We thank Rachelle Kanippayoor for her help in identifying the new wild-type strain as being of the melanogaster species. R.W.F, O.F. and A.F.S were responsible for research design; R.W.F, M.N. and O.F. performed the experiments. R.W.F, M.N., O.F. and A.F.S. analyzed the data; R.W.F., I.S.M. and A.F.S. wrote the manuscript. 
This work was supported by PSC-CUNY research awards, jointly funded by The Professional Staff Congress and The City University of New York to A.F.S.; by internal funding from Western University to A.F.S. and I.S.M.; by a training support from the National Alliance for Hispanic Health&#8217;s Alliance/Merck Ciencia (Science) Hispanic Scholars Program and a University Fellowship from the Yale Graduate School of Arts and Sciences to R.W.F.

1. Matériel et réactifs créés interne (Voir liste des matières pour les autres) <ol><li> Préparer un Drosophila appareils d&#39;anesthésie froid pour effectuer des travaux à la mouche. <ol><li> Coupez une feuille de polyéthylène poreux pour couvrir une petite boîte en plastique (12,7 cm de long, 10,2 cm de large), typiquement le couvercle supérieur de la boîte de pointes de pipette (12,7 cm de long, 10,2 cm de large, 3,8 cm de profondeur). </li><li> Remplissez la boîte avec de la glace pilée, couvrir avec la feuille de polyéthylène poreux. </li></ol></li><li> Préparer un appareil T-labyrinthe; adapter l&#39;appareil décrit précédemment en détail 28-31. </li><li> Préparer un aspirateur à la mouche comme décrit 32. </li><li> Préparer un appareil de réponse d&#39;phototaxie vol pour déplacer dans et hors des flacons d&#39;essai sans contrainte: <ol><li> Utilisation d&#39;un appareil à contre-courant, comme décrit par 29,33. </li></ol></li></ol> NOTE: Le labyrinthe en T peut également être utilisé à d&#39;autres fins, tel que décrit par 28. <ol start="5"><li> Assurer homconditions d&#39;éclairage ogeneous: effectuer l&#39;expérience sur un banc recouvert d&#39;une couverture de banc blanc, et en face d&#39;un tableau blanc. NOTE: Pour ces expériences, les souches de mouches Drosophila melanogaster utilisés étaient les types sauvages: Canton-S, l&#39;Oregon et Samarkand vole de nos stocks de laboratoire 34; Elwood mouches ont été recueillies à l&#39;automne 2011 dans le quartier Elwood de Huntington, à Long Island, New York, USA. </li></ol> 2. Préparer les mouches avant l&#39;expérience 1-2 jours avant d&#39;effectuer l&#39;expérience: <ol><li> Maintenir les mouches sur le milieu de semoule de maïs-agar-mélasse-levure norme à 25 ° C sur un cycle de 12 heures de lumière / obscurité. </li><li> Recueillir les répondeurs mouches sous anesthésie froides 1-2 jours avant d&#39;effectuer l&#39;expérience <ol><li> Transférer les mouches des bouteilles dans lesquelles ils ont été soulevés dans 50 ml tubes Falcon en utilisant un entonnoir. </li><li> Placez le tube Falcon avec les mouches sous le niveau de la glace, dans unisolé seau à glace. </li><li> Placez l&#39;appareil d&#39;anesthésie froid avec de la glace pilée à -4 ° C pour se détendre. </li><li> Attendez 5 min pour les mouches d&#39;entrer dans le coma de refroidissement. </li><li> Transférer les mouches sur la feuille de polyethylene poreux de l&#39;appareil d&#39;anesthésie froid. </li><li> Recueillir les répondeurs mouches sur l&#39;appareil d&#39;anesthésie froid. A RT, sous un stéréomicroscope, séparer vieille 3-7 jours mâle de mouches femelles et maintenir ces mouches dans des groupes de 40. </li></ol></li><li> Recueillir vol d&#39;émetteur 1-2 jours avant d&#39;effectuer l&#39;expérience. <ol><li> Recueillir doucement Canton-S mixité vole de leurs bouteilles, en utilisant un aspirateur à bouche, le contrôle de leur nombre. </li><li> Maintenir ces mouches dans le groupe de 60 à 100, car ils seront les émetteurs. </li><li> Préparer autant d&#39;échantillons d&#39;émetteurs comme points de données nécessaires. </li></ol></li><li> Prévoyez au moins une nuit de récupération après la collecte des intervenants et des émetteurs, afin de minimiser tout effet de confusion de l&#39;anesthésie froideet la collecte bouche d&#39;aspiration sur le comportement. </li><li> Ouvrez le sac de flacons d&#39;essai, pour permettre l&#39;air en plastique odeur fade dans le sac pour être remplacé par de l&#39;air frais, au moins un jour avant l&#39;expérience. </li></ol> 2 h avant d&#39;effectuer l&#39;expérience: <ol start="6"><li> Se assurer que la température dans la salle où l&#39;expérience est réalisée est de l&#39;ordre de 23 à 25 ° C, même avec la lumière et de l&#39;humidité supérieure à 30%. </li><li> Transférez les intervenants et les mouches émetteurs de fruits dans des flacons de produits alimentaires frais pour se assurer que ces mouches ne sont pas affamés. </li><li> Laissez les mouches des fruits se adapter à l&#39;environnement pendant 2 heures, sur le banc sur lequel l&#39;expérience sera effectuée. </li></ol> 3. Effectuer l&#39;expérience évitement social <ol><li> Effectuez chaque expérience au même moment de la journée, dans une gamme de 3-4 heures dans l&#39;après-midi entre le temps Zeitgeber ZT5 et ZT9. </li><li> Placez le labyrinthe en T sur le pavé de martèlement, et serrer la pince à vis de sorte til est ascenseur stable. </li><li> Transfert vol d&#39;intervenants dans un flacon de test frais. Aligner cette fiole contenant vol d&#39;intervenants sur la partie supérieure de la T-labyrinthe. </li><li> Inclinez l&#39;appareil T-labyrinthe et appuyez sur le tapis battait si les mouches des fruits tombent dans l&#39;ascenseur. </li><li> Déplacez la partie supérieure de l&#39;ascenseur pour descendre de sorte que les mouches sont entre la partie supérieure et inférieure de la T-labyrinthe, mais attention à garder l&#39;ascenseur au-dessus du point de choix - pour empêcher les mouches de se échapper. </li><li> Obtenir flacons avec DSO (voir la section 5 pour générer DSO sans flacons qui étaient auparavant occupés par les mouches). <ol><li> Alors que les vol d&#39;intervenants se adaptent à ce nouvel environnement, placer vol d&#39;émetteur dans un flacon de test. </li><li> Placez un morceau de coton pour fermer le flacon de sorte que les mouches des fruits ne échappent pas. </li><li> Mécaniquement agiter cette fiole sur un mini-tourbillon comme suit: vortex pendant 15 secondes, retirer la cuvette du vortex pendant 5 sec. Répétez trois fois pour un total de 55 sec. </li><li> Remove vol d&#39;émetteur du flacon frais - en transférant dans un flacon alimentaire - et rapidement placer cette fiole remplie DSO dans l&#39;une des deux côtés de l&#39;appareil T-labyrinthe. </li><li> Alternez le côté de placement pour le flacon DSO pourvoir dans chaque nouvelle course. </li></ol></li><li> Placer un flacon d&#39;essai frais de l&#39;autre côté du labyrinthe en T. </li><li> Apportez l&#39;ascenseur complètement en bas, de sorte que les mouches des fruits peuvent choisir entre le flacon de test fraîche et le flacon de test avec DSO, et démarrer la minuterie. </li><li> Laissez les mouches choisir entre le flacon et le flacon frais DSO, pendant 1 min, à moins d&#39;indication contraire. </li><li> Après 1 min, déplacer l&#39;ascenseur jusqu&#39;à séparer les mouches dans le flacon frais, DSO flacon, et ceux qui sont coincés dans l&#39;ascenseur. </li><li> Comptez le nombre de mouches dans chaque flacon, et dans l&#39;ascenseur. </li><li> Répétez cette opération pour chaque génotype / état. </li></ol> 4. Analyser les données évitement social <ol><li> Comptez le nombre de mouches des fruits dans chaque flacon pour chaque genotype, et transférer les données vers un tableur. </li><li> L&#39;utilisation d&#39;un tableur, calculer l&#39;indice de performance (PI) pour chaque génotype en soustrayant le nombre de mouches dans le flacon DSO à partir du nombre de mouches dans le flacon DSO-libre, puis en divisant par le nombre total de mouches. </li><li> Comparez les moyens de le PiS l&#39;aide du logiciel d&#39;analyse statistique pour l&#39;analyse des résultats. <ol><li> Idéalement, préparer 2-3 répétitions internes pour chaque expérience, et trois répétitions indépendantes, effectuées à des jours différents, avec différents bouteilles ou traverse 30. </li><li> Utilisez la distribution des tests statistiques gaussiennes, que les données suivent une distribution normale. </li><li> Lorsque l&#39;essai d&#39;un effet (ce est à dire, la densité - Figure 2), utiliser un ANOVA à une voie, avec post-test de comparaison multiple (colonne par colonne), ou un t-test simple de comparer chaque résultat à un contrôle. </li><li> Lorsque expériences de groupe sont effectuées, tester les deux conditions et les sexes (les flacons vides, a souligné und mouches hors contrainte; et l&#39;effet de genre - Figure 1), en utilisant une ANOVA à deux voies. </li></ol></li></ol> 5. Générer flacons précédemment occupé par mouches atones - Effectuer Au lieu de 03.05 à 03.06 <ol><li> Utilisez phototaxie pour préparer flacons occupés par des mouches qui ne ont pas été sollicitées, comme témoin. </li><li> Transférez les mouches dans un flacon de test, et enclenchez dans l&#39;appareil à contre-courant, avec des flacons frais vides dans la position opposée. </li><li> Poser l&#39;appareil horizontalement avec le flacon distale directement en face d&#39;une lumière blanche froide fluorescente 15 W, et couvrir d&#39;un drap noir. </li><li> Laissez les mouches se déplacent doucement dans le flacon frais. Cela peut prendre plusieurs minutes. Une fois que la plupart des mouches marchent vers la lumière dans le flacon distale, démarrer le minuteur pendant 1 min. </li><li> Retirez délicatement le tissu noir, changer l&#39;emplacement de la lumière, de récupérer avec le drap noir, et permettent vol de quitter le flacon de test. </li><li> A cette époque, initiate l&#39;expérience de choix comme dans 3.2 à 3.5. Passer 3.6 et 3.7. </li><li> Déplacer le curseur de l&#39;appareil, afin de séparer les mouches qui a quitté le flacon de test à partir de l&#39;autre côté. </li><li> Utilisez le flacon de test libéré dans le labyrinthe en T tout de suite pour l&#39;expérimentation des choix, comme dans 3.7. </li></ol>

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The authors declare that they have no competing financial interests.

Ce protocole décrit une procédure détaillée pour le test d&#39;évitement social. Canton-S sera seulement d&#39;éviter un flacon dans lequel vole ont déjà été sollicitées mécaniquement, et que le sexe et le nombre d&#39;intervenants ne affecte pas que la performance d&#39;évitement social. Cependant, fond génétique des intervenants a une influence majeure. Voici plusieurs étapes critiques pour réaliser cette expérience avec succès: 1) transférer toujours les mouches 2 h avant l&#39;expérience et assurez-vous de ne pas perturber leur environnement; 2) faire l&#39;expérience toujours au même moment de la journée, idéalement entre le temps Zeitgeber ZT5 (heures après l&#39;apparition de la lumière) et de réduire ZT9 variation de la performance liée à rythme circadien et ainsi possible variation des niveaux de locomotion et d&#39;activité; 3) noter les conditions de température et d&#39;humidité lors de l&#39;exécution de l&#39;expérience; une température d&#39;environ 23-25 ​​° C et une humidité supérieure à 30% sont les meilleures; 4) veiller à ne pas disturb l&#39;appareil T-labyrinthe pendant le temps mouches de décision; 5), veillez à aérer les flacons frais au moins 24 heures avant de les utiliser; et 6) au cours de l&#39;expérience, il est toujours important de modifier l&#39;emplacement de la fiole de test dans le dispositif en labyrinthe en T pour éviter la préférence à un côté de la T-labyrinthe. Bien que les tests supplémentaires doivent être effectuées pour confirmer cela, de façon empirique, il semble que l&#39;ASM échappe à la «stress» flacon en moins de 5 min. En revanche, il semble que les mouches sont capables d&#39;émettre le DSO jusqu&#39;à 1 heure après avoir été souligné. Il ya plusieurs considérations qui doivent être prises en compte dans le protocole. La corrélation entre l&#39;âge de la mouche et social évitement est actuellement inconnu. Par conséquent, il est recommandé de réaliser l&#39;expérience avec pas plus de deux semaines vieilles mouches à 25 ° C, que les changements de comportement liés au vieillissement ne apparaissent pas avant que 37 ans. Mouches accouplées (sexes mixtes logés) sont collectées pour l&#39;expérience queon ne sait pas comment le DSO émission est affectée par l&#39;état d&#39;accouplement des mouches. Bien que la sortie comportementale de DSO évitement ne est pas affectée par le sexe, les circuits du cerveau sous-jacent peut être un dimorphisme sexuel, et il est conseillé de ne pas mélanger les mouches mâles et femelles. Enfin, une réduction du nombre de mouches émetteur conduit à une diminution de l&#39;évitement, probablement liée à une diminution totale DSO émise. Cependant, assez DSO est toujours présent avec seulement 10 mouches, conduisant à un évitement robuste et reproductible. Réduction du temps de décision des intervenants mouches de 60 sec à 30 sec, se traduit également par une réduction de la PI pour Canton-S vole. Ceci peut être utilisé comme un outil pour faire de la discrimination ou des mutations dans des conditions qui vole de meilleurs résultats que Canton-S. Ainsi, dans son état actuel, le test d&#39;évitement social peut être utilisé comme un paradigme comportemental pour tester l&#39;effet des gènes et de l&#39;environnement sur DSO évitement. Après avoir maîtrisé la technique, les prochaines étapes peuvent être prisesd&#39;intégrer le temps de décision idéale pour DSO évitement et le nombre exact de vol d&#39;émetteurs qui doivent être utilisés pour obtenir le test d&#39;évitement social pour fonctionner de manière optimale. Une limitation qui se poserait dans des mutants de test peut se produire si les intervenants ont une mauvaise locomotion. Déterminer expérimentalement un temps plus long de choix pour ces mutants peuvent contrer cette mauvaise locomotion. De même, les mouches avec déficiences sensorielles qui pourraient empêcher la détection de CO 2 - une composante majeure de l&#39;ASM ou l&#39;autre composante inconnue de l&#39;ASM ne seraient pas en mesure d&#39;être testé dans cet essai. Il ne existe actuellement aucun autre test permettant la quantification de cette réponse. Bien qu&#39;il ait été démontré que le CO 2 est un composant de l&#39;ASM 19, d&#39;autres composants du signal, ainsi que des neurotransmetteurs impliqués dans le choix fait pour éviter d&#39;autres sujets stressés ne ont pas encore été déterminées. De même, le mécanisme qui entraîne le flies pour émettre l&#39;ASM ne est pas connu. Ce dosage peut actuellement être utilisé comme un test de diagnostic paillasse supplémentaire de détermination du profil comportemental sociale globale et d&#39;un mutant ou d&#39;un traitement de l&#39;environnement. Par exemple, on peut comparer et contraster la quantification de l&#39;espace social, ce est à dire, la distance du plus proche voisin 23, à l&#39;évitement social de mouches stressées. Les deux comportements nécessitent de répondre à la présence d&#39;autres personnes, et de prendre la décision de se rapprocher ou de les éviter. Ce sont des moyens très simples mais puissants pour disséquer les circuits du cerveau et de neurotransmetteurs impliqués. Ces paradigmes comportementaux ont également un énorme potentiel d&#39;être utilisé à des fins de dépistage.

L&#39;objectif de cette méthode est de quantifier facilement un nouvel aspect du comportement social simple dans Drosophila melanogaster, indépendant de la cour et de l&#39;agression. Les interactions sociales sont essentielles pour le bon développement et la santé des individus au sein d&#39;une société, ainsi que la fonctionnalité d&#39;un groupe social dans son ensemble. La grande complexité de ces interactions nécessite de grandes tailles d&#39;échantillon et un système qui permet une simplification du comportement que les bases génétiques et neuronales du comportement social sont encore mal compris. Drosophila melanogaster est un modèle génétique puissant qui peut être utilisé pour identifier la génétique et bases neurales des interactions sociales. En effet, D. melanogaster a un répertoire de comportements sociaux complexes et des mesures directes de socialisation ont déjà été fait 1-7. Cependant, la plupart de ces efforts ont été axés sur les comportements sociaux relativement complexes, comme agresinteractions sive 3,6, divers aspects de la cour 3,8-12, et comment l&#39;expérience sociale affecte d&#39;autres comportements tels que l&#39;apprentissage, ou rythme circadien 13-17. En outre, beaucoup de ces tests reposent sur l&#39;analyse des modèles d&#39;interaction complexes des groupes de mouches, par suivi vidéo et de logiciels pour analyser l&#39;abondance résultant des données. Ces analyses sont inestimables, et ouvrent de nouvelles perspectives importantes telles que la dynamique des interactions mouche mouche dans les groupes 7. Une limitation, cependant, est l&#39;inaccessibilité de ces tests à la communauté en général, et de la connaissance limitée des mécanismes sous-jacents reconnaissance des autres. En d&#39;autres termes, la base de l&#39;émission d&#39;un signal par un individu et sa reconnaissance par une autre est encore mal comprise 18. En revanche, vole également présenter un comportement simple, évitement social, où les individus se éloignent d&#39;un signal émis par les mouches stressées: D. melanogaster stress odorante ou DSO 19. Dans un dosage à haut débit, ce comportement peut être quantifiée comme l&#39;évitement d&#39;un signal de stress émis par d&#39;autres mouches, ou évitement social 19. Les mouches sont placées dans un appareil T-labyrinthe et ont le choix pour éviter un flacon contenant DSO. En utilisant ce dosage, CO 2 se est révélée être une composante de l&#39;ASM, et une partie du circuit neural nécessaire pour répondre à CO 2 a été disséqué 19. L&#39;essai d&#39;évitement sociale présentée ici est conceptuellement similaire aux tests comportementaux simples développées dans le laboratoire de Seymour Benzer qui ont permis à des générations de chercheurs pour disséquer des comportements complexes 20. Analyse des évitement social peut être réalisée en utilisant de manière rentable le test T-labyrinthe, permettant pour une étude plus généralisée du comportement social. Par exemple, l&#39;utilisation de ce test nous avons récemment démontré que les risques génétiques différents pour l&#39;autisme ont des effets contrastés b socialedosages ehavior. Mutants pour un gène candidat pour l&#39;autisme - neurobeachin 21,22 - les déficiences actuelles à la fois dans l&#39;espace social (décrits ailleurs 23) et évitement social 24. La signalisation dopaminergique anormale est également proposé de jouer un rôle dans l&#39;étiologie de l&#39;autisme chez les humains 25,26. Contrairement aux résultats obtenus avec neurobeachin, nous avons trouvé que la performance d&#39;évitement sociale était pas affectée par une augmentation ou une diminution du taux de la monoamine vésiculaire Drosophila Transporter (VMAT) dans des cellules dopaminergiques, bien que l&#39;espace social est directement corrélée à ces niveaux de VMAT 27. Les résultats contrastés obtenus avec neurobeachin et VMAT soulignent la possibilité d&#39;identifier diverses formes de comportement asocial, et donc les différents circuiteries neuronaux sous-jacents moduler la réponse à d&#39;autres.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Stereo Zoom Microscope&#160;</td>
			<td>Nikon&#160;&#160;</td>
			<td>SMZ-645</td>
			<td>Any other standard scope for fly handling would work</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Small paint brushes&#160;</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>for pushing flies</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Porous Polyethylene, 12&#34; x 12&#34; Sheet</td>
			<td>Flystuff - Genesee</td>
			<td>46-100</td>
			<td>http://www.flystuff.com/ProductInfo.php?productID=46-100 
			Porous Plastic sheet for the cold anesthesia box</td>
		</tr>
		<tr>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mini-Alarm Timer/Stopwatch</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>&#160;Sharpie pens</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Adhesive Tape</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mini vortex</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>14-955-151&#160;</td>
			<td>http://www.fishersci.com/ecomm/servlet/itemdetail 
			For mechanical agitation of the flies - any vortex would work.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Corning Life Sciences DL No.:352017, Falcon test tube; round bottom; disposable; no closure, 14mL;&#160; 17 x 100mm</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>14-959-8 &#160;&#160;</td>
			<td>http://www.fishersci.com/ecomm/servlet/itemdetail?storeId=10652&#38;langId=-1&#38;catalogId=29104&#38;productId=2771811&#38;distype=0&#38;highlightProductsItemsFlag=Y&#38;fromSearch=1&#38;searchType=PROD&#38;hasPromo=0 
			These snap in place in the in-house made T-maze and counter-current apparatus (see text)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>cotton balls</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>to close the vials after the experiment.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>trifold board and white bench cover</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>to provide a white background, and a homogeneous light.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>white bench cover</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pounding pad</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>any mouse pad works.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>large black cloth</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>to cover the counter-current apparatus in phototaxis response.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>cool-white light&#160;</td>
			<td>Home Depot</td>
			<td>1000516563</td>
			<td>http://www.homedepot.ca/product/illume-26-fluorescent-plug-in-linear/911423 
			any similar linear light with fluorescent light bulb cool-white at 13-15W would work</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

straightforward assay for quantification of social avoidance in drosophila melanogaster

Drosophila melanogaster is an emerging model to study different aspects of social interactions. For example, flies avoid areas previously occupied by stressed conspecifics due to an odorant released during stress known as the Drosophila stress odorant (dSO). Through the use of the T-maze apparatus, one can quantify the avoidance of the dSO by responder flies in a very affordable and robust assay. Conditions necessary to obtain a strong performance are presented here. A stressful experience is necessary for the flies to emit dSO, as well as enough emitter flies to cause a robust avoidance response to the presence of dSO. Genetic background, but not their group size, strongly altered the avoidance of the dSO by the responder flies. Canton-S and Elwood display a higher performance in avoiding the dSO than Oregon and Samarkand strains. This behavioral assay will allow identification of mechanisms underlying this social behavior, and the assessment of the influence of genes and environmental conditions on both emission and avoidance of the dSO. Such an assay can be included in batteries of simple diagnostic tests used to identify social deficiencies of mutants or environmental conditions of interest.

Le test d&#39;évitement social est un test robuste quantifier la capacité de Drosophila melanogaster de reconnaître un signal de stress (DSO) émis par d&#39;autres mouches, et d&#39;évaluer ainsi un aspect des interactions sociales. Le test est effectué en utilisant un appareil couramment utilisé dans divers essais de comportement connus comme un labyrinthe en T, qui présentent les mouches avec un choix entre deux options différentes - gauche ou à droite 19,28-31. Dans ce cas, l&#39;efficacité avec laquelle les mouches éviter l&#39;ASM est quantifiée en calculant et en comparant leur Indice de performance (PI). A PI de zéro indique une répartition 50-50 ou pas éviter, tandis qu&#39;une PI de 100 indique que toutes les mouches éviter l&#39;ASM. Et un IP de -100 indiquerait que toutes les mouches sont allés à l&#39;intérieur du flacon DSO. Les mouches sont présentés avec un flacon contenant DSO émis par les mouches mécaniquement agités, et une nouvelle (DSO-gratuit) flacon. Les résultats représentatifs présentées ici soulignent l&#39;strength de cet essai, ainsi que des conditions connues nécessaires à l&#39;obtention de meilleurs résultats. Prévention des DSO ne est pas le sexe spécifique, mais dépend de mouches étant souligné. Le sexe des répondants vol n&#39;a pas d&#39;effet sur ​​leur éviter de DSO (Figure 1). Cependant, il ne est pas suffisante pour les mouches à avoir occupé le flacon de test pour provoquer une évasion de cette fiole, les mouches doivent avoir été souligné - dans ce cas agité mécaniquement (Figure 1). Si pas de mouches avaient occupé le flacon de test, ou si les mouches ont entré et a quitté le flacon sans contrainte en utilisant phototaxie, les intervenants suscitent pas de préférence comme cela a été indiqué précédemment 19. Bien que la figure 1 reproduit les résultats connus, il est également un exemple du type de données obtenues dans des conditions sous-optimales. Avec seulement 2-5 répétitions internes, et aucun essai indépendants, les barres d&#39;erreur représentent la gamme. Cependant, il existe une importante diffèrentrence entre les flacons précédemment occupées par les mouches et les mouches stressées non stressé ou vide, comme indiqué précédemment 19. Dans ce contexte, les mouches affichent toujours une forte PI d&#39;évitement. Cela met en évidence la robustesse de l&#39;analyse. En outre, le PI pour le choix entre deux flacons frais est négatif (différent de 0, pour les femelles p &lt;0,05, et mis en commun sexe p &lt;0,01). Ceci indique une préférence pour un côté du labyrinthe en T, ou un biais dû à la petite taille de l&#39;échantillon. Cette limitation peut être contrecarré par l&#39;alternance du côté sur lequel le flacon de test est placé sur le labyrinthe en T dans les répétitions internes, comme cela se fait dans les expériences ultérieures présentées. Malgré l&#39;absence d&#39;effet du sexe dans la réponse à l&#39;ASM, les intervenants ont été séparés par sexe pour prévenir les effets de confusion possibles. Par exemple, dans le cas de mutations qui pourraient avoir des effets spécifiques au sexe, telles que celles affectant les gènes impliqués dans la signalisation olfactif 36. Les representati suivants<html> ve résultats se concentrent sur intervenants masculins, et les émetteurs de sexe mixtes. Prévention des DSO est indépendant du nombre de répondeurs mouches testés. Des expériences antérieures 19 ont utilisé un niveau de 40 Canton-S mouches à tester évitement social, qui a montré une forte PI, indiquant que la plupart des mouches ont préféré le flacon DSO sans frais. Pour tester l&#39;effet de la taille du groupe sur la PI des intervenants, une gamme de 10 à 80 mouches a été testée, comme on le voit dans la figure 2. Un minimum de deux essais indépendants et trois répétitions internes par essai a été réalisé. Un t-test a montré aucune signification statistique lorsque l&#39;on compare la PI de chacun des différents nombre de répondants mouches à l&#39;indice de performance de la commande (quarante intervenants mouches). Ainsi, le nombre de répondants vol n&#39;a pas d&#39;effet sur la PI du DSO évitement et l&#39;effet que les mutations ont sur l&#39;évitement peuvent être testés, même si mutants sont disponibles en petits nombres. ent &quot;&gt; Augmentation du nombre d&#39;émetteurs vole conduit à l&#39;évitement plus élevé de DSO. Pour déterminer la mesure dans laquelle le nombre de vol d&#39;émetteur affecté le DSO et son évitement, nous avons également testé l&#39;effet de la quantité de mouches stressées. Dans les expériences passées, et 19 ce protocole, ont utilisé une norme de 70 Canton-S mouches. Nous avons testé aujourd&#39;hui 10-160 vol d&#39;émetteur (figure 3). La performance de l&#39;évitement est directement liée au nombre d&#39;émetteurs, bien qu&#39;il n&#39;y ait pas d&#39;augmentation de l&#39;évasion de plus de 80 émetteurs. Fait intéressant, une évasion importante a été toujours détecté avec seulement 10 ont souligné mouches. Encore une fois, cela permettrait de tester les capacités d&#39;émission de quelques mouches à la fois. Fond génétique affecte la performance d&#39;évitement DSO. Drosophila melanogaster est un organisme modèle forte pour les études génétiques. Il était donc important de déterminer si le test pourrait être utilisé pour DISCRiminate différents fonds génétiques. La réponse de quatre types différents sauvages a été mesurée (Canton-S, Oregon-R, Samarkand et Elwood) par rapport à leur éviter des DSO émis par Canton-S (Figure 4). Canton-S et Elwood ont un IP supérieur à celui de l&#39;Oregon et de Samarkand (p &lt;0,05). Ces résultats démontrent qu&#39;il existe une composante génétique sous-jacente l&#39;évitement de l&#39;ASM, et que cet essai a le pouvoir d&#39;effectuer une étude de cette influence génétique. Durée de choix affectent les performances. L&#39;ensemble de données représentatives présenté dans les figures 1, 2, 3 et 4 illustrent aussi l&#39;effet de la durée de temps donné aux intervenants de décider qui ils évitent fiole. Lorsque intervenants Canton-S sont donnés 30 à 45 secondes pour choisir leur flacon préféré, ils atteignent généralement performances autour de Pi = 55 (Figure 2, respectivement PI hommes= 57 ± 2; et 52 ± 11). Lorsqu&#39;il est administré 60 sec, leur rendement est plus élevé, comme on le voit sur ​​la figure 4 (PI = 77 ± 6,5). <img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/52011/52011fig1highres.jpg" /> Figure 1. Prévention des DSO ne est pas le sexe spécifique, mais dépend de mouches étant souligné. Les graphiques à barres représentent la plage de ± moyenne de la PI de l&#39;évitement d&#39;un flacon de l&#39;odeur de stress laissé par les mouches agités (DSO). Hommes (en rouge) et les femmes (orange) ont été testés ensemble (marron), puis comptées après l&#39;expérience. Les mouches résultats semblables, indépendamment de leur sexe (ANOVA à deux voies). Mais ils ne éviter un flacon DSO-rempli dans lequel les mouches avaient été souligné précédemment (agitation mécanique), et non un flacon dans lequel les mouches ne avaient pas été souligné (entrant et sortant du flacon par phototaxie, p &lt;0,05, comparaison multiple post Tukey test), ou un flacon frais (p &lt;0,001, comparaison multiple post-test de Tukey). EnDe plus, il n&#39;y avait aucune différence statistique entre le flacon fraîche et conditions de mouches non stressés, malgré un biais l&#39;expérience flacon frais - n = 2-5 réplique avec 40 mixité vole chacun, avec 45 secondes de temps de choix (n = 3 pour frais flacons, n = 2 pour flacon avec les fichiers non-stress, n = 5 pour flacon avec des mouches stressées). <img alt="Figure 2" src="/files/ftp_upload/52011/52011fig2highres.jpg" /> Figure 2. Prévention des DSO est indépendant du nombre de mouches testés. Représentant données montre que le nombre de Canton-S répondeurs mouches dans le labyrinthe en T n&#39;a pas d&#39;effet sur ​​l&#39;évitement social de la DSO. Responder mouches ont été donnés 30 secondes pour choisir entre un flacon frais et un flacon contenant DSO (n = 2-6 répétitions par essai internes, 1-2 essais, minimum de cinq points de données par état, graphiques à barres représentent la moyenne ± sem) <img alt="Figure 3" src="/files/ftp_upload/52011/52011fig3highres.jpg" /> <strong&gt; Figure 3. Augmentation du nombre d&#39;émetteurs conduit à accroître DSO évitement. Représentant des données montre que le nombre de Canton-S émetteur mouches affecte le DSO et son évitement (augmentation nuance de rouge indique le nombre de vol d&#39;émetteur augmenté, avec 70 émetteurs décrites en bleu ). Par rapport à 70 émetteurs, seuls les flacons qui contenaient 10 émetteurs ou de l&#39;air ont montré une différence significative de la performance (une ANOVA p = 0,0001, la comparaison multiple post-test de Dunnett). Les 40 intervenants mouches ont reçu une min. de décider entre un flacon frais et un flacon contenant DSO (n = 3 répétitions internes par essai, trois essais indépendants, graphiques à barres représentent la moyenne ± sem) <img alt="Figure 4" src="/files/ftp_upload/52011/52011fig4highres.jpg" /> Figure 4. Temps de choix et le patrimoine génétique des mouches des fruits affecter la réponse à DSO. Canton-S et les génotypes Elwood affichent une plus forte prévention de la DSO de l&#39;Oregon et Samarkand (p &lt;0,05 *, comparant à Canton-S t-test). Responder mouches ont reçu une min. de décider entre un flacon frais et un flacon contenant DSO (n = 4-5 répétitions internes par essai, deux essais indépendants, graphiques à barres représentent la moyenne ± sem)

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Straightforward Assay for Quantification of Social Avoidance in Drosophila melanogaster

Here, we present a protocol to quantify the avoidance of stressed individuals. This paradigm is powerful yet user-friendly and can be used to assess the influence of genes and environment on one kind of social interaction in Drosophila melanogaster.

Essai simple pour la quantification de l&#39;évitement social en<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Drosophila melanogaster is an emerging model to study different aspects of social interactions. For example, flies avoid areas previously occupied by ...

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Nanyang Technological University

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Straightforward Assay for Quantification of Social Avoidance in Drosophila melanogaster

11.2K vues.  Yale University. Here, we present a protocol to quantify the avoidance of stressed individuals. This paradigm is powerful yet user-friendly and can be used to assess the influence of genes and environment on one kind of social interaction in Drosophila melanogaster.

Vidéo: Straightforward Assay for Quantification of Social Avoidance in Drosophila melanogaster

Combining Behavioral Endocrinology and Experimental Economics: Testosterone and Social Decision Making

Behavioral endocrinological research in humans as well as in animals suggests that testosterone plays a key role in social interactions. Studies in rodents have shown a direct link between testosterone and aggressive behavior1 and folk wisdom adapts these findings to humans, suggesting that testosterone induces antisocial, egoistic or even aggressive behavior2. However, many researchers doubt a direct testosterone-aggression link in humans, arguing instead that testosterone is primarily involved in status-related behavior3,4. As a high status can also be achieved by aggressive and antisocial means it can be difficult to distinguish between anti-social and status seeking behavior.
We therefore set up an experimental environment, in which status can only be achieved by prosocial means. In a double-blind and placebo-controlled experiment, we administered a single sublingual dose of 0.5 mg of testosterone (with a hydroxypropyl-&beta;-cyclodextrin carrier) to 121 women and investigated their social interaction behavior in an economic bargaining paradigm. Real monetary incentives are at stake in this paradigm; every player A receives a certain amount of money and has to make an offer to another player B on how to share the money. If B accepts, she gets what was offered and player A keeps the rest. If B refuses the offer, nobody gets anything. A status seeking player A is expected to avoid being rejected by behaving in a prosocial way, i.e. by making higher offers.
The results show that if expectations about the hormone are controlled for, testosterone administration leads to a significant increase in fair bargaining offers compared to placebo. The role of expectations is reflected in the fact that subjects who report that they believe to have received testosterone make lower offers than those who say they believe that they were treated with a placebo. These findings suggest that the experimental economics approach is sensitive for detecting neurobiological effects as subtle as those achieved by administration of hormones. Moreover, the findings point towards the importance of both psychosocial as well as neuroendocrine factors in determining the influence of testosterone on human social behavior.

The procedure described in this protocol shows that testosterone administration and folk beliefs about testosterone may be associated with directly opposed social behaviors.

Combinant endocrinologie du comportement et l&#39;économie expérimentale: Décision de la testostérone et social Rendre

Behavioral endocrinological research in humans as well as in animals suggests that testosterone plays a key role in social interactions. Studies in ...

Recherche

Neurosciences

Optogenetic Stimulation of Escape Behavior in Drosophila melanogaster

A growing number of genetically encoded tools are becoming available that allow non-invasive manipulation of the neural activity of specific neurons in Drosophila melanogaster1. Chief among these are optogenetic tools, which enable the activation or silencing of specific neurons in the intact and freely moving animal using bright light. Channelrhodopsin (ChR2) is a light-activated cation channel that, when activated by blue light, causes depolarization of neurons that express it. ChR2 has been effective for identifying neurons critical for specific behaviors, such as CO2 avoidance, proboscis extension and giant-fiber mediated startle response2-4. However, as the intense light sources used to stimulate ChR2 also stimulate photoreceptors, these optogenetic techniques have not previously been used in the visual system. Here, we combine an optogenetic approach with a mutation that impairs phototransduction to demonstrate that activation of a cluster of loom-sensitive neurons in the fly's optic lobe, Foma-1 neurons, can drive an escape behavior used to avoid collision. We used a null allele of a critical component of the phototransduction cascade, phospholipase C-&beta;, encoded by the norpA gene, to render the flies blind and also use the Gal4-UAS transcriptional activator system to drive expression of ChR2 in the Foma-1 neurons. Individual flies are placed on a small platform surrounded by blue LEDs. When the LEDs are illuminated, the flies quickly take-off into flight, in a manner similar to visually driven loom-escape behavior. We believe that this technique can be easily adapted to examine other behaviors in freely moving flies.

Optogenetic Stimulation of Escape Behavior in Drosophila melanogaster

Genetically encoded optogenetic tools enable noninvasive manipulation of specific neurons in the Drosophila brain. Such tools can identify neurons whose activation is sufficient to elicit or suppress particular behaviors. Here we present a method for activating Channelrhodopsin2 that is expressed in targeted neurons in freely walking flies.

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A  growing number of genetically encoded tools are becoming available that allow non-invasive  manipulation of the neural activity of specific neurons in ...

Determination of the Spontaneous Locomotor Activity in Drosophila melanogaster

Drosophila melanogaster has been used as an excellent model organism to study environmental and genetic manipulations that affect behavior. One such behavior is spontaneous locomotor activity. Here we describe our protocol that utilizes Drosophila population monitors and a tracking system that allows continuous monitoring of the spontaneous locomotor activity of flies for several days at a time. This method is simple, reliable, and objective and can be used to examine the effects of aging, sex, changes in caloric content of food, addition of drugs, or genetic manipulations that mimic human diseases.

Determination of the Spontaneous Locomotor Activity in Drosophila melanogaster

Drosophila melanogaster are useful in studying genetic or environmental manipulations that affect behaviors such as spontaneous locomotor activity.&#160; Here we describe a protocol that utilizes monitors with infrared beams and data analysis software to quantify spontaneous locomotor activity.&#160;

Détermination de l&#39;activité locomotrice spontanée,<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Drosophila melanogaster has been used as an excellent model organism to study environmental and genetic manipulations that affect behavior. One such ...

Conditions Affecting Social Space in Drosophila melanogaster

The social space assay described here can be used to quantify social interactions of Drosophila melanogaster &#8212; or other small insects &#8212; in a straightforward manner. As we previously demonstrated 1, in a two-dimensional chamber, we first force the flies to form a tight group, subsequently allowing them to take their preferred distance from each other. After the flies have settled, we measure the distance to the closest neighbor (or social space), processing a static picture with free online software (ImageJ). The analysis of the distance to the closest neighbor allows researchers to determine the effects of genetic and environmental factors on social interaction, while controlling for potential confounding factors. Diverse factors such as climbing ability, time of day, sex, and number of flies, can modify social spacing of flies. We thus propose a series of experimental controls to mitigate these confounding effects. This assay can be used for at least two purposes. First, researchers can determine how their favorite environmental shift (such as isolation, temperature, stress or toxins) will impact social spacing 1,2. Second, researchers can dissect the genetic and neural underpinnings of this basic form of social behavior 1,3. Specifically, we used it as a diagnostic tool to study the role of orthologous genes thought to be involved in social behavior in other organisms, such as candidate genes for autism in humans 4.

Conditions Affecting Social Space in Drosophila melanogaster

The effect of genes and environment on social space of Drosophila melanogaster can be quantified through a powerful but straightforward analytical paradigm. We show here different factors that can affect this social space, and thus need to be taken into consideration when designing experiments in this paradigm.

Conditions affectant espace social<em&gt; Drosophila melanogaster</em

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High-resolution Quantification of Odor-guided Behavior in Drosophila melanogaster Using the Flywalk Paradigm

In their natural environment, insects such as the vinegar fly Drosophila melanogaster are bombarded with a huge amount of chemically distinct odorants. To complicate matters even further, the odors detected by the insect nervous system usually are not single compounds but mixtures whose composition and concentration ratios vary. This leads to an almost infinite amount of different olfactory stimuli which have to be evaluated by the nervous system.
To understand which aspects of an odor stimulus determine its evaluation by the fly, it is therefore desirable to efficiently examine odor-guided behavior towards many odorants and odor mixtures. To directly correlate behavior to neuronal activity, behavior should be quantified in a comparable time frame and under identical stimulus conditions as in neurophysiological experiments. However, many currently used olfactory bioassays in Drosophila neuroethology are rather specialized either towards efficiency or towards resolution.
Flywalk, an automated odor delivery and tracking system, bridges the gap between efficiency and resolution. It allows the determination of exactly when an odor packet stimulated a freely walking fly, and to determine the animal&#180;s dynamic behavioral reaction.

High-resolution Quantification of Odor-guided Behavior in Drosophila melanogaster Using the Flywalk Paradigm

The automated tracking system Flywalk is used for high-resolution quantification of odor-guided behavior in Drosophila melanogaster.

Haute résolution La quantification du comportement Odor-guidée dans<em&gt; Drosophila melanogaster</em&gt; Utilisation de la<em&gt; Flywalk</em&gt; Paradigm

In their natural environment, insects such as the vinegar fly Drosophila melanogaster are bombarded with a huge amount of chemically distinct odorants. To ...

A Behavioral Assay for Mechanosensation of MARCM-based Clones in Drosophila melanogaster

Because of the structural and functional homology to the hair cells of the mammalian inner ear, the neurons that innervate the Drosophila external sense organs provide an excellent model system for the study of mechanosensation. This protocol describes a simple touch behavior in fruit flies which can be used to identify mutations that interfere with mechanosensation. The tactile stimulation of a macrochaete bristle on the thorax of flies elicits a grooming reflex from either the first or third leg. Mutations that interfere with mechanotransduction (such as NOMPC), or with other aspects of the reflex arc, can inhibit the grooming response. A traditional screen of adult behaviors would have missed mutants that have essential roles during development. Instead, this protocol combines the touch screen with mosaic analysis with a repressible cell marker (MARCM) to allow for only limited regions of homozygous mutant cells to be generated and marked by the expression of green fluorescent protein (GFP). By testing MARCM clones for abnormal behavioral responses, it is possible to screen a collection of lethal p-element mutations to search for new genes involved in mechanosensation that would have been missed by more traditional methods.

A Behavioral Assay for Mechanosensation of MARCM-based Clones in Drosophila melanogaster

In order to identify novel mutations affecting mechanosensation, we designed an assay that measures the behavioral response to tactile stimulation of fly bristles in mutant clones generated by the MARCM method. The combination of techniques allows for the identification of mechanosensitive mutations that would otherwise be lethal.

A Behavioral Essai pour mécanosensibilité de marcm-fondé clones dans<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Because of the structural and functional homology to the hair cells of the mammalian inner ear, the neurons that innervate the Drosophila external sense ...

High Throughput Assay to Examine Egg-Laying Preferences of Individual Drosophila melanogaster

Recently, egg-laying preference of Drosophila has emerged as a genetically tractable model to study the neural basis of simple decision-making processes. When selecting sites to deposit their eggs, female flies are capable of ranking the relative attractiveness of their options and choosing the &#34;greater of two goods.&#34; However, most egg-laying preference assays are not practical if one wants to take a systematic genetic screening approach to search for the circuit basis underlying this simple decision-making process, as they are population-based and laborious to set up. To increase the throughput of studying of egg-laying preferences of single females, we developed custom chambers that each can simultaneously assay egg-laying preferences of up to thirty individual flies as well as a protocol that ensures each female has a high egg-laying rate (so that their preference is readily discernable and more convincing). Our approach is simple to execute and produces very consistent results. Additionally, these chambers can be equipped with different attachments to allow video recording the egg-laying animals and to deliver light for optogenetics studies. This article provides the blueprints for fabricating these chambers and the procedure for preparing the flies to be assayed in these chambers.

High Throughput Assay to Examine Egg-Laying Preferences of Individual Drosophila melanogaster

This protocol describes a high throughput assay for testing egg-laying preferences of Drosophila melanogaster at single-animal resolution. This assay provides a simple, efficient, and scalable platform to identify genes and circuit components that control a simple decision-making process.

High Throughput Assay pour examiner les préférences de ponte de l&#39;individu<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Recently, egg-laying preference of Drosophila has emerged as a genetically tractable model to study the neural basis of simple decision-making processes. ...

Foraging Path-length Protocol for Drosophila melanogaster Larvae

The Drosophila melanogaster larval path-length phenotype is an established measure used to study the genetic and environmental contributions to behavioral variation. The larval path-length assay was developed to measure individual differences in foraging behavior that were later linked to the foraging gene. Larval path-length is an easily scored trait that facilitates the collection of large sample sizes, at minimal cost, for genetic screens. Here we provide a detailed description of the current protocol for the larval path-length assay first used by Sokolowski. The protocol details how to reproducibly handle test animals, perform the behavioral assay and analyze the data. An example of how the assay can be used to measure behavioral plasticity in response to environmental change, by manipulating feeding environment prior to performing the assay, is also provided. Finally, appropriate test design as well as environmental factors that can modify larval path-length such as food quality, developmental age and day effects are discussed.

Foraging Path-length Protocol for Drosophila melanogaster Larvae

We provide a detailed protocol for a Drosophila melanogaster foraging path-length assay. We discuss the preparation and handling of test animals, how to perform the assay and analyze the data.

Foraging Protocole Chemin de longueur pour<em&gt; Drosophila melanogaster</em&gt; larves

The Drosophila melanogaster larval path-length phenotype is an established measure used to study the genetic and environmental contributions to behavioral ...

The CApillary FEeder Assay Measures Food Intake in Drosophila melanogaster

For most animals, feeding is an essential behavior for securing survival, and it influences development, locomotion, health and reproduction. Ingestion of the right type and quantity of food therefore has a major influence on quality of life. Research on feeding behavior focuses on the underlying processes that ensure actual feeding and unravels the role of factors regulating internal energy homeostasis and the neuronal bases of decision-making. The model organism Drosophila melanogaster, with its great variety of genetically traceable tools for labeling and manipulating single neurons, allows mapping of neuronal networks and identification of molecular signaling cascades involved in the regulation of food intake. This report demonstrates the CApillary FEeder assay (CAFE) and shows how to measure food intake in a group of flies for time spans ranging from hours to days. This easy-to-use assay consists of glass capillaries filled with liquid food that flies can freely access and feed on. Food consumption in the assay is accurately determined using simple measurement tools. Herein we describe step-by-step the method from setup to successful execution of the CAFE assay, and provide practical examples to analyze the food intake of a group of flies under controlled conditions. The reader is guided through possible limitations of the assay, and advantages and disadvantages of the method compared to other feeding assays in D. melanogaster are evaluated.

The CApillary FEeder Assay Measures Food Intake in Drosophila melanogaster

The CApillary FEeder (CAFE) assay is a simple, budget-friendly, highly reliable method for investigating mechanisms underlying food intake. Used with the highly versatile genetic model organism Drosophila melanogaster, it provides a powerful means of gaining new insights into regulatory mechanisms of food intake.

Capillaire Feeder Assay mesures prise alimentaire dans<em&gt; Drosophila melanogaster</em

For most animals, feeding is an essential behavior for securing survival, and it influences development, locomotion, health and reproduction. Ingestion of ...

Quantification of Drosophila Grooming Behavior

Drosophila grooming behavior is a complex multi-step locomotor program that requires coordinated movement of both forelegs and hindlegs. Here we present a grooming assay protocol and novel chamber design that is cost-efficient and scalable for either small or large-scale studies of Drosophila grooming. Flies are dusted all over their body with Brilliant Yellow dye and given time to remove the dye from their bodies within the chamber. Flies are then deposited in a set volume of ethanol to solubilize the dye. The relative spectral absorbance of dye-ethanol samples for groomed versus ungroomed animals are measured and recorded. The protocol yields quantitative data of dye accumulation for individual flies, which can be easily averaged and compared across samples. This allows experimental designs to easily evaluate grooming ability for mutant animal studies or circuit manipulations. This efficient procedure is both versatile and scalable. We show work-flow of the protocol and comparative data between WT animals and mutant animals for the Drosophila type I Dopamine Receptor (DopR).

This protocol describes a scalable individual grooming assay technique in Drosophila that yields robust, quantitative data to measure grooming behavior. The method is based on comparing the difference in dye accumulation on the bodies of un-groomed versus groomed animals over a set period of time.

Quantification du comportement de toilettage de la drosophile

Drosophila grooming behavior is a complex multi-step locomotor program that requires coordinated movement of both forelegs and hindlegs. Here we present a ...