i trattamenti primari raccomandati dai medici per ridurre l'obesità e le sue malattie metaboliche successive. Intervento di esercizio, in particolare aerobica interval training, stimola i cambiamenti favorevoli nei comuni fattori di rischio per diabete mellito di tipo 2 (T2DM), malattia cardiovascolare (CVD) e altre condizioni. Con l'afflusso delle prove che descrive l'esercizio di effetto terapeutico ha sulla salute metabolica, che istituisce un sistema di modelli di esercitano in una regolazione controllata fornisce uno strumento prezioso per valutare gli effetti dell'esercizio in un contesto sperimentale. Drosophila melanogaster è un grande strumento per indagare i cambiamenti fisiologici e molecolari che derivano dall'intervento di esercizio. Le mosche hanno durate della vita breve e i meccanismi simili di metabolizzare le sostanze nutrienti rispetto agli esseri umani. Per indurre l'esercizio in Drosophila, abbiamo sviluppato una macchina chiamata il TreadWheel, che utilizza geotassi negativa, innata tendenza la Mosca a delicatamente indurre arrampicata. Questo consente ai ricercatori di effettuare esperimenti su larghe coorti di mosche geneticamente vari per comprendere meglio le interazioni genotipo-di-ambiente sottostante gli effetti dell'esercizio su salute metabolica.

Siamo particolarmente interessati a individuare i fattori che contribuiscono alla salute nel complesso metabolica di un individuo. Si è constatato in precedenza che interazioni genotipo-di-dieta contribuiscano sostanzialmente alla variazione di livello di popolazione in tratti metabolici14. Ciò significa che ciascun genotipo risponde alle differenze ambientali in un modo unico e complesso. Per estendere il nostro lavoro sugli effetti del genotipo di ambiente per includere l'esercizio fisico, abbiamo sviluppato il TreadWheel, che è in grado di esporre i grandi numeri di genotipi di intervallo aerobico (AIT) di formazione in un modo ad alta velocità.
Per stabilire se l'esercizio su TW influenzata tratti metabolici, abbiamo misurato accumulo dei trigliceridi in Oregon-R (OreR) e y1w1 mosche, comune wildtype (Figura 2B – C) e quei valori contro le mosche normalizzati concentrazione di proteine, come inizialmente riferito a Mendez et al. 11. abbiamo analizzato i dati di analisi multivariata della varianza (MANOVA) pari al genotipo, sesso, esercitare il trattamento (e le loro interazioni), e gli effetti di blocco sperimentale come tempo replicati e cibo fiala e scoperto che c'era un significativo l'interazione genotipo-di-esercizio (p = 0,0017) che interessano accumulo dei trigliceridi. C'era un effetto significativo di dimorfismo sessuale tra maschi e femmine, con i maschi memorizzazione più trigliceridi rispetto alle femmine (p < 0.0001). Abbiamo visto che nelle femmine, esercitati mosche erano significativamente più bassi livelli del trigliceride rispetto ai loro omologhi inoptati (Figura 2B, p < 0,0001). Nei maschi, mentre la diminuzione nell'accumulo dei trigliceridi osservata in Oregon-R esercitato mosche (rispetto ai comandi) non era statisticamente significativa, una differenza significativa nell'accumulo dei trigliceridi è stata osservata fra le due righe separate (Figura 2C, p < 0,0001). Notare che, mentre la standardizzazione della concentrazione di trigliceridi rispetto alla concentrazione di proteina fornisce insight sul corpo nel complesso Vola rapporti di composizione, può fornire anche confronto di concentrazione del trigliceride o proteina diretta tra i diversi gruppi di mosche informazioni specifiche sugli effetti dell'esercizio su questi fenotipi individualmente.
Poiché le variabili come esercizio adulto, sesso, e genotipo sono mostrato di influenzare l'accumulo dei trigliceridi, ci si aspettava che questi fattori anche altri fenotipi di impatto e interagiscono con la dieta. Abbiamo raccolto le larve da un rappresentante wildtype Drosophila genetica riferimento pannello riga (DGRP 153)25 su o un alto contenuto di grassi o normale dieta ed esercizio indotta in mosche adulte per una settimana (Figura 2A). Successivamente, abbiamo effettuato un'analisi di anello-come geotassi negativa per misurare la capacità di arrampicata. Il saggio di arrampicata utilizzato ha differito da un test standard di anello; invece di un apparato di anello, fiale con pellicola di paraffina che copre le aperture erano utilizzate per mosche domestiche durante il dosaggio. Altri aspetti del test anello originale, come il tempo tra toccando le mosche sul fondo del flaconcino e scattare la foto, sono stati mantenuti22.
Tutti i trattamenti sono stati ripetuti tre volte separate con un minimo di 59 mosche individuali a tempo replicare e trattamento. Dati sono stati analizzati dalla contabilità MANOVA per dieta, genotipo, sesso, esercitare il trattamento (e le loro interazioni), così come effetti di blocco sperimentale del tempo replicare, flaconcino di dosaggio e flaconcino saggio replicare. Abbiamo trovato che le femmine esercitate è salito significativamente superiore (p < 0,005) quando allevati sulla dieta grassa alta rispetto a tutti gli altri trattamenti femminili (Figura 2D). Per i maschi, si è visto che esercizio migliorata solo arrampicata quando i maschi sono stati sollevati sulla dieta normale, e quelli sollevati sulla dieta grassa alta ha mostrata alcun cambiamento significativo (Figura 2E). Abbiamo anche trovato significativi effetti sessualmente dimorphic (p < 0,0001) in arrampicata con maschi salire più in alto rispetto alle femmine. Il sorprendente risultato di una diminuzione in arrampicata prestazioni dopo l'allenamento per le femmine dalla riga 153 DGRP (Figura 2D) per le donne che consumano una dieta normale (p < 0,0001) è un esempio di come questo tipo di esercizio non può essere un uniformemente positivo intervento per tutti i genotipi e potrebbe dipendere da altri fattori ambientali. In Mendez et al. 11, le femmine da quattro altre linee genetiche testati per la loro performance in arrampicata dopo essendo stata sollevata su un normale dieta tutti hanno mostrata capacità di arrampicata avanzata con l'allenamento fisico. Ciò suggerisce che la risposta osservata in DGRP 153 è genotipo-specifici e non una proprietà generale del trattamento esercizio TW. La variabilità nella risposta tra sesso, dieta e gruppi di trattamento esercizio indica che ci sono interazioni significative di sesso di dieta e di esercizio che colpisce la capacità di arrampicata della linea (p < 0.0001).
Presi insieme, i risultati indicano che l'impatto dell'esercizio sulla salute metabolica di una mosca adulta può essere una funzione del suo sesso, genotipo e dieta larvale. La variazione fenotipica osservata in risposta al genotipo, le variabili di ambiente (ad es., dieta ed esercizio fisico) e il sesso è stato osservato anche in altri studi11,12,14,15. Così, la TW e Drosophila può essere una strategia potente per delucidare i fattori genetici e ambientali che modella la salute metabolica.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57788/57788fig1.jpg"> Figura 1 : The TreadWheel esercizio macchina. (A) la macchina contiene 48 fiale e ha una funzione di velocità regolabile. Qui gli esperimenti sono stati eseguiti a 4 giri. (B) alimenti singoli flaconi contenenti le mosche sperimentale sono andate a ruba in staffe attaccati ad un asse rotante. Cibo e spina (C) la distanza tra flacone era 6 cm per esercizio flaconcini e 1 cm per controllo fiale. Le fiale sono stati poi collocate sulla macchina per esercizio. Regime di (D) l'esercizio di piramide inversa di 5 giorni è stato utilizzato per esercitare le mosche adulte. Cinque minuti di ogni giorno, un ulteriore è stato aggiunto a uno dei periodi di esercizio a rampa di intensità dell'esercizio fisico in modo incrementale, quali modelli di resistenza, intervallo di allenamento. Questa figura è stata modificata da Mendez et al. 11. <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/57788/57788fig1large.jpg" target="_blank">Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57788/57788fig2.jpg"> Figura 2 : Metodi visivi e risultati rappresentativi. (A) metodi per testare la dieta larvale e adulto esercizio effetti di interazione. Larve erano sollevate sulla dieta grassa o normale alta del laboratorio e commutate al cibo normale su eclosion. Mosche adulte sono stati separati per sesso, inseriti in gruppi sperimentali ed esercitati per cinque giorni consecutivi. In seguito, un anello-come negativo geotassi arrampicata analisi è stata condotta, e mosche sono stati congelati per misurazioni del trigliceride. Sono mostrati i dati rappresentativi del trigliceride per due linee genetiche, Oregon R e y1w1 per (B) le femmine e i maschi (C). Tutte le mosche erano allevate su una dieta normale ed esercitate in età adulta. Livelli con diverse lettere sono significativamente differenti (p < 0,05) utilizzo di uno studente post hoc, t-test. Questa figura contiene un sottoinsieme dei dati trasmessi nel Mendez et al. 11. dati rappresentativi di arrampicata sono mostrati per riga 153 DGRP per (D) le femmine e i maschi (E). Ogni punto rappresenta la media performance in arrampicata di 232 o più individui attraverso tre punti temporali indipendenti. Barre di errore indicano un errore standard. <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/57788/57788fig2large.jpg" target="_blank">Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>
<img alt="Supplemental Figure 1" src="/files/ftp_upload/57788/57788supfig1.jpg"> Supplementare figura 1: la piantina dettagliata del TreadWheel. (A) diagramma della struttura morsetto doppio flaconcino utilizzato per collegare fiale alla macchina. (B) vista all'interno del sistema di rotazione unità di macchina. (C) proiezione parallela della faccia anteriore della macchina. <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/57788/57788supfig1large.jpg" target="_blank">Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>
File di codice supplementare: TreadWheel.skp <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/files/ftp_upload/57788/TreadWheel.skp" target="_blank">Per favore clicca qui per scaricare questo file.</a>

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The TreadWheel: Interval Training Protocol for Gently Induced Exercise in Drosophila melanogaster

Il TreadWheel utilizza il movimento rotatorio per indurre delicatamente esercizio in adulto Drosophila melanogaster sfruttando geotassi negativa, innata dei mosche. Per l'analisi delle interazioni tra fattori, come il genotipo, il sesso e dieta e loro effetto sui dosaggi fisiologici e molecolari ed esercizio permette di valutare la salute metabolica.

Il TreadWheel: Protocollo di allenamento intervallo per delicatamente indotto da esercizio in Drosophila melanogaster

The incidence of complex metabolic diseases has increased as a result of a widespread transition towards lifestyles of increased caloric intake and ...

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Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Genetics

The TreadWheel: Interval Training Protocol for Gently Induced Exercise in Drosophila melanogaster

11.7K Views.  University of Alabama. Il TreadWheel utilizza il movimento rotatorio per indurre delicatamente esercizio in adulto Drosophila melanogaster sfruttando geotassi negativa, innata dei mosche. Per l'analisi delle interazioni tra fattori, come il genotipo, il sesso e dieta e loro effetto sui dosaggi fisiologici e molecolari ed esercizio permette di valutare la salute metabolica.

Video: The TreadWheel: Interval Training Protocol for Gently Induced Exercise in Drosophila melanogaster

Assaying Locomotor Activity to Study Circadian Rhythms and Sleep Parameters in Drosophila

Most life forms exhibit daily rhythms in cellular, physiological and behavioral phenomena that are driven by endogenous circadian (&equiv;24 hr) pacemakers or clocks. Malfunctions in the human circadian system are associated with numerous diseases or disorders. Much progress towards our understanding of the mechanisms underlying circadian rhythms has emerged from genetic screens whereby an easily measured behavioral rhythm is used as a read-out of clock function. Studies using Drosophila have made seminal contributions to our understanding of the cellular and biochemical bases underlying circadian rhythms. The standard circadian behavioral read-out measured in Drosophila is locomotor activity. In general, the monitoring system involves specially designed devices that can measure the locomotor movement of Drosophila. These devices are housed in environmentally controlled incubators located in a darkroom and are based on using the interruption of a beam of infrared light to record the locomotor activity of individual flies contained inside small tubes. When measured over many days, Drosophila exhibit daily cycles of activity and inactivity, a behavioral rhythm that is governed by the animal's endogenous circadian system. The overall procedure has been simplified with the advent of commercially available locomotor activity monitoring devices and the development of software programs for data analysis. We use the system from Trikinetics Inc., which is the procedure described here and is currently the most popular system used worldwide. More recently, the same monitoring devices have been used to study sleep behavior in Drosophila. Because the daily wake-sleep cycles of many flies can be measured simultaneously and only 1 to 2 weeks worth of continuous locomotor activity data is usually sufficient, this system is ideal for large-scale screens to identify Drosophila manifesting altered circadian or sleep properties.

Assaying Locomotor Activity to Study Circadian Rhythms and Sleep Parameters in Drosophila

We describe procedures for recording daily locomotor activity rhythms of Drosophila and subsequent data analysis. Locomotor activity rhythms are a reliable behavioral output of animal circadian clocks and are used as the standard readout of clock function when studying circadian mutants or examining how the environment regulates the circadian system.

Saggio attività locomotoria per studiare ritmi circadiani del sonno e parametri in Drosophila</em

Most life forms exhibit daily rhythms in cellular, physiological and behavioral phenomena that are driven by endogenous circadian (&equiv;24 hr) ...

Ricerca

Neuroscienze

Measuring Exercise Levels in Drosophila melanogaster Using the Rotating Exercise Quantification System (REQS)

Drosophila melanogaster is a new model organism for studies in exercise biology. To date, two main exercise systems, the Power Tower and the Treadwheel have been described. However, a method to measure the amount of additional animal activity induced through the exercise treatment has been lacking. The Rotating Exercise Quantification System (REQS) fills this need, providing a measure of animal activity for animals experiencing rotational exercise. This protocol details how to use the REQS to assess animal activity during rotational exercise and illustrates the type of data that can be generated. Here, we demonstrate how the REQS is used to measure sex- and strain-specific differences in exercise induced activity. The REQS can also be used to evaluate the impact of various other experimental parameters such as age, diet, or population size on exercise induced activity. In addition, it can be used to compare the efficacy of different exercise training protocols. Importantly, it provides an opportunity to standardize exercise treatments between strains, allowing the researcher to achieve equal amounts of activity between groups if needed. Thus, the REQS is a notable new resource for exercise biologists working with the Drosophila model system and complements existing exercise systems.

Measuring Exercise Levels in Drosophila melanogaster Using the Rotating Exercise Quantification System REQS

The Rotating Exercise Quantification System (REQS) can induce exercise in Drosophila melanogaster through rotation while simultaneously measuring the amount of activity performed by the animals. Here, we present a point-by-point protocol detailing how to measure activity levels of animals experiencing rotational exercise treatments using the REQS.

Misurazione dei livelli di esercizio in Drosophila melanogaster utilizzando il sistema di quantificazione esercizio rotanti (Rich)

Drosophila melanogaster is a new model organism for studies in exercise biology. To date, two main exercise systems, the Power Tower and the Treadwheel ...

Genetica

High-Resolution Video Tracking of Locomotion in Adult Drosophila Melanogaster

Flies provide an important model for studying complex behavior due to the plethora of genetic tools available to researchers in this field. Studying locomotor behavior in Drosophila melanogaster relies on the ability to be able to quantify changes in motion during or in response to a given task. For this reason, a high-resolution video tracking system, such as the one we describe in this paper, is a valuable tool for measuring locomotion in real-time. Our protocol involves the use of an initial air pulse to break the flies momentum, followed by a thirty second filming period in a square chamber. A tracking program is then used to calculate the instantaneous speed of each fly within the chamber in 10 msec increments. Analysis software then compiles this data, and outputs a variety of parameters such as average speed, max speed, time spent in motion, acceleration, etc. This protocol will discuss proper feeding and management of flies for behavioral tasks, handling flies without anesthetization or immobilization, setting up a controlled environment, and running the assay from start to finish.

The study of complex locomotor behavior in Drosophila melanogaster is dependent upon the ability to quantify changes in a given fly's movement. This article demonstrates how to do this using a high-resolution tracking system.

Monitoraggio ad alta risoluzione video di locomozione per adulti in Drosophila melanogaster

Flies provide an important model for studying complex behavior due to the plethora of genetic tools available to researchers in this field.  Studying ...

Biologia

An Affordable and Efficient "Homemade" Platform for Drosophila Behavioral Studies, and an Accompanying Protocol for Larval Mitochondrial Respirometry

The usefulness of Drosophila as a model organism for the study of human diseases, behaviors and basic biology is unquestionable. Although practical, Drosophila research lacks popularity in developing countries, possibly due to the misinformed idea that establishing a lab and performing relevant experiments with such tiny insects is difficult and requires expensive, specialized apparatuses. Here, we describe how to build an affordable flylab to quantitatively analyze a myriad of behavioral parameters in D. melanogaster, by 3D-printing many of the necessary pieces of equipment. We provide protocols to build in-house vial racks, courtship arenas, apparatuses for locomotor assays, etc., to be used for general fly maintenance and to perform behavioral experiments using adult flies and larvae. We also provide protocols on how to use more sophisticated systems, such as a high resolution oxygraph, to measure mitochondrial oxygen consumption in larval samples, and show its association with behavioral changes in the larvae upon the xenotopic expression of the mitochondrial alternative oxidase (AOX). AOX increases larval activity and mitochondrial leak respiration, and accelerates development at low temperatures, which is consistent with a thermogenic role for the enzyme. We hope these protocols will inspire researchers, especially from developing countries, to use Drosophila to easily combine behavior and mitochondrial metabolism data, which may lead to information on genes and/or environmental conditions that may also regulate human physiology and disease states.

<meta charset="utf8"></head><body>Una piattaforma "fatta in casa" economica ed efficiente per gli studi comportamentali sulla Drosophila e un protocollo di accompagnamento per la spiriometria mitoc

We provide protocols for anyone with a "maker culture" mind to start building a flylab for quantitative analysis of a myriad of behavioral parameters in Drosophila melanogaster, by 3D-printing many of the necessary pieces of equipment. We also describe a high resolution respirometry protocol using larvae to combine behavioral and mitochondrial metabolism data.

Una piattaforma "fatta in casa" economica ed efficiente per gli studi comportamentali sulla Drosophila e un protocollo di accompagnamento per la spiriometria mitocondriale larvale

The usefulness of Drosophila as a model organism for the study of human diseases, behaviors and basic biology is unquestionable. Although practical, ...

Comportamento

A Simple Technique to Assay Locomotor Activity in Drosophila

Drosophila melanogaster is an ideal model organism for studying various diseases due to its abundance of advanced genetic manipulation techniques and diverse behavioral features. Identifying behavioral deficiency in animal models is a crucial measure of disease severity, for example, in neurodegenerative diseases where patients often experience impairments in motor function. However, with the availability of various systems to track and assess motor deficits in fly models, such as drug-treated or transgenic individuals, an economical and user-friendly system for precise evaluation from multiple angles is still lacking. A method based on the AnimalTracker application programming interface (API) is developed here, which is compatible with the Fiji image processing program, to systematically evaluate the movement activities of both adult and larval individuals from recorded video, thus allowing for the analysis of their tracking behavior. This method requires only a high-definition camera and a computer peripheral hardware integration to record and analyze behavior, making it an affordable and effective approach for screening fly models with transgenic or environmental behavioral deficiencies. Examples of behavioral tests using pharmacologically treated flies are given to show how the techniques can detect behavioral changes in both adult flies and larvae in a highly repeatable manner.

A Simple Technique to Assay Locomotor Activity in Drosophila

The present protocol assesses the locomotor activity of Drosophila by tracking and analyzing the movement of flies in a hand-made arena using open-source software Fiji, compatible with plugins to segment pixels of each frame based on high-definition video recording to calculate parameters of speed, distance, etc.

Una semplice tecnica per analizzare l'attività locomotoria nella Drosophila

Drosophila melanogaster is an ideal model organism for studying various diseases due to its abundance of advanced genetic manipulation techniques and ...

Foraging Path-length Protocol for Drosophila melanogaster Larvae

The Drosophila melanogaster larval path-length phenotype is an established measure used to study the genetic and environmental contributions to behavioral variation. The larval path-length assay was developed to measure individual differences in foraging behavior that were later linked to the foraging gene. Larval path-length is an easily scored trait that facilitates the collection of large sample sizes, at minimal cost, for genetic screens. Here we provide a detailed description of the current protocol for the larval path-length assay first used by Sokolowski. The protocol details how to reproducibly handle test animals, perform the behavioral assay and analyze the data. An example of how the assay can be used to measure behavioral plasticity in response to environmental change, by manipulating feeding environment prior to performing the assay, is also provided. Finally, appropriate test design as well as environmental factors that can modify larval path-length such as food quality, developmental age and day effects are discussed.

Foraging Path-length Protocol for Drosophila melanogaster Larvae

We provide a detailed protocol for a Drosophila melanogaster foraging path-length assay. We discuss the preparation and handling of test animals, how to perform the assay and analyze the data.

Foraggiamento protocollo percorso di lunghezza per<em&gt; Drosophila melanogaster</em&gt; Le larve

The Drosophila melanogaster larval path-length phenotype is an established measure used to study the genetic and environmental contributions to behavioral ...

A Simple Way to Measure Alterations in Reward-seeking Behavior Using Drosophila melanogaster

We describe a protocol for measuring ethanol self-administration in fruit flies (Drosophila melanogaster) as a proxy for changes in reward states. We demonstrate a simple way to tap into the fly reward system, modify experiences related to natural reward, and use voluntary ethanol consumption as a measure for changes in reward states. The approach serves as a relevant tool to study the neurons and genes that play a role in experience-mediated changes of internal state. The protocol is composed of two discrete parts: exposing the flies to rewarding and nonrewarding experiences, and assaying voluntary ethanol consumption as a measure of the motivation to obtain a drug reward. The two parts can be used independently to induce the modulation of experience as an initial step for further downstream assays or as an independent two-choice feeding assay, respectively. The protocol does not require a complicated setup and can therefore be applied in any laboratory with basic fly culture tools.

A Simple Way to Measure Alterations in Reward-seeking Behavior Using Drosophila melanogaster

We describe a protocol for inducing rewarding and nonrewarding experiences in fruit flies (Drosophila melanogaster) using voluntary ethanol consumption as a measure for changes in reward states.

Un modo semplice per misurare alterazioni in ricompensa il comportamento di ricerca Utilizzando<em&gt; Drosophila melanogaster</em

We describe a protocol for measuring ethanol self-administration in fruit flies (Drosophila melanogaster) as a proxy for changes in reward states. We ...

Endurance Training Protocol and Longitudinal Performance Assays for Drosophila melanogaster

One of the most pressing problems facing modern medical researchers is the surging levels of obesity, with the consequent increase in associated disorders such as diabetes and cardiovascular disease 1-3. An important topic of research into these associated health problems involves the role of endurance exercise as a beneficial intervention.
Exercise training is an inexpensive, non-invasive intervention with several beneficial results, including reduction in excess body fat 4, increased insulin sensitivity in skeletal muscle 5, increased anti-inflammatory and antioxidative responses 6, and improved contractile capacity in cardiomyocytes 7. Low intensity exercise is known to increase mitochondrial activity and biogenesis in humans 8 and mice, with the transcriptional coactivator PGC1-&alpha; as an important intermediate 9,10. 
Despite the importance of exercise as a tool for combating several important age-related diseases, extensive longitudinal genetic studies have been impeded by the lack of an endurance training protocol for a short-lived genetic model species. The variety of genetic tools available for use with Drosophila, together with its short lifespan and inexpensive maintenance, make it an appealing model for further study of these genetic mechanisms. With this in mind we have developed a novel apparatus, known as the Power Tower, for large scale exercise-training in Drosophila melanogaster 11. The Power Tower utilizes the flies' instinctive negative geotaxis behavior to repetitively induce rapid climbing. Each time the machine lifts, then drops, the platform of flies, the flies are induced to climb. Flies continue to respond as long as the machine is in operation or until they become too fatigued to respond. Thus, the researcher can use this machine to provide simultaneous training to large numbers of age-matched and genetically identical flies. Additionally, we describe associated assays useful to track longitudinal progress of fly cohorts during training.

Endurance Training Protocol and Longitudinal Performance Assays for Drosophila melanogaster

We describe the first endurance training protocol for an important genetic model species, Drosophila melanogaster, and outline several assays to chart improvements in mobility following training.

Endurance Training protocollo e saggi prestazioni longitudinali per Drosophila melanogaster

One of the most pressing problems facing modern medical researchers is the surging levels of obesity, with the consequent increase in associated disorders ...

Fly Climbing Assay: A Method to Test General Locomotion in Drosophila melanogaster

Source: Gevedon, O., et al. <a href="https://www-jove-com.remotexs.ntu.edu.sg/video/59720/in-vivo-forward-genetic-screen-to-identify-novel-neuroprotective">In Vivo Forward Genetic Screen to Identify Novel Neuroprotective Genes in Drosophila melanogaster</a>. J. Vis. Exp. (2019).
This video describes a simple method to quantify fly locomotion and shows the climbing assay performed.&#160; The fly climbing assay is a general test of motor function which relies on a negative geotaxis response.

Saggio di arrampicata volante: un metodo per testare la locomozione generale in Drosophila melanogaster

Source: Gevedon, O., et al. In Vivo Forward Genetic Screen to Identify Novel Neuroprotective Genes in Drosophila melanogaster. J. Vis. Exp. (2019).
This ...

Il TreadWheel: Protocollo di allenamento intervallo per delicatamente indotto da esercizio in Drosophila melanogaster

Riepilogo

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Saggio attività locomotoria per studiare ritmi circadiani del sonno e parametri in Drosophila

Misurazione dei livelli di esercizio in Drosophila melanogaster utilizzando il sistema di quantificazione esercizio rotanti (Rich)

Monitoraggio ad alta risoluzione video di locomozione per adulti in Drosophila melanogaster

Una piattaforma "fatta in casa" economica ed efficiente per gli studi comportamentali sulla Drosophila e un protocollo di accompagnamento per la spiriometria mitocondriale larvale

Una piattaforma "fatta in casa" economica ed efficiente per gli studi comportamentali sulla Drosophila e un protocollo di accompagnamento per la spiriometria mitocondriale larvale

Una semplice tecnica per analizzare l'attività locomotoria nella Drosophila

Foraggiamento protocollo percorso di lunghezza per

Un modo semplice per misurare alterazioni in ricompensa il comportamento di ricerca Utilizzando

Endurance Training protocollo e saggi prestazioni longitudinali per Drosophila melanogaster

Saggio di arrampicata volante: un metodo per testare la locomozione generale in Drosophila melanogaster